$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Siguiendo el protocolo, se entrenó una U-Net de cinco cortes en un solo tomograma (Figura 2A) para identificar cinco clases: membrana, microtúbulos, actina, marcadores fiduciales y antecedentes. La red se entrenó iterativamente un total de tres veces, y luego se aplicó al tomograma para segmentarlo y anotarlo completamente (Figura 2B, C). La limpieza mínima se realizó mediante los pasos 7.1 y 7.2. Los siguientes tres tomogramas de interés (Figura 2D, G, J) se cargaron en el software para su preprocesamiento. Antes de la importación de la imagen, uno de los tomogramas (Figura 2J) requería un ajuste del tamaño de píxel de 17,22 Å/px a 13,3 Å/px, ya que se recogía en un microscopio diferente con un aumento ligeramente diferente. El programa IMOD squeezevol se utilizó para cambiar el tamaño con el siguiente comando:
'squeezevol -f 0.772 inputfile.mrc outputfile.mrc'
En este comando, -f se refiere al factor por el cual alterar el tamaño del píxel (en este caso: 13.3/17.22). Después de la importación, los tres objetivos de inferencia se procesaron previamente de acuerdo con los pasos 3.2 y 3.3, y luego se aplicó la U-Net de cinco sectores. Se volvió a realizar una limpieza mínima. Las segmentaciones finales se muestran en la Figura 2.
Las segmentaciones de microtúbulos de cada tomograma se exportaron como archivos TIF binarios (paso 7.4), se convirtieron a MRC (programa IMOD tif2mrc ) y luego se utilizaron para la correlación de cilindros y el rastreo de filamentos. Las segmentaciones binarias de filamentos dan como resultado un trazado de filamentos mucho más robusto que el rastreo sobre tomogramas. Los mapas de coordenadas del trazado de filamentos (Figura 3) se utilizarán para análisis adicionales, como mediciones de vecinos más cercanos (empaquetamiento de filamentos) y subtomogramas helicoidales promediando filamentos individuales para determinar la orientación de los microtúbulos.
Las redes fallidas o inadecuadamente entrenadas son fáciles de determinar. Una red fallida no podrá segmentar ninguna estructura, mientras que una red inadecuadamente entrenada generalmente segmentará algunas estructuras correctamente y tendrá un número significativo de falsos positivos y falsos negativos. Estas redes pueden corregirse y entrenarse iterativamente para mejorar su rendimiento. El asistente de segmentación calcula automáticamente el coeficiente de similitud de dados de un modelo (llamado puntuación en SegWiz) después de entrenarlo. Esta estadística da una estimación de la similitud entre los datos de entrenamiento y la segmentación de U-Net. Dragonfly 2022.1 también tiene una herramienta incorporada para evaluar el rendimiento de un modelo a la que se puede acceder en la pestaña Inteligencia artificial en la parte superior de la interfaz (consulte la documentación para su uso).

Figura 2: Inferencia. (A-C) Tomografía de entrenamiento original de una neurona de rata del hipocampo DIV 5, recolectada en 2019 en un Titan Krios. Esta es una reconstrucción retroproyectada con corrección CTF en IMOD. (A) El cuadro amarillo representa la región donde se realizó la segmentación de la mano para la entrada de entrenamiento. (B) Segmentación 2D de U-Net después de completar la capacitación. (C) Representación 3D de las regiones segmentadas que muestran membrana (azul), microtúbulos (verde) y actina (rojo). (D-F) DIV 5 neurona de rata del hipocampo de la misma sesión que el tomograma de entrenamiento. (E) Segmentación 2D desde U-Net sin capacitación adicional y limpieza rápida. Membrana (azul), microtúbulos (verde), actina (rojo), fiduciales (rosa). (F) Representación 3D de las regiones segmentadas. (G-I) DIV 5 neurona de rata del hipocampo de la sesión de 2019. (H) Segmentación 2D desde U-Net con limpieza rápida y (I) renderizado 3D. (J-L) Neurona de rata del hipocampo DIV 5, recolectada en 2021 en un Titán Krios diferente con un aumento diferente. El tamaño de píxel se ha cambiado con el programa IMOD squeezevol para que coincida con el tomograma de entrenamiento. (K) segmentación 2D desde U-Net con limpieza rápida, demostrando inferencia robusta en conjuntos de datos con preprocesamiento adecuado y (L) representación 3D de segmentación. Barras de escala = 100 nm. Abreviaturas: DIV = días in vitro; CTF = función de transferencia de contraste. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3: Mejora del trazado de filamentos . (A) Tomograma de una neurona del hipocampo de rata DIV 4, recolectada en un Titán Krios. (B) Mapa de correlación generado a partir de la correlación de cilindros sobre filamentos de actina. (C) Rastreo de filamentos de actina utilizando las intensidades de los filamentos de actina en el mapa de correlación para definir parámetros. El rastreo captura la membrana y los microtúbulos, así como el ruido, mientras intenta rastrear solo la actina. (D) Segmentación U-Net del tomograma. Membrana resaltada en azul, microtúbulos en rojo, ribosomas en naranja, triC en púrpura y actina en verde. (E) Segmentación de actina extraída como una máscara binaria para el rastreo de filamentos. (F) Mapa de correlación generado a partir de la correlación de cilindros con los mismos parámetros de (B). (G) Mejora significativa del trazado de filamentos de solo filamentos de actina del tomograma. Abreviatura: DIV = días in vitro. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Archivo complementario 1: El tomograma utilizado en este protocolo y el ROI múltiple que se generó como entrada de entrenamiento se incluyen como un conjunto de datos agrupado (Training.ORSObject). Véase https://datadryad.org/stash/dataset/doi:10.5061/dryad.rxwdbrvct.