Artículo de método

Análisis morfológico y composicional de trampas extracelulares de neutrófilos inducidas por estímulos microbianos y químicos

DOI:

10.3791/64522

4 de noviembre de 2022

En este artículo

Resumen

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Aquí se presenta un protocolo para la inducción y análisis de trampas extracelulares de neutrófilos (TNE) in vitro . La cuantificación del ADN, la catelicidina (LL37) y la actividad enzimática arrojó datos que muestran la variabilidad en la composición y morfología de los NET inducidos por estímulos microbianos y químicos en condiciones controladas similares.

Resumen

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Los neutrófilos funcionan como la primera línea de defensa celular en una respuesta inmune innata mediante el empleo de diversos mecanismos, como la formación de trampas extracelulares de neutrófilos (TNE). Este estudio analiza los cambios morfológicos y de composición en los NET inducidos por estímulos microbianos y químicos utilizando metodologías estandarizadas in vitro para la inducción y caracterización de NET con células humanas. Los procedimientos descritos aquí permiten el análisis de la morfología NET (lítica o no lítica) y la composición (estructuras ADN-proteína y actividad enzimática), y el efecto de los factores solubles o el contacto celular sobre dichas características. Además, las técnicas descritas aquí podrían modificarse para evaluar el efecto de los factores solubles exógenos o el contacto celular en la composición de NET.

Las técnicas aplicadas incluyen la purificación de células polimorfonucleares de sangre periférica humana utilizando un gradiente de doble densidad (1.079-1.098 g/mL), garantizando una pureza y viabilidad óptimas (≥ 95%) como lo demuestra la tinción de Wright, la exclusión de azul de tripano y la citometría de flujo, incluido el análisis FSC versus SSC y la tinción 7AAD. La formación de NET se induce con estímulos microbianos (Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus y Candida albicans) y químicos (acetato de forbol miristato, HOCl), y los NET se caracterizan por tinción de ADN-DAPI, inmunotinción para el péptido antimicrobiano catelicidina (LL37) y cuantificación de la actividad enzimática (elastasa de neutrófilos, catepsina G y mieloperoxidasa). Las imágenes se adquieren a través de microscopía de fluorescencia y se analizan con ImageJ.

Introducción

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Los neutrófilos son los leucocitos más abundantes en el torrente sanguíneo, desempeñando un papel esencial durante la eliminación de agentes patógenos por varios mecanismos, incluyendo la liberación de grandes estructuras de cromatina compuestas de ADN y varias proteínas antibacterianas nucleares, citoplasmáticas y granulares 1,2. El antecedente directo que describe este papel antimicrobiano de los neutrófilos fue elaborado por Takei et al.3 en 1996. Estos autores relataron una nueva forma de muerte diferente de la apoptosis y necroptosis en neutrófilos, mostraron cambios morfológicos q....

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Protocolo

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Las muestras de sangre se obtuvieron como donaciones de participantes clínicamente sanos después del consentimiento informado. Todos los experimentos se realizaron con el permiso del Comité de Ética en Investigación Humana de la Facultad de Ciencias Bioquímicas de la Universidad Autónoma 'Benito Juárez' de Oaxaca.

NOTA: Los criterios de inclusión en el estudio fueron sexo y edad indistintos, y clínicamente sanos de acuerdo con las respuestas de los participantes a un cuestionario antes de tomar una muestra de sangre. Se realizó un análisis hematológico para determinar el recuento celular y descartar infecciones o anemia, así como la prueba ....

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Resultados

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Pureza y viabilidad de los neutrófilos
Las fases celulares dinámicas se visualizan en el tubo a partir de la purificación de gradiente de doble densidad. Dentro de estas capas, la capa correspondiente a los granulocitos está por encima de la capa de densidad de 1,079 g/ml, que se distingue de las fases de los mononucleocitos de sangre periférica (PBMC) y eritrocitos (Figura 1A). La morfología de las células purificadas se verificó con la tinción de Wright mediante la obse.......

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Discusión

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Se debe obtener una población altamente pura de neutrófilos viables para inducir la liberación de TNE, ya que estas células tienen una vida útil ex vivo limitada de 8 h en promedio, un período dentro del cual se deben realizar todos los experimentos. Para ello, la metodología ideal es el gradiente de doble densidad para optimizar el tiempo de purificación mediante el aislamiento de células no activadas más sensibles a la estimulación exógena, en contraste con el gradiente de Ficoll-Histopaque o las técnicas de s.......

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Divulgaciones

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Los autores declaran que no tienen conflictos de intereses.

Agradecimientos

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Este trabajo fue apoyado por una beca de ciencias básicas (#285480) del CONACyT y por el Departamento de Investigación en Inmunología Clínica de la Facultad de Ciencias Bioquímicas de la Universidad Autónoma 'Benito Juárez' de Oaxaca. A.A.A, S.A.S.L, y W.J.R.R. tienen becas doctorales de CONACyT números #799779, #660793 y #827788, respectivamente.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Placa de 24 pocillos para cultivo celularCorning3526
7-aminoactinomicina D (7-AAD)BD Pharmingen51-668981E
96 Placa de pocillos para cultivo celularCostar3596Agitador de fondo plano
CRM GlobeCRM-OS1
Anticuerpo LL37Santa Cruz Biotechnologysc-166770
Sangre tubos de recolecciónBD VACUTAINER368171K2 EDTA 7,2 mg
Carboxifluoresceína succinimidil éster (CFSE)Sigma-Aldrich21878
CentrífugaHettich1406-01
CubreobjetosMadesaM03-CUB-22X2222 mm x 22 mm
Dulbecco´ Solución salina tamponada con fosfato (DPBS)Caisson1201022
Falcon tubos 50 mLTubos430829
Miltenyi Biotec5 mL - Sin tapones
FlowJo SoftwareBD BiosciencesAnalice los datos de citometría
flujo Microscopio de fluorescenciaDM 2000LEICA
Fluoroshield con DAPISigma-AldrichF6057
IncubadoraNUAIREUN-4750
MACSQuanteMiltenyi BiotecCitómetro de flujo
Fotómetro lector de microplacas ClarksonLaboratory - CL
Microtubos 1.5 mLZhejiang Runlab Tech35200Nbroche de alambre
Minitab SoftwareMinitabanálisis estadístico
AgujasBD VACUTAINER301746Diámetro 1,34 mm
Microscopio ópticoVELABVE-B50
PercollGE Healthcare17-0891-01Solución para gradiente de densidad
Solución salina tamponada con fosfato (10x)CaissonPBL07-500ML
Tubos de cultivo PyrexCORNINGCLS982025N° 9820
RPMI 1640 1xCorning10-104-CVcontiene Glutagro
SlidesMadesaPDI25755022 mm x 75 mm
Trypan Blue solution 0.4%SIGMAT8154-100ML
de citometría de flujo CORNING de

Referencias

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  1. De Buhr, N., Maren, K. B. How neutrophil extracellular traps become visible. Journal of Immunology Research. 2016, 4604713(2016).
  2. Karlsson, A., Nixon, J. B., McPhail, L. C.

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Etiquetas

Neutrophil Extracellular TrapsNET MorphologyNET CompositionMicrobial StimulationChemical StimulationDouble Density GradientFlow CytometryFluorescence MicroscopyDNA Protein StructuresNeutrophil Elastase

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