Artículo de método

Inmunofluorescencia dual de γH2AX y 53BP1 en linfocitos periféricos humanos

DOI:

10.3791/65472

14 de julio de 2023

En este artículo

Resumen

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Este protocolo presenta un método para evaluar la formación y reparación de roturas de doble cadena de ADN mediante la detección simultánea de focos γH2AX y 53BP1 en núcleos interfase de linfocitos periféricos humanos tratados con bleomicina.

Resumen

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Las roturas de doble cadena (DSB) son una de las lesiones más graves que pueden ocurrir en los núcleos celulares y, si no se reparan, pueden conducir a resultados graves, incluido el cáncer. Por lo tanto, la célula está provista de mecanismos complejos para reparar DSB, y estas vías involucran histona H2AX en su forma fosforilada en Ser-139 (es decir, γH2AX) y la proteína de unión a p53 1 (53BP1). Como ambas proteínas pueden formar focos en los sitios de los DSB, la identificación de estos marcadores se considera un método adecuado para estudiar tanto los DSB como su cinética de reparación. De acuerdo con los procesos moleculares que conducen a la formación de focos γH2AX y 53BP1, podría ser más útil investigar su colocalización cerca de los DSB para establecer un enfoque alternativo que permita cuantificar los DSB mediante la detección simultánea de dos marcadores de daño en el ADN. Así, este protocolo tiene como objetivo evaluar el daño genómico inducido en linfocitos humanos por el agente radiomimético bleomicina a través de la presencia de focos γH2AX y 53BP1 en una inmunofluorescencia dual. Usando esta metodología, también delineamos la variación en el número de focos γH2AX y 53BP1 a lo largo del tiempo, como un intento preliminar de estudiar la cinética de reparación de los DSB inducidos por bleomicina.

Introducción

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El daño del ADN es inducido continuamente por agentes que pueden ser endógenos, como ROS generados por el metabolismo oxidativo celular, o exógenos, tanto químicos como físicos1. Entre las lesiones más dañinas, las roturas de doble cadena (DSB) juegan un papel fundamental para contribuir a la inestabilidad genómica, ya que causan aberraciones cromosómicas que a su vez pueden iniciar el proceso de carcinogénesis. Por lo tanto, las células están provistas de mecanismos complejos y eficientes de reparación de DSB2.

Cuando se produce un DSB, la célula desencadena la respuesta al daño del ADN (DDR)....

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Protocolo

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El estudio fue aprobado por el comité de ética de la Universidad de Pisa, y se obtuvo el consentimiento informado y firmado de cada donante.

1. Formación de focos γH2AX y 53BP1

  1. Preparación de muestras y tratamiento mutagénico
    1. Recolectar muestras de sangre total por venopunción de individuos adultos sanos en tubos de recolección de sangre (por ejemplo, Vacutainer) que contienen heparina de litio como anticoagulante.
    2. Para garantizar la conservación adecuada de la muestra de sangre, comience el procedimiento dentro de las 24 h posteriores al muestreo.
    3. Añadir 300 μL de la muestra ....

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Resultados

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Los datos obtenidos por el análisis con microscopio de fluorescencia de linfocitos periféricos nos permiten evaluar tres aspectos principales: la efectividad del tratamiento con bleomicina para aumentar el número de focos de γH2AX y 53BP1 (y por lo tanto de DSB) debido a su efecto mutagénico, en qué medida ambos focos colocalizados en el sitio de los DSB, y el curso temporal de los focos de γH2AX y 53BP1 para delinear la cinética de reparación de los DSB inducidos por bleomicina. Como era de esperar, se observó una frecu.......

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Discusión

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El análisis de inmunofluorescencia de los focos γH2AX y 53BP1 es un método adecuado para evaluar el daño genómico en los núcleos de interfase de un sistema celular. Este procedimiento tiene varios puntos críticos que pueden afectar el resultado de los experimentos, principalmente, los agentes utilizados en la fijación y permeabilización, el tipo de anticuerpos y sus factores de dilución, y la concentración del mutágeno.

El mantenimiento de la integridad de las proteínas es fundamental ya que e.......

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Divulgaciones

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Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

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Agradecemos a todos los donantes de sangre y a todo el personal de salud que tomó las muestras de sangre.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AlexaFluor 568 cabra anti-ratón IgG (γ 1)InvitrogenA2112453BP1 anticuerpo secundario
BleoprimSanofisulfato de bleomicina (mutágeno)
Solución de penicilina-estreptomicina 100XEuroclonECB3001Dantibióticos para medio de cultivo
PBS 10XTermofisher14200075Solución salina tamponada con fosfato
FBSEurocloneEC20180LSuero fetal bovino para inmunofluorescencia
IgG (H+L) DyLight 488 ConiugatedTermofisher#35552γ Anticuerpo secundario H2AX
Anticuerpo monoclonal anti-53BP1 de ratónMerckMAB 380253BP1 anticuerpo primario
Labophot 2Microscopio de fluorescenciaNikon
P-histona H2AX (Ser139) anticuerpo de conejoSeñalización celular#2577γ Anticuerpo primario H2AX
FitohemoaglutininaTermofisherR30852801componente del medio de cultivo
Reactivo antidecoloración de oro prolongado con DAPICell Signaling#8961Solución antidecoloración con DAPI para contrarrestar la tinción
RPMI 1640EuroclonECB9006Lmedio de cultivo
Triton-X100SigmaT9284Detergente no iónico para Permeabilización

Referencias

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  1. Chatterjee, N., Walker, G. C. Mechanisms of DNA damage, repair and mutagenesis. Environmental and Molecular Mutagenesis. 58 (5), 235-263 (2017).
  2. Aleksandrov, R., Hristova, R., Stoynov, S., Gospodinov, A. The chromatin response to double-strand DNA breaks and their repair.

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Etiquetas

Focos de gamma H2AX y 53BP1linfocitos humanosroturas de doble cadenamarcadores de da o en el ADNtratamiento con bleomicinacuantificaci n de focoscin tica de reparaci nan lisis de colocalizaci n

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