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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
La evolución casi continua asistida por fagos y robótica (PRANCE) es una técnica para la evolución rápida y robusta de proteínas. La robótica permite la paralelización de experimentos, la monitorización en tiempo real y el control de la retroalimentación.
Las técnicas de evolución acelerada por la robótica mejoran la fiabilidad y la velocidad de la evolución mediante el control de retroalimentación, lo que mejora los resultados de los experimentos de evolución de proteínas y organismos. En este artículo, presentamos una guía para configurar el hardware y el software necesarios para implementar la evolución casi continua asistida por fagos y robótica (PRANCE). PRANCE combina la evolución molecular rápida basada en fagos con la capacidad de ejecutar simultáneamente cientos de experimentos de evolución independientes controlados por retroalimentación. Este documento describirá los requisitos de hardware y la configuración de PRANCE, incluido un instrumento de manejo de líquidos, un lector de placas, bombas auxiliares, calentadores y contenedores impresos en 3D. Describimos cómo configurar el robot de manejo de líquidos para que sea compatible con el software de código abierto basado en Python. Finalmente, proporcionamos sugerencias para los dos primeros experimentos que se pueden llevar a cabo con un sistema PRANCE de nueva construcción que ejercita sus capacidades y valida que el sistema está listo para llevar a cabo la evolución multiplexada. Esta guía está destinada a servir como un manual para navegar por la considerable configuración de equipos asociada con la realización de la evolución acelerada por la robótica.
PRANCE es una combinación de dos poderosas técnicas de evolución dirigida. La primera es PACE1, una técnica molecular que acopla rondas de diversificación y selección de genes al ciclo de vida rápido del bacteriófago M13, lo que permite que se produzcan rondas rápidas de evolución de forma continua en el cultivo de fagos líquidos. Esta selección está impulsada por el uso de un circuito genético codificado por plásmidos que acopla la función de la proteína en evolución a la expresión de pIII, la proteína de la capa de la cola de M13, que es necesaria para la propagación de fagos, esto se ilustra en la Figura 1. A nivel experimental, la dilución continua del cultivo líquido de fagos permite una selección continua. Por lo tanto, la rigurosidad de la selección puede modularse tanto a nivel del circuito génico como a nivel experimental mediante el control de la velocidad de dilución del cultivo de fagos. Por lo tanto, PACE se puede aplicar a cualquier desafío de ingeniería de biomoléculas para el que exista un sensor molecular que pueda detectar la actividad deseada en la bacteria E. coli para inducir la expresión de pIII. Las aplicaciones incluyen la evolución de la unión proteína-proteína 2,3,4, la unión proteína-ADN5, la solubilidad proteica6 y numerosas funciones enzimáticas específicas7. En segundo lugar está la Evolución 8,9 acelerada por la robótica, que utiliza un controlador de retroalimentación para eliminar dos modos de falla comunes de la evolución dirigida: la extinción, que ocurre cuando el entorno es demasiado estricto, y la falta de evolución, que ocurre cuando el entorno es demasiado indulgente. A diferencia del paso en serie de fagos que se realiza en PANCE (Phage-assisted Non-continuous Evolution)7,10, la evolución "casi continua" acelerada por la robótica implica un pipeteo rápido que mantiene los cultivos en la fase media de registro, lo que permite a las poblaciones experimentar ciclos continuos de infección y propagación. Cuando estas dos tecnologías se utilizan juntas, se denominan PRANCE, por Phage and Robotics-assisted Near-continuous Evolution8, que permite una evolución continua robusta, multiplexada y rápida. PRANCE se ha utilizado para evolucionar polimerasas, ARNt y amino-acil ARNt sintetasas y para realizar un control de retroalimentación durante esas evoluciones para mejorar su velocidad y confiabilidad8.
Hay varios detalles de la configuración de hardware y software de PRANCE que permiten el uso de bacteriófagos en un robot de manipulación de líquidos. En lugar de utilizar el software predeterminado proporcionado por el fabricante del robot, utilizamos un paquete de software de código abierto basado en python11, que permite una ejecución rápida y concurrente y, por lo tanto, la capacidad de mantener los biorreactores semicontinuos en la fase intermedia de registro. El tiempo de intervención del investigador puede extenderse a varios días haciendo que varios componentes en cubierta se autoesterilizen de forma rutinaria, y esto se logra con el control automático de las bombas que pueden blanquear y enjuagar estos componentes. La contaminación cruzada de fagos se puede eliminar mediante el uso de un robot de manipulación de líquidos que no utilice puntas de ajuste forzado y un ajuste cuidadoso de la configuración de manipulación de líquidos.
1. Configuración del hardware
NOTA: Consulte la Figura 2 para obtener una descripción general de los componentes de hardware de un sistema PRANCE y la Figura 3 para ver fotos de estos componentes ensamblados físicamente.
2. Preparación del software
3. Preparación previa a la carrera
4. Integración de hardware y software
Resultados de las pruebas de infección
Esta prueba revelará problemas con el cultivo bacteriano, la clonación y el título de fagos, la estabilidad de la temperatura del equipo, la configuración de manejo de líquidos y la integración del lector de placas. Una prueba de infección por fagos exitosa revelará una infección clara y rápida por fagos en las lagunas inoculadas con fagos, y ninguna señal en las lagunas sin fagos. La figura 10 muestra algunos resultados representativos de una prueba de infección por fagos. Los resultados experimentales también pueden compararse con las Figuras 1d y 1c de este artículo PRANCE8, dependiendo de si se está implementando una configuración de "PRANCE caliente" (alimentado por un turbilostato bacteriano vivo) o "PRANCE frío" (alimentado por cultivo refrigerado en fase logarítmica media). Esta prueba puede revelar varios problemas comunes. Los problemas con la preparación del cultivo bacteriano a menudo pueden resultar en una infección débil o ausente. Las bacterias solo pueden ser infectadas de forma óptima por el fago M13 cuando se encuentran en fase logarítmica media y a 37 °C. A otras temperaturas y etapas de crecimiento, exhiben una expresión de pilus más débil y, por lo tanto, son menos susceptibles a la infección por fagos12. La inoculación con fagos de bajo título, o fagos con mutaciones en la columna vertebral puede dar lugar a un retraso o ausencia de señal. Los problemas con los ajustes de ganancia del lector de placas para fluorescencia o luminiscencia se revelarán mediante esta prueba.

Figura 1: Esquema del circuito genético que funciona durante la prueba de infección del aparato PRANCE. Cuando la ARN polimerasa T7, codificada en el genoma del fago, infecta al huésped Escherichia coli , se transcribe y se une al AP en el promotor T7, lo que conduce a la transcripción de la proteína del fago pIII y la proteína luxAB, lo que, a su vez, facilita la propagación del fago y la producción de luminiscencia. Abreviaturas: PRANCE = Evolución Casi Continua Asistida por Fagos y Robótica; AP = plásmido accesorio. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2: Esquema de los componentes físicos del sistema PRANCE. Un refrigerador almacena cultivos agitados, que luego se trasladan a la plataforma del robot mediante una serie de bombas, al depósito bacteriano, "el gofre". El robot de manipulación de líquidos se utiliza para trasladar los cultivos bacterianos desde "el gofre" utilizando el cabezal de pipeteo hasta los pozos de retención para calentarlos hasta la temperatura de incubación, y luego a las lagunas donde se produce la incubación principal. Tanto los pozos de retención como las lagunas son placas estándar de pozos profundos de 2 mL. El robot toma muestras en placas lectoras de un solo uso, que a su vez se trasladan a un lector de placas para su medición. Abreviatura: PRANCE = Evolución Casi Continua Asistida por Fagos y Robótica. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3: El aparato robótico PRANCE. (A) Configuración de PRANCE. (I) Filtro HEPA y calentador externo. II) Refrigerador de cultivo. (III) Recinto principal del robot. (IV) Lector de placas. (V) Bombas y tanques. (B) Recinto del robot. VI) Bombas de cultivo principales. (VII) Tanques de agua, residuos y lejía. (VIII) Bombas lavadoras. (C) Recinto del robot. (IX) Brazo de pipeteo y pinza del robot. (X) Puntas de pipeta. (XI) Componente impreso en 3D para permitir la distribución de cultivos en el robot ("el gofre"). (XII) Placas para la toma de muestras en el lector de placas. (XIII) Cubos para el lavado de puntas. (XIV) "Lagunas": recipientes de cultivo donde se lleva a cabo el cultivo evolutivo. Abreviaturas: PRANCE = Evolución Casi Continua Asistida por Fagos y Robótica; HEPA = aire particulado de alta eficiencia. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4: Disposición de la cubierta. (A) Representación en 3D de la disposición de la cubierta en el software de control del robot. (B) Fotografía de los componentes de la cubierta. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5: Captura de pantalla de la línea de comandos con parámetros de ejemplo (arriba) y software de control de ejecución (abajo). El botón de reproducción se encuentra en la parte superior izquierda y se puede hacer clic con un mouse o accionar con una pantalla táctil según la implementación local. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 6: El archivo de manifiesto del controlador tal como está configurado para las ejecuciones de prueba. Las lagunas que contienen el cultivo #0 estarían en las columnas 1 y 3 de la placa de 96 pozos de profundidad. Las columnas restantes estarían vacías. Las filas A, B, D y E de la placa de 96 pocillos profundos están marcadas en la columna derecha para la infección por fagos (1), las otras filas (0) son controles sin fagos. Esta instancia del manifiesto controlador daría como resultado que el programa diluyera la laguna con 210 μL de cultivo en cada ciclo. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 7: Cálculo de la tasa efectiva de dilución de la laguna utilizando la hoja de cálculo DilutionCalculator. Consulte el Archivo complementario 2 para ver la hoja de cálculo de DilutionCalculator. Como se ve en esta figura, una laguna de 550 μL que se diluye con 210 μL de cultivo fresco cada ciclo de 30 minutos, con muestras de 150 μL para la medición de la placa lectora que se toman cada cuatro ciclos, corresponderá a una tasa de dilución efectiva de 1,0 volúmenes de laguna/h (después de cada 1 h, permanecerá el 50% del líquido original de la laguna al comienzo de la hora) Haga clic aquí para ver una versión más grande de este figura.

Figura 8: Sistema de calefacción del robot. El calentador se activa enchufando la fuente de alimentación como lo indica el círculo rojo. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 9: Configuración del protocolo de descontaminación UV. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 10: Medición de una prueba de infección realizada en el sistema PRANCE. Se toman muestras durante la ejecución y se realizan mediciones de luminiscencia y absorbancia. Para cada laguna, las mediciones de luminiscencia se dividen por la medición de absorbancia correspondiente y se trazan en función del tiempo. Las lagunas que han sido infectadas con fagos están coloreadas en verde, mientras que las lagunas de control no infectadas están coloreadas en negro. Abreviatura: PRANCE = Evolución Casi Continua Asistida por Fagos y Robótica. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Archivo suplementario 1: Archivo STL para imprimir en 3D los componentes de la cubierta personalizados necesarios para el sistema PRANCE, incluidos, como mínimo, el reservorio bacteriano/colector de distribución ("waffle"). Haga clic aquí para descargar este archivo.
Archivo complementario 2: Hoja de cálculo de DilutionCalculator. Haga clic aquí para descargar este archivo.
Los autores no tienen conflictos que revelar.
La evolución casi continua asistida por fagos y robótica (PRANCE) es una técnica para la evolución rápida y robusta de proteínas. La robótica permite la paralelización de experimentos, la monitorización en tiempo real y el control de la retroalimentación.
Agradecemos a Emma Chory y Kevin Esvelt por su ayuda y asesoramiento con la configuración de hardware y software. Samir Aoudjane, Osaid Ather y Erika DeBenedictis cuentan con el apoyo de la Beca para Investigadores Tempranos de Steel Perlot. Este trabajo contó con el apoyo del Instituto Francis Crick, que recibe su financiación principal de Cancer Research UK (CC2239), el Consejo de Investigación Médica del Reino Unido (CC2239) y el Wellcome Trust (CC2239).
| Reservorio bacteriano impreso en 3D "waffle" | - | - | https://drive.google.com/file/d/16ELcvfFPzBzNSto0xUrBe-shi23J9Na7/view; Para |
| la impresora 3D | de cubierta de robotFormLabs Componentes de | la impresora | Form 3B+ |
| 3D Resina de impresora 3D (transparente) | FormLabs | RS-F2-GPCL-04 | consumible para impresora 3D |
| 8-1.000 y micro; Cabeza L | Hamilton | 10140943 | para robot de manejo de líquidos |
| 96-1,000 y micro; L cabezal de pipeteo | Hamilton | 10120001 | para robot de manipulación de líquidos |
| Lector de placas de poliestireno negro microplacas | Millipore Sigma | CLS3603 | para cubierta de robot |
| BMG Labtech Spectrostar FLuorstar Omega | BMG Labtech | 10086700 | para robot de manipulación de líquidos |
| Solución de limpieza | Fluorochem Limited | F545154-1L | utilizado para limpiar las piezas de manipulación de líquidos del robot |
| Placas de pozos profundos | Appleton Woods | ACP006 | se utilizan para contener bacterias en evolución en la cubierta del robot |
| calentador de encolsure | Stego | 13060.0-01 | calienta dentro del recinto del robot |
| Hamilton STAR | Hamilton | 870101 | para Calentador |
| Erbauer | BGP2108-25 | para robot de manipulación de líquidos | |
| HIG Bionex centrífuga | Hamilton | 10086700 | para robot de manipulación de líquidos |
| pinza de placa iSWAP | Hamilton | 190220 | para robot de manipulación de líquidos |
| tubo de laboratorio | Merck | Z280356 | para construir un |
| conector Luer a Lengüeta | de colector de manipulación de líquidosAIEX | B13193/B13246 | para conectorizar tubos |
| Placa de agitación magnética | Camlab | SKU - 1189930 | Para nevera auxiliar |
| Brazo de pipeteo molcular | Hamilton | 173051 | para robot de manipulación de líquidos |
| Omega | BMG labtech | 5.7 | lector de placas software de control |
| Válvulas de retención unidireccionales | Masterflex | MFLX30505-91 | a secciones unidireccionales del colector de manipulación de líquidos |
| pyhamilton | MIT/Código abierto | https://github.com/dgretton/std-96-pace%20PRANCE | software de control de robot python de código abierto |
| pymodbus | opensource | 3.5.2 | python pump software interface |
| Refrigetator | Tefcold | FSC175H | permite utilizar bacterias enfriadas en lugar de turbidostat |
| S2060 Cepa bacteriana | Addgene Addgene: #105064 | E. coli | |
| temperatura controlador | Digiten | DTC102UK | Se utiliza para controlar termostáticamente los calentadores |
| Interruptor de termostato controlador | WILLHI | WH1436A | WILLHI WH1436A 10 A Controlador de temperatura 110 V Interruptor de termostato digital Sous Vide Controlador sous vide Sensor NTC 10K versión mejorada; para robot de manipulación de líquidos |
| Venus | Hamilton | 4.6 | software de control de robot patentado |
| Estación de lavado para MPH 96/384 | Hamilton | 190248 | para robot de manejo |
| líquidos | |||
| Company | Número de catálogo | Notas | Documentación |
| Agrowtek | AD6i Hexa Pump | https://www.agrowtek.com/doc/im/IM_ADi.pdf | |
| Amazon | INTLLAB 12V DC | ||
| Cole-Parmer | EW-07522-3 | Masterflex L/S Unidad digital, 100 RPM, 115/230 VAC | |
| https://pim-resources.coleparmer.com/instruction-manual/a-1299-1127b-en.pdf Cole-Parmer | EW-07554-80 | Masterflex L/S Economy Variador de velocidad, 7 a 200 rpm, 115 VAC | https://pim-resources.coleparmer.com/instruction-manual/a-1299-1127b-en.pdf |