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Medición de la longitud de la cola de Poly A a partir del cerebro y la línea celular de la larva de Drosophila

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DOI:

10.3791/66116

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12 de enero de 2024

 , 
1Department of Biology, University of Nevada, Reno

En este artículo

Resumen

El protocolo describe un método eficiente y fiable para cuantificar la longitud poli(A) del gen de interés del sistema nervioso de Drosophila , que puede adaptarse fácilmente a tejidos o tipos celulares de otras especies.

Resumen

La poliadenilación es una modificación postranscripcional crucial que agrega colas de poli(A) al extremo 3' de las moléculas de ARNm. La longitud de la cola de poli(A) está estrechamente regulada por procesos celulares. La desregulación de la poliadenilación del ARNm se ha asociado con una expresión génica anormal y diversas enfermedades, como el cáncer, los trastornos neurológicos y las anomalías del desarrollo. Por lo tanto, comprender la dinámica de la poliadenilación es vital para desentrañar las complejidades del procesamiento del ARNm y la regulación génica postranscripcional.

Este artículo presenta un método para medir la longitud de la cola de poli(A) en muestras de ARN aisladas de cerebros de larvas de Drosophila y células S2 de Drosophila Schneider. Empleamos el enfoque de relavesa guanosina/inosina (G/I), que implica la adición enzimática de residuos G/I en el extremo 3' del ARNm utilizando poli(A) polimerasa de levadura. Esta modificación protege el extremo 3' del ARN de la degradación enzimática. A continuación, las colas de polietileno (A) protegidas se transcriben a la inversa utilizando un cebador antisentido universal. Posteriormente, la amplificación por PCR se realiza utilizando un oligonucleótido específico del gen que se dirige al gen de interés, junto con un oligonucleótido de secuencia universal utilizado para la transcripción inversa.

Esto genera productos de PCR que abarcan las colas de poli(A) del gen de interés. Dado que la poliadenilación no es una modificación uniforme y da lugar a colas de diferentes longitudes, los productos de PCR muestran una gama de tamaños, lo que da lugar a un patrón de frotis en el gel de agarosa. Por último, los productos de PCR se someten a electroforesis en gel capilar de alta resolución, seguida de la cuantificación utilizando los tamaños de los productos de PCR poli(A) y el producto de PCR específico del gen. Esta técnica ofrece una herramienta sencilla y fiable para analizar las longitudes de la cola de poli(A), lo que nos permite obtener una visión más profunda de los intrincados mecanismos que gobiernan la regulación del ARNm.

Introducción

La mayoría de los ARNm eucariotas están poliadenilados postranscripcionalmente en su extremo 3' en el núcleo mediante la adición de adenosinas no moldeadas por poli(A) polimerasas canónicas. Una cola de poli(A) intacta es fundamental a lo largo del ciclo de vida del ARNm, ya que es esencial para la exportación nuclear de ARNm1, facilita la interacción con las proteínas de unión a poli(A) para mejorar la eficiencia de la traducción2 e imparte resistencia contra la degradación3. En ciertos casos, la cola de poli(A) también puede sufrir una extensión en el citoplasma, facilitada por poli(A) polimerasas no canónicas4. En el citoplasma, la longitud de la cola de poli (A) cambia dinámicamente e influye en la vida útil de la molécula de ARNm. Numerosas polimerasas y deadenilasas son conocidas por modular la longitud de la cola 5,6,7. Por ejemplo, el acortamiento de las colas de poli(A) se correlaciona con la represión de la traducción, mientras que el alargamiento de las colas de poli(A) mejora la traslación 8,9.

Los estudios genómicos acumulados han demostrado la importancia fundamental de la longitud de la cola de poli(A) en varias facetas de la biología eucariota. Esto incluye el papel en el desarrollo de las células germinales, el desarrollo embrionario temprano, la plasticidad sináptica neuronal para el aprendizaje y la memoria, y la respuesta inflamatoria10. Se han desarrollado numerosos métodos y ensayos para medir las longitudes de la cola de poli(A). Por ejemplo, el ensayo RNasa H/oligo(dT) aprovecha la RNasa H en presencia o ausencia de oligo(dT) para estudiar la longitud de la cola de poli(A) 11,12. Otros métodos para estudiar la cola de poli(A) incluyen la amplificación por PCR de los extremos 3', como la prueba de amplificación rápida de los extremos del ADNc (RACE-PAT)12,13 y la prueba de poli(A) mediada por ligasa (LM-PAT)14. Otras modificaciones del ensayo PAT incluyen ePAT15 y sPAT16. El G-tailingenzimático 17,18 o el G/I tailing del extremo 3' son otras variaciones del ensayo PAT. La modificación adicional de estas técnicas incluye el uso de cebadores marcados con fluorescencia junto con electroforesis en gel capilar para el análisis de alta resolución, lo que se conoce como prueba de poli(A) de alta resolución (Hire-PAT)19. Estos ensayos impulsados por PCR permiten una cuantificación rápida y de alta sensibilidad de la longitud del poli(A).

Con el desarrollo de la secuenciación de próxima generación, un método de secuenciación de alto rendimiento, como PAL-seq20 y TAIL-seq21, permite realizar análisis de poliadenilación a escala de todo el transcriptoma. Sin embargo, estos métodos solo proporcionan lecturas cortas de secuenciación de 36-51 nucleótidos. Por lo tanto, FLAM-Seq22 se desarrolló para el perfil global de la longitud de la cola del ARNm de longitud completa y proporciona lecturas largas. La tecnología Nanopore23 proporciona secuenciación directa de ARN o ADNc independiente de la PCR para estimaciones de la longitud de la cola poli(A). Sin embargo, estos métodos de alto rendimiento no están exentos de limitaciones. Requieren grandes cantidades de materiales de partida, son caros y requieren mucho tiempo. Además, el análisis de transcripciones raras puede ser extremadamente difícil con los métodos de alto rendimiento, y los métodos basados en PCR de bajo rendimiento siguen proporcionando una ventaja cuando es necesario analizar un pequeño número de transcripciones, para experimentos piloto y validación de otros métodos.

Recientemente hemos demostrado que los ARNm de Dscam1 contienen colas cortas de poli(A) en Drosophila, lo que requiere una unión no canónica de la proteína de unión a poli(A) citoplasmática en Dscam1 3'UTR utilizando el método de relaves G/I24. Aquí proporcionamos un procedimiento simplificado para la preparación de tejidos y la cuantificación de la longitud poli(A) de los ARNm del sistema nervioso de Drosophila y las células S2 de Drosophila .

Protocolo

1. Cría y selección de larvas de Drosophila

  1. Mantener/cultivar la cepa de mosca (w1118, wildtype) en un medio estándar de alimentación para moscas a 25 °C en una incubadora humidificada.
  2. Seleccione 10 larvas errantes de 3er estadio 72 h después de la puesta de huevos.
  3. Coloque las larvas en una placa de Petri vacía de 35 mm y lávelas suavemente transfiriendo las larvas a la nueva placa que contiene agua del grifo con fórceps. Haga esto 2 veces para eliminar cualquier resto de comida.

2. Aislamiento cerebral de larvas de Drosophila (Figura 1)

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Figura 1: Disección del cerebro de la larva de Drosophila de la etapa de deambulación del3er estadio. (A) Dibujos esquemáticos de la larva de Drosophila. (B-G) Disección de larvas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

  1. Coloque 10 larvas en un plato de disección que contenga PBS helado.
  2. Coloque la larva con el lado dorsal hacia arriba (identificado por los tubos traqueales que corren a lo largo de su longitud) y sujete cada extremo al fondo del plato, seguido de hacer una pequeña incisión en la pared del cuerpo en el extremo posterior.
  3. Corta la pared del cuerpo a lo largo de la línea media dorsal hacia el extremo anterior con unas tijeras de microdisección.
  4. Enjuague brevemente el interior de la larva con una pipeta Pasteur 3x con PBS en el plato para exponer el cerebro.
  5. Localice y levante el cerebro con las pinzas y aíslelo cuidadosamente con unas tijeras de microdisección.
  6. Transfiera los cerebros disecados a un tubo de microcentrífuga de 1,5 ml lleno de PBS helado en hielo; Recoge todos los cerebros de larvas. Proceda con la extracción de ARN utilizando un kit de micropreparación de ARN como se describe en la sección 4.
    NOTA: Realice una disección de 10 larvas en 15 minutos para evitar daños en los tejidos y la degradación del ARN.

3. Células de Drosophila S2 Schneider

  1. Cultivar células de Drosophila S2 en medio de Drosophila Schneider suplementado con suero fetal bovino (FBS) al 10% a 25 °C en una incubadora humidificada hasta una densidad de 8 × 106 a 10 × 106 células/ml con un mínimo de 90% de viabilidad.
  2. En un tubo cónico estéril de 50 ml, diluir las células a 2,5 × 106 células/ml con medio Drosophila de Schneider suplementado con FBS al 10% que se ha precalentado a 25 °C.
  3. Transfiera 8 mL de la suspensión celular (20 × 106 células) a una placa de cultivo de 100 mm y agregue 4 mL de medio para llegar a 12 mL (día 1).
  4. Incubar las células cultivadas a 25 °C en una incubadora humidificada.
    NOTA: Las células se adhieren libremente a la placa después de 12-16 h (día 2).
  5. Transfectar las células con plásmidos de ADN apropiados24.
  6. Incubar durante 48 h en una incubadora humidificada.
  7. Después de la incubación, recoja las células añadiendo 5 ml de PBS helado mediante un pipeteo suave (día 4).
  8. Transfiera las células a un tubo de 15 ml.
  9. Granular las células centrifugando a 1.000 × g durante 5 min a 4 °C.
  10. Enjuague las células 2 veces con PBS helado mediante un pipeteo suave y recoja las células centrifugando a 1.000 × g durante 5 min a 4 °C.
  11. Realice la extracción de ARN con un kit de minipreparación de ARN.
    NOTA: Realice los siguientes pasos dentro de una campana de flujo laminar estéril.

4. Extracción de ARN total del cerebro de las larvas de Drosophila y de las células S2

  1. Cerebro larvario: Eliminar el PBS mediante centrifugación breve (centrifugado corto de 8 s a 5.000 × g).
  2. Añadir 600 μL de tampón de lisis de ARN y homogeneizar 10x con un mortero de plástico. Inspeccione visualmente el tubo bajo un microscopio estereoscópico para garantizar una lisis completa.
  3. Centrifugar a 1.000 × g durante 5 min a 4 °C para eliminar los restos de tejido. Transfiera el sobrenadante aclarado a un tubo de microcentrífuga libre de nucleasa.
  4. Aísle el ARN con un kit de micropreparación de ARN de acuerdo con las instrucciones del fabricante.
    NOTA: El uso de un kit de micropreparación de ARN es esencial para las muestras de cerebro larvario debido a la pequeña cantidad de ARN presente en las muestras.
  5. Celdas S2: Retire el PBS y aísle el ARN de acuerdo con las instrucciones del fabricante.
  6. Mida el rendimiento y la calidad del ARN mediante espectrofotometría y electroforesis en gel de agarosa.
    1. Determine la pureza y la cantidad de ARN extraído midiendo la densidad óptica del ARN extraído a A260 nm y A280 nm, respectivamente. Asegúrese de que la relación A260 nm/A280 nm sea ≥2,0 y que la concentración de ARN sea de >350 ng/μL para aplicaciones posteriores.
      NOTA: Un rendimiento típico de ARN de 10 cerebros de larvas de Drosophila es de ~500-800 ng/μL o 2,5-4 μg en 5 μL. Para las células S2, el rendimiento es de ~2-3 μg/μL (15-30 μg en 15 μL). El ARN aislado puede almacenarse a -80 °C para su almacenamiento a largo plazo.

5. Preparación del gel de ARN y electroforesis

  1. Gel de ARN desnaturalizante al 1,5% (100 ml)
    NOTA: El formaldehído es tóxico a través del contacto con la piel y la inhalación de vapores; Manéjelo en una campana de extracción química.
    1. Disuelva tres comprimidos de agarosa (1,5 g) en 82 ml de tampón MOPS (Archivo suplementario 1) hasta que los comprimidos se rompan por completo para formar partículas finas.
    2. Calienta la suspensión de agarosa en un microondas hasta que la solución esté clara y todas las partículas se disuelvan por completo.
    3. Enfriar la solución a ~60 °C.
    4. Agregue 18 ml de formaldehído al 37%, luego mezcle agitando suavemente. Vierta la solución en la bandeja de fundición y deje que se solidifique en una campana extractora.
  2. Preparación de muestras de ARN y electroforesis
    1. Diluir la muestra de ARN a 200 ng (en 5 μL) y añadir 5 μL de colorante de carga de ARN 2x.
    2. Calentar las muestras a 70 °C durante 5 min en un baño seco.
    3. Cargue 2 μL de escalera de ARN en el primer carril y 10 μL de muestras en los carriles adyacentes.
    4. Realizar electroforesis en tampón MOPS a 100 V durante 60 min para un gel de 5 x 6 cm.
      NOTA: Ajuste las condiciones de electroforesis en función de los tamaños de los amplicones.
    5. Visualiza el gel en un transiluminador UV.
      NOTA: La presencia de un tamaño de nucleótido de ~600 bandas individuales indica una preparación de ARN intacta (consulte la Figura 2A).

6. Medición de la longitud de la cola de Poly (A)

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Figura 2: Preparación de la muestra de ARN y ensayo de cola de poli(A). (A) Las imágenes de gel de ARN muestran el ARN total del cerebro de la larva de Drosophila (izquierda) y las células S2 (derecha) en un gel de agarosa con formaldehído al 1,5%. Los tamaños de la escalera de ARN monocatenario se muestran en nucleótidos en el carril M. Obsérvese una banda de ARN importante a ~600 nt, que proviene del ARNr. (B) Esquemas del ensayo de cola de poli(A). Abreviatura: G/I = guanosina/inosina. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

  1. Relaves GI (Figura 2B)
    1. Manteniendo los reactivos en hielo, prepare la siguiente mezcla (20 μL): hasta 14 μL de muestra total de ARN (1 μg), 4 μL de 5x Mezcla de tampón de cola y 2 μL de mezcla de enzimas de cola 10x.
    2. Incubar a 37 °C durante 60 min en un termociclador.
    3. Añadir 1,5 μL de la solución de tope de cola; Mantener en hielo durante 2 min.
      NOTA: Proceda a la transcripción inversa o almacene las muestras de ARN con cola GI a -80 °C hasta que estén listas para proceder a la transcripción inversa.
  2. Transcripción inversa y amplificación por PCR
    1. Sintetizar ADNc preparando la mezcla e incubándola en las condiciones descritas en el Archivo Suplementario 1.
    2. Diluir las muestras de ADNc y realizar la PCR para amplificar el ADN como se indica en el Archivo Suplementario 1.

7. Análisis del producto de PCR mediante electroforesis en gel de agarosa

  1. Analice una pequeña porción (2-5 μL) de los productos de PCR del paso 6.2.2 en un gel de agarosa al 2,5% mediante electroforesis a 100 V durante 45 min para el control de calidad.
  2. Verificar la especificidad de la PCR para reacciones específicas de genes y de cola mediante la secuenciación de las bandas de PCR extraídas en gel.

8. Electroforesis capilar

  1. Realice electroforesis en gel de alta resolución en 1 μl de productos de PCR (0,5-5 ng/μl) a partir de PCR específica de genes y poli(A) utilizando el bioanalizador con un kit de ADN de alta sensibilidad. Busque picos bien resueltos que indiquen una ejecución exitosa.

9. Análisis de datos: medición de la longitud de la cola poli(A) (Figura 3)

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Figura 3: Medición de la longitud de la cola de Poly(A) y del valor máximo. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

  1. Acceso a los datos
    1. Para acceder a los datos, abra el archivo xad en el software.
    2. Seleccione el nombre de la muestra o la escalera en el panel de vista de árbol.
      NOTA: Esto mostrará el resultado como electroferogramas o imágenes gelatinosas para las muestras seleccionadas. El marcador inferior 35 par de bases (pb) y el marcador superior 10.380 pb son los estándares internos utilizados para alinear los datos de la escalera (50-7.000 pb) con los datos de los pocillos de muestra.
    3. Acérquese y aléjese de los electroferogramas y las imágenes gelatinosas para mostrar los detalles.
  2. Realización de análisis de picos y frotis
    1. Para obtener los tamaños de pico, abra el electroferograma de una muestra seleccionada.
    2. Haga clic con el botón derecho en el electroferograma y seleccione integración manual para seleccionar manualmente los picos arrastrando la línea horizontal.
    3. Observe los valores máximos de la tabla Picos. Identifique el pico con la mayor altura de pico. Este es un pico de longitud de cola de poli(A) para una muestra individual. En el ejemplo mostrado, es de 346 pb.
    4. Habilite el icono Mostrar/Ocultar puntos de ajuste en el menú superior y espere a que aparezca un nuevo panel en el lado derecho.
    5. Seleccione Avanzado, desplácese hacia abajo hasta encontrar Realizar análisis de frotis y active la casilla de verificación. Esto agregará la tabla Región a la pestaña de electroferograma.
    6. Seleccione un electroferograma de una muestra y vaya a la tabla Región, que muestra el menú Desde [bp] y Hasta [bp]. Para establecer el inicio y el final [bp], haga clic con el botón derecho en el electroferograma y seleccione Región para agregar Agregar región.
    7. Haga clic con el botón derecho en cualquier celda de la tabla Región y seleccione Modificar regiones para que aparezca una pequeña ventana nueva donde se pueden establecer regiones personalizadas.
      NOTA: Por ejemplo, utilizamos una región de 300 pb a 550 pb para GAPDH. La PCR GAPDH específica del gen arrojó un pico de 265 pb. El cebador universal (Tabla 1) extiende la longitud de la PCR poli(A) en 35 pb a través del recocido a los ARN de cola G/I. Por lo tanto, el primer nucleótido de adenina en el ARN GAPDH comienza a 300 pb (265 + 35). Limitamos arbitrariamente la longitud máxima de la cola de poly(A) a 250 (300 + 250 = 550). A partir de la tabla de regiones, el programa devuelve el tamaño promedio dentro de la región como 387 pb.
    8. Utilice la ecuación (1) para calcular la longitud de la cola de poli(A) en el ARNm de interés:
      Longitud de la cola de Poly(A) = (A - B - 35) (1)
      Donde A es el promedio de pb del producto de PCR específico de poli(A) del electroferograma (es decir, 387 pb para GAPDH), B es el pb máximo del producto de PCR específico del gen del electroferograma (es decir, 265 pb para GAPDH) y "35" es la longitud de la etiqueta de cebador inverso universal.
      NOTA: A partir del cálculo anterior, la longitud media de la cola de poli(A) de GAPDH es de 387 - 265 - 35= 87 pb.

10. Visualización de la distribución de la longitud de la cola de poli(A)

  1. Exportar datos como un archivo csv en Archivo | Exportación | Datos de ejemplo para recuperar datos de ejemplo.
    NOTA: El archivo csv exportado muestra el tiempo de ejecución en lugar de bp en el eje X.
  2. Vaya a un electroferograma de una muestra y marque Mostrar tamaños en la pestaña Electroferograma para convertir automáticamente la tabla de regiones en la tabla de regiones de bp a tiempo de ejecución. En el ejemplo, de 70,39 s a 86,28 s corresponden a 300 pb a 550 pb.
  3. Abra el archivo csv y seleccione los valores de 70,39 s a 86,28 s de tiempo de ejecución para generar un gráfico. Para visualizar los tamaños de pb en el eje X del gráfico, exporte el electroferograma con los tamaños de pb como un archivo de imagen y superpóngalo en el gráfico generado en la hoja de cálculo. Esto coincidirá adecuadamente con los tamaños de pb en la distribución de la cola de poli(A).

Resultados

Aquí, analizamos la longitud de la cola de poli(A) de Dscam1 y GAPDH de cerebros de larvas de Drosophila (Figura 4). Los ARN aislados se visualizaron en un gel de agarosa para el control de calidad. Una sola banda de ARN con un tamaño de alrededor de 600 nucleótidos indica una preparación de ARN intacta (Figura 2A). Los ARN se sometieron a la electroforesis capilar de alta resolución y a la electroforesis capilar de alta resolución utilizando un bioanalizador Agilent 2100. Las imágenes de gel se exportaron con el software Agilent 2100 Expert y se ensamblaron en consecuencia. Los productos de PCR de los pares de cebadores específicos de genes GAPDH y Dscam1 mostraron una sola banda distinta, mientras que los de los pares de cebadores específicos de genes/universales mostraron patrones de frotis distintos (Figura 4A y Tabla 1), lo que indica una longitud diferencial de poli(A) de los ARNm de GAPDH y Dscam1 . En la Figura 4B, se utilizó el análisis de frotis para obtener las longitudes medias de la cola de poli(A) de GAPDH y Dscam1. Los electroferogramas se exportaron y modificaron para representar las longitudes de la cola de poli(A) (Figura 4C).

De manera similar, realizamos un análisis de la longitud de la cola de poli(A) en las células S2 (Figura 5). Para determinar el papel de Dscam1 3'UTR en el acortamiento de las colas de poli(A), las células S2 se transfectaron con los plásmidos de ADN que contenían la región codificante de Dscam1 con SV40 3'UTR o Dscam1 3'UTR. Se seleccionó el SV40 3'UTR mínimo para el control de Dscam1 3'UTR ya que SV40 3'UTR se ha utilizado ampliamente como una señal mínima de terminación de transcripción y poliadenilación para plásmidos de ADN recombinante. El ARN total se extrajo y se sometió a RT-PCR, relé G/I y electroforesis capilar de alta resolución (Figura 5). El resultado muestra que la distribución de la longitud de la cola poli(A) del plásmido SV40 3'UTR siguió un patrón similar al del GAPDH endógeno, mientras que la distribución de la longitud de la cola poli(A) del plásmido Dscam1 3'UTR siguió un patrón similar al del ARNm Dscam1 endógeno de los cerebros larvarios.

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Figura 4: Medición de la longitud de la cola de Poly(A) de GAPDH y Dscam1 a partir de los cerebros de las larvas. (A) La electroforesis en gel capilar resuelve el producto de PCR específico del gen como una banda discreta (primer y segundo carril) para GAPDH2 y Dscam1. El producto de PCR que utiliza imprimación inversa universal muestra una distribución de frotis (tercer y cuarto carril). * Banda no específica. (B) Las longitudes medias de la cola de poli(A) se calcularon mediante el análisis de frotis. (C) La distribución de la longitud de la cola poly(A) se reconstruyó a partir del archivo csv exportado. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 5: Medición de la longitud de la cola de Poly(A) del plásmido de ADN Dscam1 transfectado. Las células cultivadas de Drosophila S2 se transfectaron conjuntamente con las construcciones Dscam1 que contienen la región codificante de Dscam1 y la 3′UTR de Dscam1 o SV40. (A) Las imágenes de electroforesis en gel capilar se muestran para el producto de PCR específico del gen como una banda discreta (primer y segundo carril) para SV40 (Dscam1-SV40 3'UTR) y Dscam1 (Dscam1-Dscam1 3'UTR). El producto de PCR que utiliza imprimación inversa universal muestra un patrón de frotis (tercer y cuarto carril). * Banda no específica. (B) Las longitudes medias de la cola de poli(A) se calcularon mediante el análisis de frotis. (C) La distribución de la longitud de la cola poly(A) se reconstruyó a partir del archivo csv exportado. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Dscam1
Imprimación delantera (5'-3') CGCAGCCACAACAATTGAATG
Imprimación inversa (5'-3') AAATAAAAATCAAAATCATATATTTAGCAACTTATGAAC
SV40
Imprimación delantera (5'-3') CCACAAAGGAAAAAGCTGCAC
Imprimación inversa (5'-3') TTTATTTGTGAAATTTGTGATGCTATTGCTTTTTTTTG
GAPDH
Imprimación delantera (5'-3') CACTTCAGAAACGGCCTGAAAATGGC
Imprimación inversa (5'-3') AATATTTAAATGCTTATGAGTCGGCATTTTTAAAACTAC
Imprimación inversa universal
Imprimación inversa (5'-3') GGTAATACGACTCACTATAGCGAGACCCCCCCCCCTT

Tabla 1: Imprimaciones utilizadas en este protocolo.

Archivo complementario 1: Composición de soluciones y configuración de PCR. Haga clic aquí para descargar este archivo.

Discusión

En este protocolo, describimos la técnica para diseccionar el cerebro de la larva de Drosophila de la etapa errante del3er estadio, así como la preparación de la muestra de células de Drosophila S2. Debido a la naturaleza lábil de los ARNm, la recolección de muestras requiere precaución adicional. Para la disección del cerebro de las larvas, los cerebros no deben dañarse durante el aislamiento y no deben mantenerse en solución durante un período prolongado. Es esencial mantener el tiempo de disección en 8-10 minutos para una ronda de disección. También puede ser beneficioso complementar la solución de disección con inhibidores de la ARNasa. En cuanto al cultivo y transfección de células S2, realice todos los pasos en la campana de flujo laminar.

El paso de aislamiento del ARN requiere una consideración adicional. Recomendamos utilizar un espacio limpio de tipo flujo laminar que esté pretratado con soluciones de eliminación de RNasa. Además del rendimiento de ARN, es esencial comprobar la integridad del ARN para asegurarse de que la muestra no se ha degradado durante los pasos de disección y aislamiento. La integridad del ARN se puede visualizar mediante electroforesis en gel de agarosa desnaturalizante. El ARN total de Drosophila exhibe un perfil de bandas único porque el ARNr 28S se disocia en dos subunidades de igual tamaño, que comigran con el ARNr18S 25. Esto se puede ver como una sola banda de alrededor de 600 nucleótidos cuando se usa una escalera de ARN monocatenario (Figura 2A).

Las muestras de ARN aisladas se someten a la cola G/I (Figura 2B). Los residuos de guanosina e inosina se agregan en el extremo 3' de los ARN por la poli(A) polimerasa (PAP) de levadura 17, que preserva el extremo 3' del ARN de la degradación enzimática. Los ARN de longitud completa protegidos por la etiqueta G/I recién sintetizados se transcriben a la inversa para producir muestras de ADNc utilizando el cebador inverso universal (C10T2 marcado con 3'). Seguido de una PCR con los cebadores directos/inversos específicos del gen justo aguas arriba del sitio de poliadenilación para generar un producto de PCR que muestra una banda afilada. Las reacciones de PCR de un cebador directo específico de un gen y los cebadores inversos universales generan longitudes indefinidas de moléculas de ADN como una mancha en el gel, que refleja longitudes variables de colas de poli(A). Los productos de PCR se analizaron posteriormente mediante electroforesis en gel capilar.

Al diseñar cebadores, es importante tener en cuenta que el tamaño del amplicón con cebadores directos/inversos específicos del gen debe estar en el rango de 50-300 pb. Probar múltiples cebadores delanteros brinda la oportunidad de encontrar el mejor cebador que funcione para la evaluación de la cola de poli(A). Recomendamos diseñar un cebador inverso para productos específicos de genes justo aguas arriba del sitio de inicio de poli(A) predicho, ya que esto brinda la oportunidad de realizar un cálculo sencillo de las longitudes de las colas de poli(A). Al realizar reacciones de PCR, es importante realizar un "control sin transcriptasa inversa" para descartar la amplificación a partir de ADN genómico contaminado. Se recomienda encarecidamente la optimización de la PCR con un gradiente de temperatura de recocido. Dada la naturaleza de esta metodología, el análisis de las longitudes de la cola de poli(A) de especies de ARNm alternativamente poliadeniladas requiere una consideración adicional. Por ejemplo, muchos genes se someten a poliadenilación alternativa para generar diferentes especies de 3'UTR26. Recomendamos utilizar diferentes juegos de cebadores de PCR para estudiar especies individuales de 3'UTR.

Recomendamos encarecidamente incluir el producto de PCR específico del gen en la electroforesis en gel capilar en cada ejecución, ya que existe una diferencia de migración potencial de unos pocos nucleótidos en cada ejecución. Es esencial que se utilice el tamaño real del par de bases de la PCR específica del gen en lugar de los tamaños teóricos al calcular la longitud de la cola de poli(A).

Algunos ARN sufren modificaciones postranscripcionales adicionales, incluida la uridilación terminal27. El método de cola G/I puede no ser adecuado para medir la longitud de la cola de poli(A) cuando el ARNm está uridilado. Esto se debe a que el cebador inverso universal puede no amplificar de manera eficiente las especies de ARNm que tienen nucleótidos no adenina en su extremo 3'. La cola G/I es un método basado en PCR, que potencialmente crea un sesgo no deseado al amplificar fragmentos más cortos de manera más eficiente. Por lo tanto, los usuarios deben ser cautelosos al interpretar el resultado.

Usando el método presentado aquí, demostramos que el relojo G/I se puede usar de manera eficiente para medir la longitud de la cola de poli(A) del sistema nervioso de Drosophila y las células S2. El método es altamente cuantitativo cuando se combina con electroforesis capilar. Si bien los análisis de alto rendimiento proporcionan un análisis global de la cola de poli(A), el método de cola G/I basado en PCR de bajo rendimiento sigue siendo muy útil para el análisis de transcripción única, los experimentos piloto y la validación de otros métodos. En resumen, la elección del método depende de las preguntas y objetivos específicos de la investigación. Los investigadores deben seleccionar el método que mejor se adapte a sus necesidades y recursos experimentales.

Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de intereses que revelar.

Agradecimientos

Este estudio fue financiado por el Instituto Nacional de Trastornos Neurológicos y Accidentes Cerebrovasculares (National Institute of Neurological Disorders and Stroke Grant R01NS116463 to J.K., y el Centro de Imágenes Celulares y Moleculares de la Universidad de Nevada, Reno, que contó con el apoyo de los Institutos Nacionales de Salud Grant P20GM103650 y se utilizó para la investigación informada en este estudio.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Ácido 3-(N-morfolino) propanosulfónico (MOPS)Productode investigación Internacional (RPI)M92020
Kit de ADN de alta sensibilidad AgilentAgilent Technologies  5067-4626
Agilent software 2100 experto descarga gratuita demoAgilent Technologieshttps://www.agilent.com/en/product/automated-electrophoresis/bioanalyzer-systems/bioanalyzer-software/2100-expert-software-228259
Apex 100 bp-Low DNA LadderGenesee Scientific19-109
BioanalyzerAgilent 2100 Bioanalyzer G2938C
Pirocarbonato de dietilo (DEPC)Investigación de productos internacionales (RPI) D43060
Tinte de ADN (Tinte de carga de gel, púrpura (6x)New England biolabs B7024S
Drosophila S2 línea celularDrosophila Genomics Resource Center stock #181
Drosophila Schneider' s MedioThermo Fisher Scientific21720024
Bromuro de ehidioGenesee scientific 20-276
Suero fetal bovino (FBS)Sigma-AldrichF4135
Pinzas Dumont 5   Herramientas de Bellas Ciencias 11254-20
Agua libre de nucleasaThermo Fisher Scientific AM9932
PBS 10xInvestigación Interna de Productos (RPI) P32200
Kit de ensayo de longitud de cola Poly(A)Thermo Fisher Scientific 764551KT
RiboRuler Escalera de ARN de bajo rangoThermo Fisher Scientific SM1833
Colorante de carga de gel de ARN (2x)Thermo Fisher Scientific R0641
Kit de micropreparación de ARNZymoresearch R1050 
Kit de minipreparación de ARNZymoresearch Tijeras R1055-Tijeras
de resorte Vannas - 2,5 mm Herramientasciencia fina de filo15000-08
TopVision Tabletas de AgarosaThermo Fisher ScientificR2802
Tris-Acetato-EDTA (TAE)Thermo Fisher ScientificB49
de

Referencias

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