Método fluorescente sin células, cuantificable y económico, para confirmar la capacidad de nuevos compuestos para quelar el hierro

Resumen

Describimos un ensayo fluorescente que puede confirmar de forma rápida y económica la capacidad de nuevos compuestos para quelar el hierro. El ensayo mide la capacidad de los compuestos para superar la actividad de unión al hierro de la sonda fluorescente quelante de hierro débil Calceína, lo que resulta en un aumento cuantificable de la fluorescencia cuando se produce la quelación.

Resumen

Las células cancerosas requieren grandes cantidades de hierro para mantener su proliferación. El metabolismo del hierro se considera un sello distintivo del cáncer, lo que hace que el hierro sea un objetivo válido para los enfoques anticancerígenos. El desarrollo de nuevos compuestos y la identificación de pistas para su posterior modificación requiere que se lleven a cabo ensayos de prueba del mecanismo. Hay muchos ensayos para evaluar el impacto en la proliferación; Sin embargo, la capacidad de quelar el hierro es una medida importante y a veces pasada por alto debido a los altos costos del equipo y al desafío de cuantificar rápida y reproduciblemente la fuerza de la quelación. Aquí, describimos un método fluorescente sin células cuantificable y económico para confirmar la capacidad de nuevos compuestos para quelar hierro. Nuestro ensayo se basa en el colorante fluorescente barato Calceína, disponible en el mercado, cuya fluorescencia se puede cuantificar en la mayoría de los lectores de placas fluorescentes de microtitulación. La calceína es un quelante débil del hierro, y su fluorescencia se apaga cuando se une al Fe^2+/3+; la fluorescencia se restablece cuando un nuevo quelante supera a la calceína por el Fe^2+/3+ unido. La eliminación del enfriamiento fluorescente y el aumento resultante de la fluorescencia permite determinar la capacidad de quelación de un nuevo quelante putativo. Por lo tanto, ofrecemos un ensayo económico y de alto rendimiento que permite la detección rápida de nuevos compuestos quelantes candidatos.

Introducción

Los cambios fenotípicos en las células que se relacionan con el desarrollo del cáncer a través de un conjunto común de capacidades biológicas alteradas ahora se conocen comúnmente como las características distintivas del cáncer. Entre ellos se encuentran los cambios resultantes de la reprogramación del metabolismo energético, que están muy extendidos en la biología de las células^{cancerosas 1}. Dicha reprogramación metabólica incluye un mayor requerimiento de hierro para apoyar la rápida proliferación y el crecimiento^{tumoral 2}. Esta sed de hierro conduce a un metabolismo del hierro desregulado, que en sí mismo se considera un sello distintivo del cáncer ^3,4, con una desregulación que ocurre en todas las etapas⁵. Las características distintivas de la metástasis, propuestas más recientemente por Welch y Hurst, incluyen un papel para el hierro⁶, ya que el hierro puede inducir estrés oxidativo, y esto puede, a su vez, mediar cambios en el genoma, el epigenoma y el proteoma, aumentando la posibilidad de metástasis⁷. La relación entre los niveles de hierro y una mayor incidencia de cáncer ha sido demostrada a través de estudios epidemiológicos⁸.

Dado que las células cancerosas requieren grandes cantidades de hierro, son susceptibles a la deficiencia de hierro y, por lo tanto, a la quelación del hierro. Recientemente hemos publicado un artículo de revisión que destaca el potencial de la quelación del hierro para revertir varias características distintivas del cáncer a través de NDRG1 que interrumpe las vías de señalización oncogénica⁹. Sin embargo, el uso de la quelación del hierro como terapia oncológica independiente no ha arrojado resultados positivos en los ensayos clínicos debido a su toxicidad, su corta vida media, su rápido metabolismo y sus nuevos mecanismos de resistencia. Sin embargo, los quelantes de hierro se han mostrado prometedores en investigaciones in vitro e in vivo , lo que indica que se necesita más trabajo para desarrollar quelantes de hierro efectivos para la terapia del cáncer. La quelación específica del hierro es una estrategia validada en el descubrimiento de fármacos contra el cáncer, pero hasta la fecha solo se han descrito unas pocas clases¹⁰.

La identificación y caracterización de nuevos quelantes de hierro requiere la capacidad de medir su efecto en varios criterios de valoración. Muchos de ellos (como la proliferación, la apoptosis, la formación de especies reactivas de oxígeno) se miden de forma rutinaria y han sido esbozados y revisados en la literatura como métodos para evaluar las características distintivas del cáncer¹¹. Al evaluar un nuevo quelante de hierro, muchos grupos examinan rutinariamente el efecto sobre las actividades antiproliferativas y redox, así como los efectos sobre la afluencia o el flujo de hierro. Las técnicas de predicción in silico ¹² aumentan aún más la creciente reserva de quelantes de hierro que se pueden analizar.

La creación dequelantes de hierro requiere la capacidad de medir su efecto sobre los niveles de hierro como un medio para demostrar efectivamente la prueba de principio. Actualmente, el método más común para hacerlo es la citometría de flujo¹³ , que es costosa, requiere mucho tiempo y es poco cuantificable. La elección del ensayo a menudo se basa en la disponibilidad de equipo experimental, la velocidad y el costo de un ensayo. Por lo tanto, la capacidad de quelar el hierro puede ser una medida final que se pasa por alto debido a los altos costos de los equipos y al desafío de cuantificar rápida y reproduciblemente la fuerza de la quelación. Aquí, describimos un método fluorescente libre de células cuantificable y económico para confirmar la capacidad de nuevos compuestos para quelar hierro.

Protocolo

1. Preparación de la solución madre

1. Al preparar soluciones de calceína, evite la fotodegradación manteniendo las soluciones en la oscuridad. Prepare una solución de 1 mM de calceína en el PBS de Dulbecco, sin magnesio ni calcio¹⁴. Para 5 mL de solución de calceína 1 mM, agregue 3,1 mg de Calceína (622,5 g/M) a 5 mL de PBS de Dulbecco. Usando el calcetín de 1 mM de Calceína, prepare 1 mL de alícuotas de soluciones madre secundarias en un tubo de microfuga como se detalla en la Tabla 1.
2. Prepare las reservas de sulfato de amonio férrico hexahidratado disolviendo 19 mg de hexahidrato de FAS (392,1 g/M) en 5 mL de PBS de Dulbecco para obtener una solución de 10 mM de sulfato de amonio férrico (FAS). Preparar existencias secundarias de FAS por dilución. Para preparar un stock de 2 mM FAS (fA), diluya 200 μL del stock de 10 mM FAS con PBS con 800 μL de PBS de Dulbecco. Para preparar un caldo de 100 μM de FAS (fB), diluya 50 μL de caldo fA con 950 μL de PBS de Dulbecco.
3. Para preparar 10 mM de caldo de deferiprona, disuelva 2,8 mg (139,15 g/M) en 2 mL de PBS de Dulbecco. Prepare existencias secundarias de quelante de hierro de 2 mM diluyendo 200 μL de la reserva de 10 mM con 800 μL de PBS de Dulbecco.
   NOTA: En este ensayo, el quelante de hierro de elección debe disolverse en el PBS de Dulbecco sin magnesio ni calcio. Como ejemplo de trabajo, utilizamos el quelante de hierro Deferiprone.

2. Validación del ensayo mediante la determinación del rango lineal de la fluorescencia de la calceína

1. Prepare un rango de calceína de 1 mM a 1 μM como se describe en la tabla de soluciones madre (ver Tabla 1). Mantenga las soluciones madre en la oscuridad para evitar la degradación fotoquímica.
2. Pipetear 90 μL de solución salina tamponada con fosfato (PBS) en los pocillos de la A a la H y del 1 al 12 de una placa de 96 pocillos utilizando una pipeta manual monocanal o una pipeta manual multicanal.
3. Añada 10 μl de calceína 1 mM en la columna 12, filas de la A a la H, de la placa de 96 pocillos utilizando una pipeta manual de un solo canal.
4. Añada 10 μL del caldo de calceína de 800 μM preparado previamente (Tabla 1) a una placa de 96 pocillos en la columna 11, filas de la A a la H, utilizando una pipeta manual de un solo canal.
5. Repita el procedimiento de adición con las existencias de la Tabla 1 de modo que la columna 10 contenga 10 μL de las 400 μM de las 400 μM y la columna 9 contenga 10 μL de las 200 μM de las existencias, etc. Continúe este procedimiento paso a paso a través de las columnas hasta que la columna 2 contenga 10 μL del caldo de 1 μM.
   NOTA: La concentración final de calceína en cada pocillo es 10 veces menor que las soluciones madre debido a la dilución 1:10.
6. Agregue 10 μL de PBS a la columna 1, filas de la A a la E.
7. Incubar a temperatura ambiente durante 30 min y ajustar el analizador en un lector de microplacas a una excitación de 490 nm y una detección de 530 nm (o un conjunto de filtros adecuado para fluorescencia Calcien).

3. Validación del ensayo medianteenfriamiento iónico de Fe²⁺ para reducir la fluorescencia de la calceína

1. Prepare un stock de calceína (cB) de 10 μM y un stock de FAS (fA) de 2 mM (ver Tabla de Materiales). Mantenga la culata de calceína en la oscuridad para evitar la fotodegradación.
2. Con una pipeta manual monocanal o una pipeta manual multicanal, añada 50 μl de PBS en las columnas 2 a 10, filas de la A a la E. No agregue PBS a la columna 11.
3. Añada 100 μL de un stock FAS (fA) de 2 mM en una placa de 96 pocillos en la columna 11 (filas A a E) utilizando una pipeta manual de un solo canal.
4. Con una pipeta manual multicanal, extraiga 50 μL de fA de la columna 11 y pipetee en el PBS que ya está en la columna 10, mezcle bien mediante pipeteo.
5. Continúe este procedimiento de doble dilución escalonada a través de las columnas 9-2, filas A a E de la placa de 96 pocillos, y mezcle mediante pipeteo.
6. Retire 50 μL de solución pipeteando de la columna 2 y deseche la solución a los desechos.
7. Agregue 40 μL de PBS en todos los pocillos con una solución en ellos, columnas 2-12, filas A a E.
8. Agregue 90 μL de PBS a la columna 1 de los pocillos, filas A-E. Estos pocillos actúan como un control positivo de 1 μM de calceína y 0 μM de FAS.
9. Añada 10 μL de calceína (cB) de 10 μM en cada pocillo que contenga una solución (columnas 1 a 12, filas de la A a la E). Esto da como resultado una concentración máxima de 1000 μM de FAS en la columna 11, con una concentración de FAS reducida a la mitad para las columnas 10, 9 y 8 a lo largo de la columna 2. Cada uno de los pocillos resultantes de las columnas contiene 1 μM de calceína y una dilución de FAS.
10. Añádase 100 μL de PBS a la fila F de las columnas 1 a 5 para el control PBS solo. Añada 100 μL de 2 mM de FAS a la fila F de las columnas 6 a 10 para el control de FAS solo. Incubar a temperatura ambiente durante 10 minutos en la oscuridad.
11. Analice en un lector de microplacas configurado para una excitación de 490 nm y una detección de 530 nm (o un conjunto de filtros adecuado para fluorescencia de calceína).

4. Ensayo para cuantificar la capacidad de los quelantes de hierro para superar al quelante débil Calceína porlos iones Fe²⁺

1. Prepare un stock de calceína (cB) de 10 μM, un stock de FAS (fB) de 100 μM y los stocks de quelantes de hierro de 2 mM como se describe en la Tabla 1. Mantenga el calceo en la oscuridad para evitar la fotodegradación.
2. Con una pipeta manual monocanal o una pipeta manual multicanal, añada 50 μl de PBS a las columnas 2 a 10, filas de la A a la E, de una placa de 96 pocillos. No agregue PBS a la columna 11.
3. Añada 100 μL de la reserva de 2 mM (fA) de los quelantes de hierro, en una placa de 96 pocillos en la columna 11, filas de la A a la E, utilizando una pipeta manual de un solo canal.
4. Con una pipeta manual multicanal, extraiga 50 μL de fA de la columna 11 y pipetee en el PBS de la columna 10, filas de la A a la E, mezclando bien mediante pipeteo.
5. Continúe este procedimiento de doble dilución escalonada a través de las columnas restantes 9-2, filas A a E de la placa, mezcle cada pozo pipeteando. Retire 50 μL de la columna 2 y deséchelo. Esto asegura una doble dilución de 2 mM del quelante de hierro (deferiprona) a través de las columnas 11 a 2 de la placa de 96 pocillos, filas de la A a la E.
6. Pipetear 30 μL de PBS en todos los pocillos que contengan una solución (por ejemplo, columnas 2-11 filas de la A a la E).
7. Con una pipeta multicanal, añada 10 μL de 100 μM de culata FAS (fB) en las columnas 2-12, filas de la A a la E. Esto da como resultado una concentración de 1 μM de calceína y 10 μM de FAS en cada pocillo, y una doble dilución de los quelantes, con la concentración reduciendo a la mitad cada columna a través de la placa, columnas 11-2, con la concentración más alta de quelante de hierro a 1000 μM en la columna 11 pocillos A a E.
8. Con una pipeta multicanal, añada 10 μL de calceína (cB) de 10 μM en las columnas 2-12, filas de la A a la E.
9. Pipetear 80 μL de PBS y 10 μL de calceína (cB) y 10 μL de calcea (fB) en la columna 1, filas A-E con una pipeta. Mezclar muestras por pipeteo. Esto proporciona el control de 1 μM de calceína con 10 μM de FAS y sin quelante.
10. Pipetear 100 μL de PBS en las columnas 1 a 5 de la fila F. Esto proporciona el control negativo PBS.
11. Añada 100 μL de 2 mM de quelante de hierro (deferiprona) a la fila F, columnas 6 a 10. Esto proporciona al quelante el control por sí solo.
12. Incubar a temperatura ambiente durante 10 minutos en la oscuridad. Analice en un lector de microplacas multimodal configurado para excitación a 490 nm y detección a 530 nm (o un conjunto de filtros adecuado para fluorescencia Calcien).

5. Análisis de datos

1. Análisis para la validación del ensayo mediante la determinación del rango lineal de la fluorescencia de la calceína.
   1. Calcule la media de las unidades de fluorescencia relativa (RFU) de las filas A-H para cada concentración de calceína en las columnas de la placa de 96 pocillos del paso 1 y trace en función de la concentración. Traza el gráfico de líneas de la concentración de calceína en el eje x frente a la RFU media en el eje y y utiliza una regresión lineal para proporcionar la línea de mejor ajuste.
   2. Cuantifique la significación estadística comparando las concentraciones de calceína en cada columna (2-11) con el control de PBS en la columna 1 filas de la A a la E. Realice un análisis de varianza (ANOVA) y aplique un análisis post hoc utilizando la diferencia mínima significativa (LSD) con un umbral de p <0,001 para determinar la significación estadística (denotada por ** en la Figura 1).
2. Análisis para la validación de ensayos mediante enfriamiento iónico de Fe²⁺ para reducir la fluorescencia de calceína.
   1. Calcule el promedio de las unidades de fluorescencia relativa (RFU) de las filas A a E para cada concentración de FAS en las columnas 2-11. Represente gráficamente la media de la RFU para cada concentración de FAS en el eje Y. En el eje x, represente las concentraciones de FAS utilizando una escala Log2 a medida que distribuye mejor los datos. Traza una línea de mejor ajuste utilizando una regresión lineal.
   2. Cuantifique la significación estadística comparando la media de cada columna con la media de la RFU del control de PBS, 1 μM de calceína, 0 μM de FAS (columna 1 fila A a E). Realizar un análisis post hoc de ANOVA con LSD con un umbral de p <0,001 para determinar la significación estadística.
3. Análisis para ensayo: Cuantificación de la capacidad de los quelantes de hierro para superar al quelante débil Calceína por los iones Fe²⁺ .
   1. Calcule el promedio de las unidades de fluorescencia relativa (RFU) de las filas A a E para cada concentración de quelante en las columnas 2-11. Traza la media de RFU para cada concentración de quelantes en el eje y. En el eje x, trace las concentraciones de quelante utilizando una escala Log2, ya que distribuye mejor los datos.
   2. Cuantifique la significación estadística comparando la media de cada columna con la media de la RFU del control de PBS: 1 μM de calceína y 10 μM de FAS (columna 1, fila A a E). Realizar un análisis post hoc de ANOVA con LSD con un umbral de p <0,001 para determinar la significación estadística.

Resultados

Para el método mostrado en el paso 2, este primer experimento (Figura 1) estableció el rango lineal del lector de placas de fluorescencia de microtitulación al detectar emisiones fluorescentes de calceína. Nuestros resultados representativos muestran un amplio rango lineal de fluorescencia de calceína de 0 a 100 μM. El análisis post hoc de ANOVA con LSD demuestra que hay diferencias estadísticamente significativas en la RFU media para todas las concentraciones de calceína en comparación con un control de 0 μM de calceína. En experimentos posteriores, se utilizó calceína 1 μM (pasos 3 y 4) ya que produce diferencias estadísticamente significativas con respecto al control de 0 μM y se encuentra dentro del rango que se aplica comúnmente a las células en forma de calceína AM en citometría de flujo¹³.

Para el método mostrado en el paso 3, demostramos que cuando se agrega hierro en forma de Fe²⁺ en un rango de 0-1000 μM (como FAS) a 1 μM de calceína, los iones Fe²⁺ dan como resultado una disminución lineal en la fluorescencia de calceína (RFU). Esto permite la observación del enfriamiento basado en Fe²⁺ de la fluorescencia de calceína. La calceína, como quelante débil del hierro, se une al hierro y esto reduce la emisión fluorescente. En la Figura 2, las concentraciones de 8,9 μM FAS y superiores mostraron una disminución significativa, p<0,001, en la fluorescencia de la calceína en comparación con 1 μM de calceína sola. El uso de 8,9 μM de FAS se correspondió con una reducción del 33% en la fluorescencia de calceína (RFU media). Para una mayor experimentación (paso 4) se utilizaron 10 μM de FAS, ya que se encontraba dentro del rango de enfriamiento fluorescente de la calceína.

Para el método mostrado en el paso 4, en la Figura 3 se puede observar la superación de la Calceína por los iones Fe²⁺ por un quelante de hierro. El hierro en forma de Fe²⁺ disminuye la fluorescencia de la calceína desde el control de 1 μM y el quelante de hierro deferiprona aumenta esta fluorescencia hasta un pico, liberando el enfriamiento del hierro de la calceína y aumentando la fluorescencia (RFU media). La deferiprona (utilizada como ejemplo) en concentraciones que oscilaron entre 0,97 y 512 μM dio lugar a aumentos estadísticamente significativos de la fluorescencia, como se observó con el análisis post hoc de ANOVA y LSD (p<0,001). El mayor cambio fue un cambio de 3 veces en la RFU media a 62,5 μM de quelante en comparación con el control de 1 μM de calceína AM y 10 μM de FAS. Por encima de 512 μM de deferiprona no hubo diferencia estadísticamente significativa entre el quelante y el control de 1 μM de Calceína y 10 μM de FAS.

Figura 1: Concentraciones de calceína y fluorescencia (RFU) determinadas utilizando un lector de placas de microtitulación fluorescente. Aquí se muestran las concentraciones de calceína de 0-100 μM incubadas durante 30 min y la fluorescencia (RFU) determinadas. Los datos muestran la media de 8 réplicas por experimento y tres experimentos independientes, las barras de error muestran un intervalo de confianza del 95% en la media. La significación estadística se denota por **, donde p<0.001 se determina utilizando ANOVA y análisis post hoc de LSD (calculado usando el prisma de la almohadilla gráfica). La RFU media de calceína de cada concentración se compara con el control de PBS y 0 μM de calceína. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2: El aumento de la concentración de FAS da como resultado una disminución lineal de la fluorescencia de la calceína. La concentración de FAS se incrementó de 0-1000 μM, lo que resultó en una disminución lineal en la fluorescencia de calceína de 1 μM después de 30 min de incubación en PBS. Los datos mostrados son la media de 5 réplicas por experimento y tres experimentos independientes, las barras de error muestran un intervalo de confianza del 95% en la media. La significación estadística se denota por **, donde p<0.001 se determina utilizando ANOVA y análisis post hoc de LSD (calculado usando el prisma de la almohadilla gráfica). La RFU media de calceína de cada concentración de FAS y 1 μM de calceína se compara con el control de 1 μM de calceína y 0 μM de FAS en PBS. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3: Aumento de las concentraciones de deferiprona. La concentración de deferiprona se incrementó de 0 a 1000 μM con incubación de 1 μM de calceína, 10 μM de FAS en PBS. La fluorescencia se midió en un lector de microplacas multimodal. Los datos mostrados son la media de 5 réplicas por experimento y tres experimentos independientes, las barras de error muestran un intervalo de confianza del 95% en la media. La significación estadística se denota por ** donde p<0.001 según se determina utilizando ANOVA y análisis posthoc de LSD (calculado usando prisma de bloc de gráficos). La RFU media se comparó con 1 μM de calceína en PBS con 10 μM de FAS y 0 μM de deferiprona. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Concentración (μm)	Volumen de (1 mM de stock)	Volumen de PBS	Volumen total
800	800 μL	200 μL	1 mL
400	400 μL	600 μL	1 mL
200	200 μL	800 μL	1 mL
100	100 μL	900 μL	1 mL
50	50 μL	950 μL	1 mL
25	25 μL	975 μL	1 mL
10	10 μL	990 μL	1 mL
6	6 μL	994 μL	1 mL
2	2 μL	998 μL	1 mL
1	1 μL	999 μL	1 mL

Tabla 1: Preparación de calceína para el caldo secundario.

Discusión

La excesiva dependencia de los cánceres del hierro para alimentar su metabolismo hace que la quelación del hierro sea una adición potencial^{a los regímenes} terapéuticos. Sin embargo, existe una capacidad limitada para detectar rápidamente nuevos quelantes de iones metálicos por su capacidad para unirse a iones de hierro. Se sabe que la sonda fluorescente Calceína, de uso común y ampliamente disponible, actúa como un quelante débil de hierro y la unión de iones de hierro apaga la fluorescencia de la calceína. La fluorescencia se puede recuperar compitiendo por unirse al hierro utilizando un quelante de hierro más fuerte. La reducción de la fluorescencia observada cuando la calceína se une al hierro y la restauración de la fluorescencia cuando es superada por un quelante más fuerte proporciona un método rápido y sencillo para seleccionar nuevos compuestos con potencial quelante de hierro. Si bien las técnicas basadas en calceína¹³ ya se utilizan para visualizar la capacidad de los quelantes para unirse al hierro en las células, estas técnicas requieren costosos aparatos de citometría de flujo, son solo semicuantitativas, requieren una amplia capacitación del personal y el uso de la forma celular más cara de calceína, Calcien-AM. Además, la técnica es poco reproducible y no facilita fácilmente la determinación de la significación de los datos mediante el análisis estadístico. Por lo tanto, hemos creado un método in vitro simple y económico que puede actuar como una pantalla de primer paso de las capacidades quelantes de hierro de nuevos compuestos. Este ensayo libre de células anula el requisito de costosos métodos de cultivo celular como cribado de alto rendimiento de primer paso para la capacidad de quelación del hierro.

Existe un interés creciente en el cribado o desarrollo de nuevos quelantes del hierro que puedan utilizarse para atacar los cánceres debido a su dependencia del hierro para impulsar sus adaptaciones metabólicas². En este artículo describimos una técnica in vitro que se puede utilizar para confirmar la capacidad de nuevos compuestos para quelar el hierro superando al quelante débil Calceína. Esto permite un cribado sencillo, cuantitativo y económico de nuevos compuestos por su capacidad de quelación del hierro.

Uno de los pasos críticos en el protocolo es establecer el rango lineal del lector de placas de microtitulación fluorescente (Figura 1). La calceína tiene un amplio espectro de excitación y emisión fluorescente que se centra en un pico de excitación de 501 nm y un pico de emisión de 521 nm. Sin embargo, el rango lineal de la calceína puede depender de los filtros utilizados para excitar y detectar las emisiones de fluorescencia de la calceína, el rango lineal del fotomultiplicador utilizado en la detección también determinará en parte el rango lineal. Por lo tanto, es importante establecer primero el rango de concentraciones en el que la fluorescencia de calceína es lineal para garantizar que el ensayo funcione dentro del rango lineal de calceína en el lector de placas fluorescentes. Dado que observamos linealidad entre 0 y 100 mM de calceína, esto demuestra que la calceína tiene un amplio rango lineal. Además, los lectores de placas de microtitulación fluorescente suelen tener conjuntos de filtros que pueden medir la fluorescencia de la calceína, ya que tiene espectros similares a algunos de los fluoróforos emisores de luz verde más utilizados. Por lo tanto, este ensayo es ampliamente aplicable a una amplia gama de usuarios.

Se prefiere el uso de FAS como donante de iones de hierro, ya que proporciona iones Fe²⁺ , que es el principal ion de hierro en la reserva de hierro lábil en las células. Sin embargo, se han logrado resultados similares a los que se muestran aquí (Figura 2) con cloruro de amonio férrico (FAC) que proporciona Fe³⁺ (datos no mostrados). Por lo tanto, el ensayo es compatible con ambos estados redox de los iones de hierro, lo que amplía la aplicabilidad a los quelantes con preferencia por cualquiera de estos estados redox.

En este estudio, presentamos datos para el quelante de hierro deferiprona, sin embargo, también hemos evaluado la capacidad de otros quelantes de hierro, incluida la mimosina, para superar a la calceína en la unión de iones de hierro utilizando este ensayo (datos no mostrados). Una de las limitaciones del ensayo es que por encima de 512 mM del quelante deferiprona no hubo un aumento estadísticamente significativo de la fluorescencia en comparación con un control de 1 μM de calceína y 10 μM de FAS. No está claro por qué las concentraciones más altas de quelantes no dan lugar a un aumento de la fluorescencia, aunque esto se ha observado con otros quelantes (datos no mostrados). Sin embargo, un compuesto terapéutico principal debe actuar <100 μM para que el ensayo funcione en los rangos de concentraciones necesarios para la eficacia del compuesto principal.

Por lo tanto, este ensayo permite examinar rápidamente cualquier posible quelante del hierro para determinar su capacidad de quelar el hierro como prueba del mecanismo. Este es un primer paso importante antes de que los nuevos quelantes se examinen en ensayos costosos y laboriosos basados en células o in vivo . Una limitación de este ensayo es que se realiza con disolvente acuoso y, por lo tanto, requiere que el quelante sea soluble en tampones acuosos. Sin embargo, dado que la concentración más alta utilizada en este estudio fue de 10 mM de deferiprona, que es un pequeño quelante lipofílico^{de hierro 15}, aún se pueden probar quelantes con solubilidad acuosa limitada.

Para concluir, el ensayo descrito aquí puede resultar valioso en el cribado de nuevos quelantes de hierro, que es un enfoque continuo del desarrollo terapéutico del cáncer.

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo

Nombre	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Sulfato de hierro (II) de amonio hexahidratado	Sigma-Aldrich	215406	también conocido como FAS
: Calceína	, Sigma-Aldrich	C0875
Deferiprona	Sigma-Aldrich	379409
Dulbecco′ s Solución salina tamponada con fosfato	Sigma-Aldrich	D5652	libre de magnesio y calcio
Greiner CELLSTAR 96 placas de pocillos	Sigma-Aldrich	M0812	cualquier placa de 96 pocillos ópticamente transparente funcionará