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Artículo de método

Cuantificación de la actividad del sistema de secreción de Yersinia pseudotuberculosis tipo III después de la inanición de hierro y el crecimiento anaeróbico

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DOI:

10.3791/66642

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31 de mayo de 2024

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En este artículo

Resumen

Las bacterias colonizan los tejidos del huésped que varían en biodisponibilidad de oxígeno y hierro, sin embargo, la mayoría de los enfoques para estudiar las bacterias utilizan medios aireados y ricos. Este protocolo describe el cultivo del patógeno humano Yersinia pseudotuberculosis bajo diferentes concentraciones de hierro y tensión de oxígeno, y cuantifica la actividad del sistema de secreción de Yersinia tipo III, que es un factor de virulencia importante.

Resumen

Un mecanismo de virulencia clave para muchos patógenos gramnegativos es el sistema de secreción de tipo III (T3SS), un apéndice en forma de aguja que transloca proteínas efectoras citotóxicas o inmunomoduladoras en las células huésped. El T3SS es un objetivo para las campañas de descubrimiento de antimicrobianos, ya que es accesible extracelularmente y está en gran medida ausente de bacterias no patógenas. Estudios recientes demostraron que las T3SS de Yersinia y Salmonella están reguladas por factores que responden al hierro y al oxígeno, que son importantes señales específicas de nicho que se encuentran durante la infección de mamíferos. Aquí se describe un método para la inanición de hierro de Yersinia pseudotuberculosis, con la posterior suplementación opcional de hierro inorgánico. Para evaluar el impacto de la disponibilidad de oxígeno, se demuestra este proceso de inanición de hierro tanto en condiciones aeróbicas como anaeróbicas. Por último, la incubación de los cultivos a una temperatura de 37 °C en el huésped de los mamíferos induce la expresión de T3SS y permite cuantificar la actividad de Yersinia T3SS mediante la visualización de las proteínas efectoras liberadas en el sobrenadante. Los pasos detallados aquí ofrecen una ventaja sobre el uso de quelantes de hierro en ausencia de inanición de hierro, que es insuficiente para inducir una inanición robusta de hierro, presumiblemente debido a los eficientes sistemas de absorción y eliminación de hierro de Yersinia . Del mismo modo, se detalla el lavado con ácido de la cristalería de laboratorio para garantizar la eliminación del hierro residual, que es esencial para inducir una fuerte inanición de hierro. Además, se describe el uso de un agente quelante para eliminar el hierro residual de los medios y cultivar las bacterias durante varias generaciones en ausencia de hierro para agotar las reservas de hierro bacterianas. Al incorporar protocolos estándar de precipitación de proteínas inducida por ácido tricloroacético, SDS-PAGE y tinción con plata, este procedimiento demuestra formas accesibles de medir la actividad de T3SS. Si bien este procedimiento está optimizado para Y. pseudotuberculosis, ofrece un marco para estudios en patógenos con sistemas de absorción de hierro robustos similares. En la era de la resistencia a los antibióticos, estos métodos pueden ampliarse para evaluar la eficacia de los compuestos antimicrobianos dirigidos a la T3SS en condiciones relevantes para el huésped.

Introducción

Muchos patógenos gramnegativos clínicamente relevantes como Yersinia, Vibrio, Escherichia, Pseudomonas y Shigella codifican el sistema de secreción de tipo III (T3SS) para inyectar proteínas efectoras en las células huésped1. En muchas especies bacterianas, el T3SS está bajo un estricto control regulatorio2. Por ejemplo, la translocación de las proteínas efectoras Yersinia T3SS a las células huésped diana es fundamental para subvertir los mecanismos de defensa del huésped y permitir la colonización bacteriana de los tejidos del huésped. Sin em....

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Protocolo

Los detalles de los reactivos, la composición del medio, las secuencias de cebadores y el equipo se enumeran en la Tabla de materiales. La figura 1 ilustra el flujo de trabajo experimental general.

1. Preparación de cristalería lavada con ácido y medios M9 quelados

NOTA: Antes de comenzar, consulte la sección de materiales para conocer los reactivos y recetas exactos que se utilizarán. Los medios M9 se utilizaron por primera vez para los ensayos de Yersinia T3SS en Cheng et al.11.

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Resultados

Este método permite la comparación relativa de los Yops secretados a través de varias condiciones en relación con una condición de referencia de interés. El flujo de trabajo experimental general se muestra en la Figura 1. La Tabla 1 muestra una representación de cómo la normalización del cultivo celular ocurriría típicamente en el caso de cada condición de cultivo y el volumen de TCA que se agregaría a cada sobrenadante. Aquí, se muestran los resultados representativos utili.......

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Discusión

El T3SS es un factor de virulencia importante en muchas bacterias patógenas; Por lo tanto, el desarrollo de técnicas de laboratorio para estudiar su regulación es importante para comprender la patogénesis y desarrollar posibles terapias1. Se sabe que el hierro y el oxígeno son importantes señales del huésped detectadas por los patógenos bacterianos para regular la expresión de T3SS5; por lo tanto, este método presenta una estrategia para el.......

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Divulgaciones

Los autores declaran no tener intereses financieros contrapuestos.

Agradecimientos

Imágenes gráficas creadas con BioRender.com. Este estudio contó con el apoyo de la subvención de los Institutos Nacionales de Salud (www.NIH.gov, por sus siglas en inglés) R01AI119082.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Jeringa de punta Luer-Lok de 10 mlBD301029
10x SDS Running Buffer Hecho en0.25 M Tris base, 1.92 M glicina, 1% SDS en 1 L
de volumen 12.5% SDS-Page Gel Tubos decaseros
de 15 mL Falcon352059Para la noche inicial 
Tubos Falcon de 15 mL Falcom352196Para la recolección de sobrenadante
Matraz de cultivo de 250 mLBelco251000250
500 mLCorning431097
6 N Solución de ácido clorhídricoFisher Scientific7732185
AcetonaFisher ChemicalA949-44 L
Bio Rad ChemiDoc MP Imaging SistemaBio RadNúmero de modelo: Campana universal III
Tubos de cultivo de vidrio de borosilicatoFisherbrand14-961-34Para cultivo anaeróbico
Chelex 100 ResinaBio Rad142-1253
Chelex M9 +0.9% Medios de glucosaHecho encasa6 g/L Na2HPO4, 3 g/L KH2PO4, 0,5 g/L de NaCl, 1 g/L de NH4Cl, 1% de ácidos casamino, 0,9% dextrosa, 0,0005% tiamina, 5 g/L de resina Chelex 100. Agite el medio durante 18 h a temperatura ambiente, filtre con una unidad de filtración Corning de 500 ml, luego agregue MgSO4 para obtener 1 mM de solución sub>4 MgS
Tampón de muestra final (FSB)Hecho en0.1 M Tris-HCl, 4% SDS, 20% glicerol, 0.2% de azul de bromofenol
FSB: Solución de TDT Hechoen casaFSB+0.2M DTT
Image Lab SoftwareBio Radhttps://www.bio-rad.com/en-us/product/image-lab-software?ID=KRE6P5E8ZSoftware
Isotemp Heat BlockFisher Scientific88860021
LB Placas de Agar CaserasLevadura, 10 g de NaCl, 15 g de Agar en 1 L de volumen total.
Medios de glucosa M9 + 0.2%de6 g/L Na2HPO4, 3 g/L KH2PO4, 0,5 g/L de NaCl, 1 g/L 4Cl, 1 mM de MgSO4, 1 mg/L de FeSO47H2O, 1% de ácidos casamino, 0,2% dextrosa, 0,0005% tiamina 
Accesorio de filtro Millex-GP PES 0.22um para jeringaMilliporeSLGPR33RSpara filtración FeSO47H2O
Accesorio de filtro Millex-GV PVDF 0.22um para jeringaMilliporeSLGVR33RSpara filtración de sobrenadante
Precision Plus Protein Unstained StandardBio Rad1610363
SDS-PAGE Aparato de gelRadNúmero de modelo: Mini PROTEAN Tetra Cell
Kit de tinción de plata SilverXpress InvitrogenLC6100
The BellyDancer ShakerIBI ScientificBDRAA1155
solución de ácido tricloroacético 6.1NSigma AldrichT0699
Cámara anaeróbica de viniloCoy Lab Productshttps://coylab.com/products/anaerobic-chambers/vinyl-anaerobic-chambers/#details
qPCR Primer sequences 
yfeA adelante - CAC AGT CAG CAG ACC TTA TCT T
yfeA reversa - GGC AGA CGG GAC ATC TTT AAT A
bfd adelante - ccagcatcagccccatacag
bfd reversa - tggcttgtcggatgcacttc
yopE adelante - CCATAAACCGGTGGTGAC
yopE reverse - CTTGGCATTGAGTGATACTG
casa cultivo Sistema de filtro casa 10 g de Triptona, 5 g de Extracto de fabricación casera de Bio

Referencias

  1. Deng, W., et al. Assembly, structure, function regulation of type III secretion systems. Nat Rev Microbiol. 15 (6), 323-337 (2017).
  2. Springer International Publishing. Bacterial Type III Protein Secretion Systems. 427, Springer International Publishing. Cham. (2020).
  3. Schubert, K. ....

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