Artículo de método

Preparación de nanopartículas de óxido de zinc y evaluación de sus efectos antibacterianos

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DOI:

10.3791/66725

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27 de septiembre de 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Integrative Engineering, Chung-Ang University, 2Feynman Institute of Technology, Nanomedicine Corporation, 3Department of Chemical Science and Engineering, Tokyo Institute of Technology, 4Department of Chemical Engineering, Kumoh National Institute of Technology

* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

En este estudio, se sintetizaron nanopartículas de óxido de zinc utilizando un método de precipitación. El efecto antibacteriano de las partículas sintetizadas se probó contra cepas bacterianas de Staphylococcus aureus (SARM) y Pseudomonas aeruginosa resistentes a múltiples fármacos.

Resumen

Las infecciones bacterianas nosocomiales se han vuelto cada vez más desafiantes debido a su resistencia inherente a los antibióticos. La aparición de cepas bacterianas multirresistentes en los hospitales se ha atribuido al uso extensivo y variado de antibióticos, lo que agrava aún más el problema de la resistencia a los antibióticos. Los nanomateriales metálicos han sido ampliamente estudiados como una solución alternativa para erradicar las células bacterianas resistentes a los antibióticos. Las nanopartículas metálicas atacan a las células bacterianas a través de diversos mecanismos, como la liberación de iones antibacterianos, la generación de especies reactivas de oxígeno o la disrupción física, contra la cual las bacterias no pueden desarrollar resistencia. Entre las nanopartículas metálicas antimicrobianas investigadas activamente, las nanopartículas de óxido de zinc, aprobadas por la FDA, son conocidas por su biocompatibilidad y propiedades antibacterianas. En este estudio, nos centramos en desarrollar con éxito un método de precipitación para sintetizar nanopartículas de óxido de zinc, analizar las propiedades de estas nanopartículas y realizar pruebas antimicrobianas. Las nanopartículas de óxido de zinc se caracterizaron mediante microscopía electrónica de transmisión (TEM), dispersión dinámica de luz (DLS), espectroscopia ultravioleta/visible y difracción de rayos X (XRD). Las pruebas antibacterianas se realizaron mediante la prueba de microdilución de caldo con las cepas multirresistentes de Staphylococcus aureus resistente a meticilina (SARM) y Pseudomonas aeruginosa. Este estudio demostró el potencial de las nanopartículas de óxido de zinc para inhibir la proliferación de bacterias resistentes a los antibióticos.

Introducción

Las infecciones bacterianas multirresistentes (MDR) suponen una importante amenaza mundial para la salud humana1. Dado que estas infecciones pueden ser mortales en pacientes con afecciones subyacentes, la investigación activa está tratando de abordar este problema2. Las bacterias han evolucionado para evadir la acción de diversos fármacos. La penicilina, ampliamente conocida y a la que se le atribuye haber salvado millones de vidas en todo el mundo, es un antibiótico β-lactámico que inhibe la síntesis de la pared celular bacteriana3. Sin embargo, las bacterias han evolucionado para neutralizar la eficacia de los fármacos a través de diversos mecanismos como bombas de eflujo, alteraciones de la transpeptidasa o disminución de la permeabilidad4. Además, las células bacterianas pueden transmitir estos genes de resistencia a la siguiente generación, aumentando las tasas de supervivencia de la generación siguiente y reforzando el problema de las cepas resistentes5.

El aumento de bacterias resistentes a los antibióticos ha llevado a la aparición de bacterias MDR, que comúnmente exhiben resistencia a múltiples antibióticos. Las cepas MDR se encuentran con mayor frecuencia en entornos hospitalarios, donde múltiples cepas bacterianas están expuestas a diferentes antibióticos y, en consecuencia, desarrollan resistencia a ellos6. Staphylococcus aureus, particularmente S. aureus resistente a la meticilina (SARM), es una bacteria comensal grampositiva que forma grupos en la piel de aproximadamente el 30% de los seres humanos7,8. El SARM, que se identificó por primera vez en la década de 1960, exhibe una sensibilidad reducida a los antibióticos β-lactámicos, lo que resulta en un fuerte aumento en lastasas de infección desde la década de 1990. Entre las bacterias gramnegativas, la Pseudomonas aeruginosa (P. aeruginosa) es una de las cepas más prevalentes adquiridas en los hospitales. Esta especie, una bacteria facultativa en forma de bastón, causa infecciones oportunistas en humanos10. En particular, las cepas MDR que afectan directamente a la salud humana son responsables de más del 50 % de las infecciones asociadas a la asistencia sanitaria11. En este estudio, se utilizaron las cepas multirresistentes más comúnmente encontradas en los hospitales, MRSA y P. aeruginosa.

El uso de nanopartículas (NP) con fines antimicrobianos se ha investigado ampliamente para abordar el problema de la resistencia a los antibióticos. Las NP metálicas, en particular, inducen la muerte de las células bacterianas a través de varios mecanismos, lo que ofrece una posible solución al problema de la resistencia a los medicamentos. Las NP metálicas ejercen actividad antimicrobiana a través de múltiples mecanismos, incluyendo la liberación de iones antimicrobianos, la generación de especies reactivas de oxígeno (ROS) y la disrupción física de las células, entre otros medios12. Las NP compuestas de plata, cobre, óxido de zinc (ZnO) y óxido de titanio poseen una alta eficacia antimicrobiana y, por lo tanto, están siendo investigadas activamente13.

Las NP de ZnO han sido aprobadas por la Administración de Alimentos y Medicamentos de los Estados Unidos (FDA) para su uso en humanos. Por el contrario, a pesar de su alta eficacia antimicrobiana, el uso de NP de plata y cobre en humanos está limitado por su alta citotoxicidad. Sin embargo, las NP de ZnO se encuentran comúnmente en la vida cotidiana e incluso están presentes en formulaciones de protectores solares ampliamente utilizadas14. Cabe destacar que los iones Zn2+ liberados por las NP de ZnO son altamente efectivos en el tratamiento bacteriano, induciendo la muerte celular bacteriana a través de la generación de ROS y otros mecanismos de daño físico15.

Este estudio describe el protocolo para sintetizar nanopartículas de ZnO (NP) utilizando un método de precipitación e introduce un enfoque de prueba antimicrobiana utilizando un método de dilución de microcaldo con muestras clínicas de MRSA y P. aeruginosa. El método de precipitación para las NPs de ZnO consiste en sintetizar NPs sólidas insolubles de ZnO ajustando el pH y la temperatura utilizando precursores solubles como el acetato de zinc o el nitrato de zinc16. Junto con una producción relativamente fácil y rápida, este método garantiza la repetibilidad en la síntesis y facilita el control sobre el tamaño y la morfología de las partículas17. En este protocolo de síntesis, se utilizó hidróxido de sodio (NaOH), uno de los agentes de precipitación más utilizados, para precipitar acetato de zinc, y se empleó una pequeña cantidad de bromuro de hexadeciltrimetilamonio (CTAB) para inhibir la síntesis incontrolada de las nanopartículas18. Entre varias pruebas antimicrobianas, se evaluó la actividad antibacteriana de las nanopartículas de ZnO utilizando el método de dilución de microcaldo, que evita la interferencia óptica de las nanopartículas de óxido metálico y permite la medición directa de colonias para determinar MIC19.

Protocolo

Los reactivos y equipos utilizados en este estudio se enumeran en la Tabla de Materiales.

1. Preparación de nanopartículas de óxido de zinc

  1. Mida 200 ml de alcohol etílico absoluto y viértalo en un matraz de vidrio de fondo redondo.
  2. Coloque el matraz de fondo redondo sobre una manta calefactora y mantenga la agitación a 25-40 °C.
  3. Mida 500 mg de CTAB en un vial de 50 ml y añádalo al alcohol etílico del matraz. Revuelva hasta que CTAB se disuelva por completo.
  4. Agregue 1,4 g de acetato de zinc a la solución y revuelva hasta que se disuelva por completo.
  5. Eleve la temperatura de la solución ajustando la temperatura del manto calefactor a 70 °C.
  6. Agregue 25 mL de solución de NaOH 0.5 M a la mezcla y déjela reaccionar durante 1 h hasta que la solución transparente se vuelva de color blanco.
  7. Aliquotar la solución en tubos cónicos de 50 mL, centrifugar a 15000 × g durante 15 min a temperatura ambiente y luego desechar el sobrenadante.
  8. Añadir 10 mL de agua destilada a uno de los tubos cónicos y volver a suspender las nanopartículas sonicando la solución. Transfiera la solución suspendida a un tubo cónico diferente que contenga la pastilla de ZnO y repita hasta que todas las soluciones de ZnO se recojan en un tubo cónico.
  9. Lavar las nanopartículas mediante centrifugación a 15000 × g durante 15 min (temperatura ambiente), retirar el sobrenadante y volver a suspender en agua destilada. Verifique el pH de la solución sobrenadante con papel de prueba de pH y repita hasta que el pH de la solución se vuelva neutro.
    NOTA: Cuando el pH de la solución sobrenadante se vuelva neutro (pH = 7), deseche la solución sobrenadante y no vuelva a suspender con agua destilada.
  10. Seque al vacío el palet de muestras a 60 °C durante 24 h y obtenga el polvo de ZnO NP.

2. Pruebas antibacterianas con SARM y P. aeruginosa

  1. Cultivo bacteriano
    NOTA: Las cepas bacterianas MDR clínicas se obtuvieron del Hospital Universitario Chung-Ang, Seúl, Corea del Sur.
    1. Saque las cepas bacterianas de MRSA y P. aeruginosa almacenadas en el caldo de soja tríptico (TSB) del congelador.
    2. Después de descongelar las soluciones bacterianas, escurra la solución en una placa de agar de soja tríptico (TSA) usando un asa de inoculación desechable. Coloque las placas de agar rayadas en la incubadora e incube durante 24 h.
      NOTA: Se añadió una sola colonia seleccionada de la placa TSA a 10 mL de medio TSB en un tubo cónico de 50 mL utilizando un circuito de inoculación bacteriana. Las bacterias se cultivaron durante 24 h. Las bacterias se cultivaron en condiciones de cultivo aeróbico a 37 °C.
    3. Para medir la concentración de la solución de bacterias, diluya la solución cultivada con una dilución en serie de 10 veces a 10-6 con agua destilada. A continuación, coloque 50 μL de la solución diluida en placas TSA y extienda la solución con un esparcidor en forma de L.
    4. Incubar las placas en la incubadora durante 24 h.
      NOTA: Las colonias se contaron ópticamente y la concentración de la solución cultivada se calculó multiplicando los factores de dilución por el número de colonias contadas.
  2. Toma de muestras bacterianas
    1. Para probar una amplia gama de concentraciones de ZnO, prepare una solución de 2 mg/mL de ZnO NPs utilizando la solución salina tamponada con fosfato (DPBS) de Dulbecco y realice una dilución en serie de 2 veces para obtener diferentes concentraciones.
      NOTA: Se analizaron 1000 μg/mL, 500 μg/mL, 250 μg/mL, 125 μg/mL y 62,5 μg/mL.
    2. Agregue 100 μL para cada una de las concentraciones probadas de NnO NP en una placa de 96 pocillos.
      NOTA: Utilice el doble (2x) de la concentración final deseada de NPs de ZnO, ya que cada muestra en el pocillo se diluirá con la adición de 100 μL de cultivo de bacterias. Utilice una solución de antibióticos y antimicóticos (A/A) al 2% como control positivo y DPBS como control negativo. A/A es un complejo antibiótico de penicilina y estreptomicina, que es eficaz contra bacterias grampositivas y gramnegativas, respectivamente.
    3. Diluir el cultivo bacteriano a 1 × 106 UFC/mL utilizando medios TSB y añadir 100 μL a cada pocillo que contenga diferentes concentraciones de NPs de ZnO.
      NOTA: Las concentraciones iniciales de SARM y de la solución de cultivo de P. aeruginosa fueron de 3 x 109 UFC/mL. La concentración de cultivo de bacterias 1 x 106 UFC/mL se realizó mediante dilución 1/20 y 1/150 de la solución de cultivo. Después de mezclar con 100 μL de NPs de ZnO, la concentración final de bacterias será de 5 × 105 UFC/mL.
    4. Coloque la placa de 96 pocillos en una incubadora a 37 °C e incube durante 24 h.
  3. Propagación bacteriana
    1. Pipetear 100 μL de cada pocillo y preparar varias diluciones en serie 10 veces hasta 10-6.
      NOTA: Agregue 100 μL de NPs de ZnO que contengan solución bacteriana en 900 μL de agua destilada esterilizada y repita 6 veces.
    2. Pipetear 50 μL a partir de cuatro soluciones diluidas y añadirlas a las placas de medios TSA. Utilice un esparcidor de células en forma de L para esparcir la suspensión bacteriana sobre la placa de agar.
      NOTA: Utilice las diluciones 100, 10-2, 10-4 y 10-6 . Realizar todos los experimentos por triplicado. Extienda hasta que toda la solución bacteriana se absorba en la placa de agar.
    3. Coloque las placas de agar en una incubadora a 37 °C e incube durante 24 h.
  4. Recuento de UFC bacterianas
    1. Seleccione un factor de dilución que sea contable para cada grupo. Marque todas las colonias en la placa de dilución contable y vuelva a calcular para que la concentración se convierta en # de UFC/mL.
      NOTA: El factor de dilución contable indica platos que tienen 20-100 UFC en un plato individual. Resultados de concentración contada inicialmente # de UFC contadas/50 μL. Usando la placa extendida con la solución bacteriana sin diluir, determine la concentración bactericida mínima potencial.
    2. Utilice los datos obtenidos para representar el porcentaje de bacterias vivas en relación con las del control negativo.
      NOTA: Porcentaje de bacterias vivas (%) =figure-protocol-1

Resultados

La síntesis exitosa de NPs de ZnO se confirmó utilizando microscopía electrónica de transmisión (TEM), como se muestra en la Figura 1A. Se observó que las NPs de ZnO obtenidas tenían forma redonda, con un tamaño de partícula promedio de 35,35 nm y una desviación estándar de 6,81 nm. La precipitación de estas nanopartículas se observó a través de una reacción de doble desplazamiento mediante la adición de una solución de NaOH al acetato de zinc, donde los iones Zn2+ se sometieron a hidrólisis.

Utilizando dispersión dinámica de luz (DLS), se determinó que el tamaño promedio y el potencial zeta de las nanopartículas sintetizadas eran de 130,4 nm y 28,92 mV, respectivamente, como se muestra en la Figura 1B. La discrepancia en el tamaño de las NPs de ZnO medidas mediante DLS en comparación con la obtenida a partir de la imagen TEM se atribuyó a la agregación de nanopartículas desnudas. El potencial zeta positivo confirmó indirectamente la adquisición de NPs de ZnO, que pueden interactuar electrostáticamente con las superficies celulares bacterianas, causando potencialmente daños físicos. La magnitud del potencial zeta indica la estabilidad potencial de un sistema coloidal. Cuando todas las partículas en una suspensión tienen grandes potenciales zeta positivos o negativos, existe una tendencia a que se repelan entre sí, evitando la agregación. Las partículas con potenciales zeta superiores a +30 mV o inferiores a -30 mV se consideran generalmente estables. Las NPs de ZnO sintetizadas exhibieron un potencial zeta de +28.92 mV, lo que indica una relativa estabilidad en el agua20.

Los espectros de absorción de las NPs de ZnO se examinaron utilizando un lector de microplacas, revelando un pico de absorción específico para ZnO a 360 nm (Figura 1C). El precursor acetato de zinc no tiene un pico único, mientras que se sabe que las NP de ZnO tienen un pico único a 360-370 nm. La síntesis fue confirmada por la presencia del pico único de 360 nm en las NPs de ZnOsintetizadas 21. Estas características específicas de absorción de rayos UV confirmaron la síntesis directa de NPs de ZnO. Además, el análisis de difracción de rayos X (DRX) (Figura 1D) reveló picos cristalinos distintos que son característicos del ZnO. Cuando se comparó con la estructura representativa de wurtzita de las NPs de ZnO (JCPDS No. 36-1415), se observó que todos los planos (1, 0, 0), (0, 0, 2), (1, 0, 1), (1, 0, 2), (1, 1, 0), (1, 0, 3), (2, 0, 0), (1, 1, 2) y (2, 0, 1) estaban alineados22.

La eficacia antimicrobiana de las NPs de ZnO sintetizadas se evaluó mediante una prueba de dilución de microcaldo frente a muestras clínicas de P. aeruginosa y SARM obtenidas en el Hospital Universitario Chung-Ang de Seúl, Corea del Sur. Se capturaron imágenes de cultivos bacterianos para su análisis. Para evaluar visualmente la eficacia antimicrobiana de las nanopartículas utilizando el mismo factor de dilución, se utilizaron placas extendidas con solución bacteriana sin diluir (Figura 2A,B). Se emplearon placas extendidas con la solución original para determinar la concentración bactericida mínima potencial. Dado que se observaron colonias bacterianas incluso en la concentración más alta para ambas cepas, no se logró un efecto bactericida completo. Las concentraciones bacterianas en cada grupo se calcularon utilizando factores de dilución contables. Al comparar las tasas de supervivencia de cada grupo de tratamiento con el grupo de control negativo, los efectos antimicrobianos de las NP de ZnO fueron evidentes tanto en las cepas de P. aeruginosa como en las de SARM. Teniendo en cuenta el rango de citotoxicidad investigado de las NPs de ZnO, se probaron diferentes concentraciones de ZnO, comenzando desde la concentración más alta conocida para inducir toxicidad, que es de 1000 μg/mL, hasta el rango no tóxico de 62,5 μg/mL, a través de la dilución seriada23,24. En el caso de P. aeruginosa, la actividad antimicrobiana de las NPs de ZnO se incrementó de manera dependiente de la concentración (Figura 2A). Sin embargo, no se evidenció una disminución visible en el número de colonias bacterianas de P. aeruginosa desde el inicio del cultivo bacteriano sin diluir (100).

Por el contrario, las NP de ZnO mostraron una alta actividad antimicrobiana contra la bacteria grampositiva MRSA, con una disminución notable de las unidades formadoras de colonias bacterianas (UFC), como se confirma al comparar las imágenes de los cultivos bacterianos diluidos con la del cultivo bacteriano sin diluir inicial (100). Este resultado confirmó que las NPs de ZnO sintetizadas mostraron actividad antimicrobiana contra ambas cepas bacterianas, mostrando particularmente una mayor eficacia contra lacepa de SARM.

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Figura 1: Caracterización de nanopartículas de óxido de zinc. (A) Imágenes de microscopía electrónica de transmisión de NPs de ZnO bajo diferentes aumentos. (B) Tamaño (izquierda) y distribución de potencial zeta (derecha) mediante análisis DLS. (C) Espectro de absorbancia de NPs de ZnO utilizando un lector de microplacas. (D) Análisis XRD de NPs de ZnO y sus picos cristalinos. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

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Figura 2: Propiedades antibacterianas de las NPs de ZnO probadas en cepas bacterianas de 5 x 105 UFC/mL. (A) Prueba antibacteriana contra la cepa de P. aeruginosa . (B) Prueba antibacteriana contra la cepa MRSA . N = control negativo (DPBS), P = control positivo (A/A). Los asteriscos denotan la diferencia estadísticamente significativa en comparación con los controles, ****p ≤ 0,0001. Los datos se presentan como media ± DE de tres experimentos independientes realizados por triplicado. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Discusión

La síntesis de NPs de ZnO a través de la precipitación es relativamente sencilla y directa. Para sintetizar con éxito las NP de ZnO utilizando este método, la agitación es crucial para garantizar que el precursor (acetato de zinc) se disuelva completamente en el disolvente. Además, el aumento de la temperatura ayuda a inducir una reacción exitosa de doble desplazamiento. En la síntesis de NP de ZnO, hay muchos factores que determinan el tamaño y la forma, incluido el agente de precipitación, la concentración del agente de precipitación y el surfactante. El uso de agentes de precipitación distintos del NaOH puede cambiar la forma de las partículas. Según lo reportado por Gharpure et al.25, cuando se utilizó hidróxido de amonio (NH4OH) para precipitar acetato de zinc con diferentes tensioactivos, las partículas se sintetizaron mayoritariamente en forma de cono y triángulo. Incluso cuando se sintetizó utilizando hidróxido de potasio (KOH), fue difícil ver partículas esféricas26. Esta observación confirmó que la precipitación con NaOH facilitó la síntesis de nanopartículas de ZnO con formas redondeadas.

En este estudio, sintetizamos NPs de ZnO utilizando una pequeña cantidad de surfactante y NaOH debido a su potencial aplicación en aplicaciones biomédicas y al desarrollo de un método de síntesis rápida. Como resultado, a pesar de que la síntesis de partículas a nanoescala de forma redonda era posible, la síntesis de partículas esféricas homogéneas fue limitada sin modificaciones adicionales27. Se sabe que las NP de ZnO se dispersan bien en disolventes no polares o mixtos polares y no polares, lo que provoca problemas limitados de estabilidad y agregación en el agua28,29. Dado que las NPs de ZnO estaban dispersas en DPBS, se observaron fenómenos de agregación, lo cual fue evidente por la diferencia de tamaño entre las imágenes TEM y las mediciones de DLS. Se espera que la introducción de agentes de recubrimiento y agentes de acoplamiento como el 3-aminopropiltrietoxisilano (APTES) mejore la dispersión en el agua, aunque no se realizaron modificaciones en este estudio para evaluar las propiedades antimicrobianas intrínsecas de las NPs de ZnO30.

El método de síntesis de las NPs de ZnO presentado en este estudio difiere de las técnicas asistidas por microondas o solvotérmicas en que no requiere alta presión o calor, y no involucra ningún enlazador más que una pequeña cantidad de surfactante31,32. Con un tiempo de reacción de síntesis de solo 2 h, es fácilmente accesible para cualquier persona. Desde el punto de vista de la aplicación biomédica, este estudio evaluó las propiedades antibacterianas de las NP de ZnO utilizando muestras clínicas de MDR obtenidas de la Universidad de Chung-Ang, lo que permitió determinar la concentración necesaria de ZnO para erradicar las bacterias en entornos del mundo real. En comparación con el estudio de Khan et al., donde la mayoría de las bacterias fueron erradicadas en el rango de concentración de 60 μg/mL contra P. aeruginosa, se encontró que las cepas clínicas MDR utilizadas en este estudio presentaron mayores tasas de supervivencia33.

Se evaluó la eficacia antimicrobiana de las NPs de ZnO sintetizadas frente a las cepas de P. aeruginosa y MRSA. Dado el corto tiempo de duplicación de las bacterias durante el experimento, es crucial colocar primero la solución de nanopartículas en una placa de 96 pocillos y luego agregar la solución bacteriana de inmediato. Además, el empleo de diversas diluciones para el cultivo es crucial para determinar con precisión la actividad antimicrobiana de las nanopartículas. También es crucial la mezcla completa de la solución bacteriana durante la generación de las diluciones en serie de 10 veces; Por lo tanto, es necesario un pipeteo y un vórtice cuidadosos. Sin embargo, hay que tener en cuenta que este procedimiento experimental lleva mucho tiempo. Por lo tanto, una evaluación preliminar utilizando mediciones de absorbancia a 600 nm puede proporcionar una estimación aproximada de la actividad antimicrobiana antes del cultivo.

Las NP de ZnO sintetizadas mostraron una mayor actividad antimicrobiana contra la cepa de SARM, probablemente debido a las diferencias en la estructura bacteriana. Las bacterias gramnegativas, como P. aeruginosa, difieren del SARM en la estructura de su membrana celular, específicamente en la formación de una membrana doble que contiene lipopolisacáridos, a diferencia de una membrana gruesa de peptidoglicano de una sola capa de SARM. Esta estructura de doble membrana dificulta potencialmente la penetración de los iones antimicrobianos Zn2+ , aumentando la tasa de supervivencia de P. aeruginosa. Las NP de ZnO se utilizan por sus propiedades antimicrobianas y también se utilizan activamente en el protector solar y la regeneración de la piel. Por lo tanto, se prevé que en el futuro continúen diversos estudios que utilicen NPs de ZnO.

Las NP de ZnO se pueden aplicar en varios campos, a través de la modificación de la superficie y varias conjugaciones de materiales. El ZnO tiene aplicaciones potenciales en la administración de fármacos, recubrimientos antibacterianos, terapia contra el cáncer y cicatrización de heridas, entre otros34. Las NP de ZnO pueden aplicarse en la administración de fármacos mediante la conjugación de moléculas dirigidas como los anticuerpos, lo que permite la administración dirigida a células o tejidos específicos35. Además, a través de la generación de especies reactivas de oxígeno, las NP de ZnO pueden dirigirse no solo a las células bacterianas, sino también a las células cancerosas. Además, la liberación de iones Zn2+ de las nanopartículas de ZnO y la generación de peróxido de hidrógeno (H2O22) debido a las especies reactivas de oxígeno pueden promover procesos de cicatrización de heridas en el sitio de la herida36. Se anticipa que estos potenciales conducirán a numerosas investigaciones que exploran el uso de las NP de ZnO en diferentes campos.

Divulgaciones

El Dr. Jonghoon Choi es el director ejecutivo y fundador, y el Dr. Yonghyun Choi es el director de tecnología del Instituto de Tecnología Feynman de Nanomedicine Corporation.

Agradecimientos

Esta investigación contó con el apoyo de la Beca de Investigación de Posgrado de la Universidad Chung-Ang en 2022 (Sra. Gahyun Lee). Este trabajo también contó con el apoyo de la subvención de la Fundación Nacional de Investigación de Corea (NRF) financiada por el gobierno coreano (MSIT) (No. 2020R1A5A1018052) y por el Programa de Desarrollo Tecnológico (RS202300261938) financiado por el Ministerio de Pymes y Startups (MSS, Corea).

Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
DLSZetasizer Pro
Alcohol etílico, absolutoDAEJUNG4023-2304
Lector de microplacas Hidróxido de sodio BioTeck
Sigma-Aldrich221465
TEMJEOL JEM-F200
TSADB difco236950
TSBDB difco211825
XRDNUEVO D8-Advance
Acetato de zincSigma-Aldrich383317

Referencias

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