Este protocolo describe un modelo de biopelícula polimicrobiana de cuatro especies relevante para los pulmones con fibrosis quística (FQ) que se puede utilizar para explorar el impacto de las interacciones bacterianas entre especies.
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Artículo de método
Este protocolo describe un modelo de biopelícula polimicrobiana de cuatro especies relevante para los pulmones con fibrosis quística (FQ) que se puede utilizar para explorar el impacto de las interacciones bacterianas entre especies.
La mayoría de los modelos in vitro carecen de la capacidad de investigar completamente los fenotipos bacterianos que emergen de las complejas interacciones observadas en entornos de la vida real. Esto es particularmente cierto en el contexto de infecciones difíciles de tratar, crónicas y polimicrobianas basadas en biopelículas detectadas en las vías respiratorias de personas que viven con fibrosis quística (FQ), una enfermedad genética multiorgánica. Si bien múltiples estudios de microbioma han definido las composiciones microbianas detectadas en las vías respiratorias de las personas con FQ (pwCF), hasta ahora ningún modelo in vitro ha integrado completamente las características pulmonares críticas relevantes para la FQ. Por lo tanto, existe una importante laguna de conocimiento en la capacidad de investigar los mecanismos que impulsan la patogénesis de las infecciones pulmonares por FQ de especies mixtas. Aquí, describimos un modelo de comunidad microbiana de cuatro especies desarrollado recientemente, que incluye Pseudomonas aeruginosa, Staphylococcus aureus, Streptococcus sanguinis y Prevotella melaninogenica cultivadas en condiciones similares a la FQ. A través de la utilización de este sistema, se observaron y exploraron a nivel molecular fenotipos clínicamente relevantes, como la recalcitrancia antimicrobiana de varios patógenos. La utilidad de este modelo in vitro reside en su flujo de trabajo estandarizado que puede facilitar el estudio de las interacciones entre especies en el contexto de las infecciones pulmonares crónicas por FQ.
Las estrategias destinadas a erradicar los microbios causantes de enfermedades, como los detectados en las vías respiratorias de la fibrosis quística (FQ), una enfermedad genética multiorgánica, a menudo fracasan1. Es decir, la presencia de comunidades microbianas resistentes similares a biopelículas que crecen en el entorno pulmonar rico en moco de la FQ puede causar infecciones crónicas que abarcanvarias décadas. Además, aunque la utilización de antimicrobianos de primera línea (Abx) y moduladores ha dado lugar a mejores resultados en las personas con FQ (pwCF), el enfoque clínico de "....
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Los detalles de todos los reactivos y equipos se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Preparación del medio de esputo artificial
NOTA: A lo largo de este protocolo, el medio de esputo artificial (ASM) se define como el medio relevante para la FQ modificado de SCFM2, publicado previamente por Turner y colegas17. A continuación se muestra una descripción de los pasos para preparar este medio. Consulte la Tabla de Materiales para realizar soluciones de stock y condiciones de almacenamiento. Esta versión de AS....
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Como se representa en la Figura 2, se informaron varios fenotipos, incluyendo (1) una reducción en el número de recuentos de células viables de P. aeruginosa y S. aureus cuando se cultivaron en comunidades planctónicas mixtas en comparación con el monocultivo, (2) un aumento en el crecimiento polimicrobiano de células de S. sanguinis y, (3) crecimiento de comunidades mixtas de P. melaninogenica como se informó previamente por Jean-Pierre y colegas
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La utilidad de este sistema de cocultivo in vitro clínicamente informado reside en su capacidad para detectar funciones bacterianas específicas de polimicrobianos. Es decir, a través de la utilización de este modelo hemos reportado fenotipos microbianos que van desde el crecimiento específico de la comunidad de Prevotella spp. (Figura 2) hasta cambios en la susceptibilidad a la CF Abx de primera línea de P. aeruginosa, S. aureu.......
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Los autores declaran no divulgar.
Nos gustaría agradecer al Dr. George A. O'Toole y al Dr. Thomas H. Hampton por su importante papel en el diseño y desarrollo del modelo comunitario polimicrobiano in vitro . Agradecemos a la Dra. Sophie Robitaille por sus útiles comentarios sobre el manuscrito. Este trabajo fue apoyado por una subvención de la Fundación de Fibrosis Quística JEAN21F0 a F.J-P. La figura 1 del manuscrito fue creada utilizando BioRender.
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| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| 1,2-dioleoil-sn-glicero-3-fosfocolina (DOPC) | Fisher Scientific NC0387928 | Prepare un caldo de 250 mg/mL en cloroformo directamente en el frasco. Mantener a -20 ° C. Concentración final 200 ° C. g/mL en 2x base ASM. | |
| Ácido 3-morfolinopropano-1-sulfónico (MOPS) | Sigma | M1254 | Concentración final 200 mM en base ASM 2X. |
| Replicador de 96 pines | Fisher Scientific | 05-450-9 | También se pueden utilizar replicadores desechables. Gato #NC1567338. |
| Placa estándar estéril de 96 pocillos con tapa | Fisher Scientific | 62406-081 | |
| Agar | Fisher Scientific | DF0145-17-0 | |
| AnaeroPack 2.5 L Tarro rectangular | Fisher Scientific | 23-246-385 | |
| CaCl2*2H2O | Fisher Scientific | C79-500 | Prepare un caldo de 1 M en agua y filtre la esterilización con un 0.22 μ Filtro M. Concentración final 3.5 mM en base 2x ASM. |
| de oveja desfribrinada | Para preparar placas de crecimiento para Streptococcus y Prevotella. | ||
| Ácido desoxirribonucleico de esperma de arenque | Sigma | D7290 | Concentración final 1,2 mg/mL en 2x base ASM. |
| FeSO4*7H2O | Fisher Scientific AA1449830 | Prepare un caldo de 1 mg/mL (3,6 mM) en agua y filtre la esterilización con un 0,22 μ Filtro M. Mantener envuelto en papel de aluminio. Concentración final 0.0072 mM en base 2x ASM. | |
| GasPaks | Fisher Scientific | B260678 | |
| Glucosa | Fisher Scientific | D16-3 | Preparar como un 20% de caldo (1,1 M) en agua y esterilizar en autoclave. Concentración final 6 mM en base 2x ASM. |
| Hemin | Sigma | 51280 | Disuelva 100 mg de hemina en 2 mL de NaOH 1 M y luego aumente el volumen a 200 mL con agua. Almacene en una botella ámbar o una botella regular envuelta con papel de aluminio a 4 & C. |
| K2SO4 | Fisher Scientific | P304-500 | Prepare un caldo de 0,25 M en agua y filtre la esterilización con un 0,22 μ Filtro M. Concentración final 0,54 mM en base 2x ASM. |
| Kanamicina | Prepare una solución madre de 50 mg/mL en agua. Filtro esterilizar con un 0.22 μ m filtrar y almacenar a 4 °C. | ||
| KCl | Fisher Scientific | P217-500 | Concentración final 30.0 mM en 2x base ASM. |
| KNO3 | Fisher Scientific | P263-500 | Prepare un caldo de 1 M en agua y filtre la esterilización con un 0.22 μ Filtro M. Concentración final 0.70 mM en base 2x ASM. |
| Clorhidrato de L-cisteína | Fisher Scientific AAA1038922 | ||
| ácido L-láctico | Sigma | L1750 | Prepare un caldo de 1 M en agua y filtre la esterilización con un 0,22 μ Filtro M. Ajuste el pH a 7.0. Concentración final 18.6 mM en base 2x ASM. |
| L-Triptófano | Sigma | T0254 | Preparar un caldo de 0,1 M en NaOH de 0,2 M y esterilizar por filtro con un 0,22 μ Filtro M. Mantener refrigerado a 4 & grados; C envuelto en papel de aluminio. Concentración final 0.132 mM en base 2x ASM. |
| Agar Sal de Manitol | Fisher Scientific | B11407 | Prepárese siguiendo las recomendaciones del fabricante. |
| Menadione | Sigma | M5625 | Prepare una solución madre de 10 mg/mL disuelta en etanol al 96-100%. Conservar a 4 ° C envuelto en papel de aluminio. Vortex antes de usar. |
| MgCl2*6H2O | Fisher Scientific | AA12288A9 | Prepare un caldo de 1 M en agua y filtre la esterilización con un 0.22 μ Filtro M. Concentración final 1.21 mM en base 2x ASM. |
| Mucina del estómago porcino - Tipo II | Sigma | M2378 | Prepare un caldo de 10 mg/mL (2x) en agua; mezcle bien antes de esterilizar en autoclave. Manténgalo a 4 °C. |
| Na2HPO4 | Fisher Scientific | S375-500 | Prepare un caldo de 0,2 M en agua y filtre la esterilización con un 0,22 μ Filtro M. Concentración final 2.5 mM en base 2x ASM. |
| N-acetilglucosamina | Sigma | A8625 | Prepare un caldo de 0,25 M en agua y filtre la esterilización con un 0,22 μ Filtro M. Mantener el caldo refrigerado a 4 &°C. Concentración final 0,6 mM en base 2x ASM. |
| NaCl | Fisher Scientific | S271-500 | Concentración final 103.7 mM en 2x base ASM. |
| NaH2PO4*H2O | Fisher Scientific | S369-500 | Prepare un caldo de 0,2 M en agua y filtre la esterilización con un 0,22 μ Filtro M. Concentración final 2.6 mM en base 2x ASM. |
| NaOH | Fisher Scientific | S318-500 | Prepare una solución madre de 5 M. Úselo para ajustar el pH de 2 veces el material base ASM. |
| NH4Cl | Fisher Scientific | A661-500 | Concentración final 4,6 mM en 2x base ASM. |
| oxolínico | Prepare una solución madre de 10 mg/mL de NaOH 0,5 M. Filtro esterilizar con un 0.22 μ m filtrar y almacenar a 4 °C. | ||
| Polymixin B | Prepare una solución madre de 10 mg/mL en agua. Filtro esterilizar con un 0.22 μ m filtrar y almacenar a 4 °C. | ||
| Pseudomonas Isolation Agar | Fisher Scientific | DF0927-17-1 | Prepárese siguiendo las recomendaciones del fabricante. |
| Todd Hewitt Broth | Fisher Scientific | DF0492-17-6 | Prepare siguiendo las recomendaciones del fabricante. |
| Caldo de soja tríptico | Fisher Scientific | DF0370-17-3 | Prepárese siguiendo las recomendaciones del fabricante. |
| Vancomicina | Prepare una solución madre de 50 mg/mL en agua. Filtro esterilizar con un 0.22 μ m filtrar y almacenar a 4 °C. | ||
| Extracto de levadura | Fisher Scientific | B11929 | |
| Gota sintética de levadura sin triptófano | Sigma | Y1876 | Concentración final 8.0 mg/mL en 2x base ASM. |
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