Artículo de método

Localización de la membrana plasmática y receptores de acetilcolina nicotínica intracelular neuronal mediante imagen cuantitativa en células de mamíferos

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DOI:

10.3791/69371

19 de diciembre de 2025

En este artículo

Resumen

Este protocolo describe la expresión y cuantificación de las subunidades neuronales de los receptores nicotínicos de acetilcolina utilizando la línea celular Neuro-2a de mamíferos. Las etiquetas fluorescentes sensibles al pH y la microscopía confocal permiten una evaluación precisa de la localización de receptores en la membrana plasmática frente a las expresadas en compartimentos intracelulares neutros en pH, facilitando el estudio del tráfico y la modulación farmacológica de nAChR.

Resumen

La cuantificación de los receptores de acetilcolina nicotínica neuronal (nAChR) expresados en la membrana plasmática de las células mamíferas es importante para el desarrollo de nuevas terapias selectivas por objetivo y para el estudio de proteínas chaperonas que modulan el tráfico de receptores. Este estudio presenta un conjunto sólido de metodologías para expresar tanto nAChR homoméricas como heteroméricas en células Neuro2a (N2a) de mamíferos y cuantificar su localización superficial frente a intracelular utilizando etiquetas fluorescentes sensibles al pH. pHuji y pHluorina supereclíptica (SEP) son proteínas sensibles al pH que pueden ser diseñadas para marcar proteínas recombinantes, permitiendo la visualización de la distribución espacial de las subunidades de nAChR. Estas etiquetas fluorescentes emiten a pH neutro pero se apagan en ambientes ácidos. Para rastrear la localización relativa de la membrana interna frente a la plasmática de las subunidades nAChR α7, α4 y β2, se adjunta pHuji o SEP al C-terminal de cada constructo de ADN. Para expresar α7-pHuji junto con su chaperona NACHO, o (α4-SEP; β2-pHuji) en células N2a, se utiliza un reactivo de transfección de ADN basado en lípidos. El reactivo de transfección y el ADN plasmido se incuban por separado en un medio sérico reducido a temperatura ambiente, y luego se combinan para formar complejos lipídio-ADN que facilitan la entrega de plásmidos a las células. Tras la incubación, las células se fotografían mediante microscopía confocal de células vivas en condiciones de pH alto y bajo o en presencia de un ligando fluorescente selectivo por subtipos. Las imágenes se analizan utilizando fluorescencia celular total corregida en los canales de fluoróforo relevantes, proporcionando información cuantitativa sobre la distribución de subunidades nAChR marcadas con fluorescencia entre la membrana plasmática y los compartimentos intracelulares. La imagen confocal de células vivas permite el seguimiento en tiempo real de la localización de la subunidad nAChR para distinguir diferencias entre poblaciones internas y de receptores superficiales. La expresión robusta de membrana plasmática de α7-pHuji o (α4-SEP; β2-pHuji) se logra en 24 horas a 37 °C. Este método puede adaptarse para incluir chaperonas adicionales, subunidades auxiliares o ligandos fluorescentes para el estudio del tráfico de nAChR, la modulación farmacológica y las alteraciones relacionadas con enfermedades en la expresión de nAChR.

Introducción

Los receptores de acetilcolina nicotínica neuronal (nAChR) son canales iónicos transmembrana controlados por ligando, expresados en la membrana plasmática de muchos tipos celulares, incluyendo neuronas, células gliales y células inmunitarias. Estos receptores están compuestos por α subunidades (α2-α10) o β (β2-β4) que se ensamblan para formar subtipos homómeros o heteroméricos, siendo α7 y α4β2 los nAChRs los más abundantes en elcerebro 1,2. La desregulación de estos subtipos se ha asociado con la enfermedad de Alzheimer, trastorno por consumo de nicotina, epilepsia hipermotor....

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Protocolo

NOTA: El siguiente procedimiento describe métodos que se han utilizado con éxito para transfectar transitoriamente la línea celular N2a con subunidades nAChR (Figura 1). Se logra una expresión robusta de membrana plasmática en 24 horas, como se captura con microscopía confocal de células vivas.

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Figura 1: Presentación esquemática de los métodos individuales presentados en el protoc....

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Resultados

Siguiendo los procedimientos de transfección anteriores, las nAChRs α7 y la proteína chaperona NACHO se expresaron conjuntamente en células N2a. Tanto las células no transfectadas como las transfectadas fueron marcadas con αBTX-AF647 24 horas después de la transfección de ADN. Como αBTX no es permeable a la membrana, toda la fluorescencia detectada se origina en receptores presentes en la membrana plasmática. En la Figura 2A, A′, se observó .......

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Discusión

Las metodologías presentadas para expresar y cuantificar subunidades de nAChR en células de N2a en mamíferos abordan desafíos de larga duración para lograr una expresión rápida (~24 horas) y abundante de nAChR (> 60%) en la membrana plasmática para estudios de descubrimiento, localización y tráfico de fármacos. Una fortaleza clave de este conjunto de protocolos es su adaptabilidad tanto para nAChRs homoméricos (α7) como heteroméricos (α4β2), y probablemente sea aplicable a otros subtipos.......

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores desean agradecer a James Janoso por su experiencia en microscopía técnica y al Centro para la Investigación Transformadora en Metabolismo (Instituto Nacional de Ciencias Médicas Generales de los Institutos Nacionales de Salud bajo el Premio Número P20GM130443) por apoyar el Núcleo de Microscopía en la Universidad de Alaska Fairbanks. Los esfuerzos de LW contaron parcialmente con financiación del Fondo de Inversión en Educación Superior, proporcionado por el estado de Alaska a través de la Universidad de Alaska. Los esfuerzos de SMS contaron con el apoyo del Premio al Desarrollo Institucional (IDeA) del Instituto Nacional d....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
0,25% Tripsina-EDTA (1X) Gibco25200-056Reactivo de desprendimiento celular
Alfa-Bungarotoxina Alexa Fluor 647InvitrogenB35450Conjugado de alfa-bungarotoxina
Gabinete de Bioseguridad de nivel 1 BSL & nbsp;NuaireNU-425-400Área de trabajo de cultivo celular estéril
Cloruro de calcioAventor/VWRBDH9224Componente búfer
D-(+)-glucosaMilliPore Sigma G8270Componente búfer
EMEM con L-glutaminaATCC30-2003Medio celular
ADN libre de endotoxinasFabricado en casa usando kits ZymoNo aplicableADN nAChR para uso en transfecciones transitorias celulares
Tubos microcentrífugas libres de endotoxinas, 0,5 mL Aventor/VWR89000-010ADN y preparación por transfección
Tubos microcentrífugas libres de endotoxinas, 1,5 mL Aventor/VWR20170-038ADN y preparación por transfección
Suero fetal bovinoAventor/VWR97068-085Suplemento sérico
Fluoview FV10iOlimpoFV10iMicroscopio Confocal
Platos de cristal con fondo MatTekMatTekP35GC-0-10-CAntenas de imagen
GraphPad Prism v. 10GraphPad Prismhttps://www.graphpad.com/featuresSoftware de análisis de datos
HEPESMilliPore Sigma H3375Componente búfer
Lipofectamina 2000Invitrogen11668019Reactivo de transfección
Cloruro de magnesio hexahidratoTermociencia413410025Componente búfer
MES hidratoMilliPore Sigma M5287Componente búfer
mTagBFP2-pBADAddGene 54572ADN de control para transfección transitoria celular  
Células Neuro 2 A (N2a)Colección de Cultura de Tipo AmericanoCCL-131Células utilizadas para transfecciones de ADN y expresión de nAChR
Opti-MEMGibco31985-070Medio sérico reducido
Penicilina/EstreptomicinaAventor/VWRK952-100mLAntibiótico
Bomba de peristalsisGilsonMiniPuls3El buffer cambia al hacer imagens 
Solución salina tamponada con fosfatoCalidad Biológico119-069-131Amortiguador salino
Pipete AidDrummond y Drummond;140084Transferencia precisa de líquidos
Puntas de pipete (estériles y libres de endotoxinas, 1000 μL)Rainin30389216Transferencia precisa de líquidos
Puntas de pipete (estériles y libres de endotoxinas, 20 μL)Rainin30389229Transferencia precisa de líquidos
Puntas de pipete (estériles y libres de endotoxinas, 250 μL)Rainin30389246Transferencia precisa de líquidos
Pipettes, P10Rainin L-10XLSTransferencia precisa de líquidos
Pipettes, P100Rainin L-100XLSTransferencia precisa de líquidos
Pipettes, P1000Rainin L-1000XLSTransferencia precisa de líquidos
Cloruro de potasioMilliPore Sigma P3911Componente búfer
Pipetas serológicas (estériles y libres de endotoxinas, 10 ML)Aventor/VWR89130-898Transferencia precisa de líquidos
Pipetas serológicas (estériles y libres de endotoxinas, 25 mL)Aventor/VWR89130-900Transferencia precisa de líquidos
Pipetas serológicas (estériles y libres de endotoxinas, 5 mL)Aventor/VWR76201-710Transferencia precisa de líquidos
Pipetas serológicas (estériles y libres de endotoxinas, 50 mL)Aventor/VWR75816-088Transferencia precisa de líquidos
Cloruro de sodioAventor/VWRBDH9286Componente búfer
Matraz de cultivo de tejidosHalcón353109Cultivo de platos
Kit de plásmidos ZymoPure II MaxiprepZYMO INVESTIGACIÓND4203-A + D4203-BProducción de ADN libre de endotoxinas
&alfa; 4-SEP Servicios de síntesis genética de ThermoFisher Scientific GeneArt    https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cloning/c-misc/geneart.htmlServicios personalizados de síntesis génica
&alfa; 7-pHujiTwist Biosciencehttps://www.twistbioscience.com/Servicios personalizados de síntesis génica
β 2-pHujiServicios de síntesis genética de ThermoFisher Scientific GeneArt    https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cloning/c-misc/geneart.htmlServicios personalizados de síntesis génica

Referencias

  1. Whiting, P. J., et al. Expression of nicotinic acetylcholine receptor subtypes in brain and retina. Mol Brain Res. 10 (1), 61-70 (1991).
  2. Albuquerque, E. X., et al. Nicotinic Receptor Function in the Mammalian Central Nervous System. Ann Ne....

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