Todos los procedimientos que involucraron muestras de tejido humano y muestras clínicas en este estudio se realizaron en cumplimiento de las directrices institucionales y fueron aprobados por el Comité de Ética del Hospital Oncológico de Jilin (Aprobación Ética nº 202507-002-01). Se obtuvo el consentimiento informado por escrito de todos los participantes o de sus tutores legales antes de la recogida de la muestra. Se recogieron muestras de sangre periférica (10 mL por paciente) de 19 pacientes con cáncer de pulmón avanzado no de células pequeñas (NSCLC) en el Hospital de Cáncer de Jilin, arrojando un total de 133 muestras de ARN. Para garantizar la seguridad en el laboratorio, todas las operaciones que involucraban productos químicos peligrosos se realizaban en un gabinete de seguridad biológica.
La información detallada sobre los instrumentos, reactivos y consumibles utilizados en el experimento se proporcionó en la Tabla de Materiales.
Aislamiento de PBMC
Las muestras de sangre periférica se procesaron para aislamiento con PBMC en un plazo de 2 horas tras la recogida. Los PBMC fueron aislados y purificados mediante centrifugación de gradiente de densidad Ficoll-Paque a 400 × g durante 25 minutos a temperatura ambiente con el freno desactivado. Tras la centrifugación, la capa intermedia de linfocitos lechos y blancos (que contenía PBMC) fue cuidadosamenteaspirada 16. Es importante destacar que estandarizamos estrictamente la concentración de entrada de PBMC para cada muestra y cada grupo para asegurar un número de células consistente en todas las condiciones experimentales, minimizando así la variación causada por la entrada y procesamiento celular. Esto garantiza que las diferencias observadas reflejen efectos genuinos de distintos métodos de conservación más que la variabilidad técnica. Para cada paciente, las PBMC aisladas se dividieron en 7 tubos: uno se utilizó para la extracción inmediata de ARN y se evaluó la concentración, pureza e integridad. Los seis tubos restantes fueron criopreservados a una tasa de refrigeración de -1 °C/min: tres se trataron con 1 mL de 90% FBS + 10% DMSO, y los otros tres con 1 mL de TRIzol, seguido de almacenamiento a -80 °C. La extracción de ARN y la evaluación de la calidad se realizaron tras 1, 3 y 6 meses de almacenamiento congelado.
Extracción de ARN
Las muestras se extraían del almacenamiento a -80 °C y se descongelaban a 4 °C hasta que se descongelabancompletamente en 17. Las muestras conservadas con 90% de FBS + 10% de solución de criopreservación DMSO o TRIzol se lavaron una vez con PBS, centrifugaron a 200 × g durante 5 minutos a 4 °C, y se descartó el sobrenadante para conservar el pellet celular. El ARN total se extrajo usando TRIzol. Específicamente, se añadió reactivo de TRIzol al tubo de microcentrífuga que contiene la muestra procesada, se mezcló por inversión e incubó a temperatura ambiente durante 5 minutos para asegurar la lisis completa. Posteriormente, se añadieron 200 μL de cloroformo, se mezclaron a fondo agitando y se incubaron a temperatura ambiente durante 15 minutos. Tras centrifugación a 2400 × g durante 15 minutos a 4 °C, la fase acuosa superior fue cuidadosamente aspirada y transferida a un nuevo tubo de Eppendorf. Luego se añadió isopropanol (0,5 mL), se mezcló bien e incubó a temperatura ambiente durante 5–10 minutos. Tras centrifugación a 2400 × g durante 10 minutos a 4 °C, el sobrenadante se descartaba, dejando el ARN precipitado en el fondo del tubo.
El precipitado se resuspendió en etanol al 75% (1 mL) con suave agitación, seguido de centrifugación a 1600 × g durante 5 minutos a 4 °C. El sobrenadante se descartaba y el pellet de ARN se dejaba secar al aire a temperatura ambiente durante 5–10 minutos. Finalmente, las muestras de ARN se disolvieron en agua tratada con DEPC de 50 μL e incubaron en un baño maría a 55–60 °C durante 5–10 minutos18. Detección de la concentración y pureza del ARN. La concentración y pureza de ARN se midieron utilizando el método de absorbancia ultravioleta con un espectrofotómetro UV-Vis de microvolumen de varias muestras (rango de medición: 2,5–3000 ng/μL). La concentración de ARN se determinó en función del valor de absorbancia en 260 nm, mientras que la pureza del ARN se evaluó utilizando la relación A260/A280. Se lanzó el software de medición; Se hizo clic en "Ácido Nucleico" en la interfaz principal. La plataforma de detección se enjuagó dos veces con agua destilada doblemente y luego se pipeteó 1,5 μL de la muestra de ARN sobre ella. Se seleccionó ARN-40 para el tipo de muestra, se pulsó "Medir" y se registraron los valores de concentración y pureza de A260/280. Una proporción A260/A280 entre 1,9 y 2,1 indicó una alta pureza de ARN, mientras que valores inferiores a 1,8 sugerían contaminación proteica y valores superiores a 2,2 indicaban posible degradación del ARN o isotiocianatoresidual 19.
Detección de integridad de ARN
La integridad del ARN (RIN) se evaluó utilizando un bioanalizador electroforético microfluídico automatizado y un kit de detección. El RIN varía de 1 a 10, siendo 1 que indica ARN altamente degradado y 10 que indica ARN intacto. Para el análisis, se colocaron 1,2 μL de ARN en un tubo de PCR, se desnaturalizó térmicamente a 70 °C durante 2 minutos usando un ciclador térmico, y se colocó inmediatamente sobre hielo. Posteriormente, se añadió 1 μL de ARN desnaturalizado a los pozos de detección del chip para su análisis20. Se lanzó el software, se seleccionó "Assay" y se seleccionó "ARN" del menú desplegable. El programa "Eucariota Total RNA Nano Series II.xsy" fue seleccionado según el reactivo utilizado. Se pulsó "Start" para iniciar la detección. Tras aproximadamente 10 minutos, se comprobó el número y la altura máxima de la escalera para comprobar si estaban normales.
Métodos estadísticos
Se realizaron pruebas de normalidad para todos los datos. Los datos normalmente distribuidos se expresaron como media ± desviación estándar (DS), mientras que los datos no distribuidos normalmente se expresaron como mediana (rango intercuartíli, IQR). Las comparaciones entre dos grupos se analizaron utilizando la prueba t pareada para datos normalmente distribuidos y la prueba no paramétrica de muestras relacionadas para datos no distribuidos normalmente. Para comparaciones entre tres o más grupos, se utilizó análisis de varianza con medidas repetidas para datos distribuidos normalmente, y la prueba no paramétrica de muestras relacionadas para datos no distribuidos normalmente. Todos los análisis estadísticos se realizaron utilizando SPSS 19.0 y GraphPad Prism 9.*P < 0,05, **P < 0,01, ***P < 0,001, ****P < 0,0001.