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Artículo de método

Desarrollo de un modelo de lesión pulmonar por blasto grave en una cabra para evaluación ultrasonográfica

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DOI:

10.3791/70656

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29 de mayo de 2026

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1Department of Trauma Medical Center, Daping Hospital, 2No. 951 Hospital of PLA

En este artículo

Resumen

Este estudio estableció con éxito un modelo de lesión pulmonar por blast grave en cabras con una presión de impulso de 4,5 MPa, causando lesiones significativas y mortalidad del 41,67%. La puntuación de ecografía pulmonar evaluó dinámicamente el daño, correlacionándose con indicadores tradicionales y demostrando su valor diagnóstico. Este modelo reproducible avanza en el diagnóstico y las terapias para la lesión pulmonar aguda.

Resumen

La lesión pulmonar por blast (BLI) causa daños pulmonares graves y alta morbilidad, especialmente en entornos militares e industriales, lo que puede provocar hemorragias y posible insuficiencia respiratoria, lo que pone de manifiesto la necesidad de mejorar los diagnósticos y tratamientos. Este estudio tenía como objetivo desarrollar un modelo estandarizado de BLI severo en cabras para evaluar la precisión y viabilidad de la ecografía en el punto de atención para la evaluación dinámica. Las cabras fueron sometidas a sobrepresión controlada por explosión mediante el tubo de choque biológico (BST-I.) a presiones de impulso de 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) y 5,0 MPa (n = 4), respectivamente. Se registraron parámetros clave, como la sobrepresión máxima. Se monitorizaron signos vitales, la puntuación de ecografía pulmonar (LUS), el índice de oxigenación (PaO₂/FiO₂) y el agua extravascular pulmonar (EVLW) al inicio (0 h antes de la lesión) y a 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h y 12 h después de la lesión. La tomografía computarizada torácica (TC) a 0 h y 12 h cuantificó la razón de lesión pulmonar, y el examen macroscópico tras la eutanasia evaluaron la puntuación de hemorragia y lesión pulmonar. Con 4,5 MPa, la sobrepresión máxima fue de 396,92 kPa, con una tasa de mortalidad post-lesión del 41,67%, mientras que con 4,0 MPa la tasa de mortalidad fue del 0%. La LUS aumentó con el tiempo, mostrando una correlación negativa con PaO₂/FiO₂ y una correlación positiva con el EVLW a las 3 horas, 6 y 9 horas, y una correlación positiva con la relación de lesiones pulmonares a las 12 horas. La relación bruta de área de lesión pulmonar fue del 42,14% en el grupo de 4,5 MPa, indicando lesiones graves, mientras que 4,0 MPa mostraron lesión moderada. El modelo de 4,5 MPa era adecuado para estudiar lesiones graves, a diferencia de 4,0 MPa, que causaba solo lesiones moderadas, y 5,0 MPa resultaba en una mortalidad del 100%. Se estableció un modelo reproducible de cabra para la lesión pulmonar por blast, utilizando eficazmente la LUS para evaluar el daño pulmonar de forma no invasiva a lo largo del tiempo, proporcionando una base para monitorizar y explorar estrategias terapéuticas para la lesión pulmonar aguda.

Introducción

Las exposiciones a explosiones, ya sea en entornos militares o civiles, siguen representando un factor importante en la morbilidad y mortalidad, siendo la lesión pulmonar un determinante principal delresultado 1. La evidencia contemporánea confirma que la contusión pulmonar es un factor de riesgo crítico para complicaciones respiratorias graves, como la neumonía y el síndrome de dificultad respiratoria aguda (SDRA), que afectan significativamente al pronóstico de los pacientesafectados 2. Por tanto, es esencial una evaluación rápida y precisa de la extensión de la lesión pulmonar para guiar el manejo clínico y mejorar la supervivencia.

La tomografía computarizada (TC) es eficaz para evaluar la gravedad de la lesión pulmonar por blasto (BLI)3. Sin embargo, implica exposición a radiación ionizante y puede ser poco práctico en escenarios que impliquen víctimas masivas o recursos médicos limitados. El examen clínico para la perforación de la membrana timpánica ha sido investigado como un posible marcador de lesión por blasto pulmonar, pero los estudios indican que la perforación aislada de la membrana timpánica no es un indicador fiable de lesión oculta por blasto pulmonar ni de mal pronóstico, y por tanto no excluye la necesidad de una investigación adicional4. La presentación clínica de las víctimas de explosión es muy variable; algunos pacientes presentan de forma aguda, mientras que otros pueden desarrollar insuficiencia respiratoria entre 12 y 24 horas después, lo que subraya la importancia crítica de una reevaluación frecuente en urgencias para detectar lesiones que no se hayan pasado, especialmenteBLI 5. Estas limitaciones ponen de manifiesto la urgente necesidad de una técnica de imagen rápida y compatible con el paciente para evaluar rápidamente la gravedad de la contusión pulmonar. En eventos de víctimas masivas, las herramientas capaces de triaje y evaluación rápidas son cruciales para optimizar la asignación de recursos y mejorar los resultadosgenerales 5.

La ecografía torácica se ha convertido en una herramienta indispensable en entornos de cuidados críticos, debido a su naturaleza en tiempo real, no invasiva y portátil6. Su papel consolidado en el diagnóstico de diversas enfermedades pulmonares pleurales y parénquimales la convierte en una modalidad muy prometedora para la evaluación dinámica de lesiones pulmonares por blasto. Signos ecográficos como la consolidación pulmonar, broncogramas, anomalías de la línea pleural y artefactos en forma de cola de cometa pueden servir como indicadores de la extensión y gravedad de la contusión pulmonar y el edema7. Su ausencia de radiación ionizante la hace especialmente adecuada para pacientes que requieren evaluaciones repetidas, y su accesibilidad en entornos con recursos limitados es una ventaja significativa.

Aunque la literatura existente apoya el uso de la ecografía en el punto de atención (POCUS) para el triaje y el seguimiento, la ecografía ya se utiliza habitualmente en la evaluación de traumas (por ejemplo, evaluación ampliada y enfocada con ecografía para traumatismos, eFAST) para detectar neumotórax yhemotórax 8. No obstante, una validación rigurosa de su precisión y viabilidad para clasificar una contusión pulmonar grave requiere un modelo animal traslacional y fisiológicamente relevante. Esta investigación busca establecer un modelo estandarizado de lesión pulmonar por blasto grave en cabras, que sirva como base para evaluar sistemáticamente la utilidad de la ecografía en el punto de atención en el rápido triaje y el seguimiento continuo de esta condición potencialmente mortal.

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Protocolo

Todas las metodologías experimentales detalladas en este manuscrito recibieron la aprobación del Comité de Bienestar y Ética de Animales de Laboratorio de la Tercera Universidad Médica Militar (SCXK (Yu) 2017-0002). Además, todos los procedimientos relacionados con animales se llevaron a cabo en estricta conformidad con las directrices de uso de animales establecidas por el comité de aprobación.

1. Animales experimentales

  1. Prepara cabras sanas, de 3 a 6 meses, hembras que pesen alrededor de 15 kg.

2. Plataforma de lesiones

  1. Causar lesiones por blast pulmonar por un tubo de choque biológico (el grande) (BST-I.), que mide 39,4 m de longitud (Figura 1) y está dividido por dos películas de aluminio semirrígidas en dos secciones: la sección de accionamiento y la sección experimental, usando presión de transmisión de 4,0 MPa, 4,5 MPa y 5,0 MPa, respectivamente.

3. Preparación animal

  1. Ayuna a los animales durante 24 horas y privalos de agua durante 8 horas antes del experimento.
  2. Pesa y registra.
  3. Utiliza midazolam para introducir anestesia (inyección intramuscular: 1 mg/kg).
  4. Afeita el pelaje del pecho, cuello y ingle de la cabra, y luego aplica la crema depilatoria para eliminar completamente el resto del pelo.

4. Dibujar particiones para la detección de ultrasonografía

  1. Anestesiar a la cabra con 3% de pentobarbital sódico (10–20 mg/kg) mediante una aguja que permanece en la vena safena. Mantenlo en una posición lateral relajada, con las extremidades perpendiculares al torso y la cabeza extendida.
  2. Mueve la sonda ultrasónica paralela al espacio intercostal desde abajo hacia arriba, desde la dorsal hasta la anterior para marcar los bordes del pulmón.
  3. Dibujar rectángulos sucesivos de 2,5 centímetros de largo a lo largo del espacio intercostal en la zona del pulmón como particiones para la detección de ultrasonografía. Hay un total de 66 particiones, con 33 a la derecha y 33 a la izquierda, y el número de particiones en cada espacio intercostal es 1, 2, 2, 5, 5, 5, 5, 4, 3, 1, respectivamente, desde el primer espacio intercostal hasta el décimo (Figura 2).

5. Operación quirúrgica

  1. Asegúrate de que la cabra esté bajo anestesia. Si no, inyecta un 3% adicional de pentobarbital sódico de 10 mg/kg.
  2. Cateterismo de la vena cervical
    1. Coloca la cabra en posición de reclinación lateral derecha y sujeta adecuadamente a la cabra.
    2. Realiza una incisión longitudinal cutánea, de aproximadamente 4 cm de longitud, sobre el tercio medio de la ranura yugular. Realizar una disección roma a través del tejido subcutáneo y el músculo cóli cutáneo para exponer y aislar la vena yugular externa.
    3. Insertar un catéter venoso central de doble lúmen (7Fr) bajo la guía de una aguja introductora. Avance el catéter aproximadamente 15 a 20 cm hasta que su punta quede situada dentro de la vena precabalíal de la cabra, aproximadamente a 2 cm de la aurícula derecha. Liga y fija bien el catéter en su sitio.
    4. Conecta la luz distal mediante una llave de paso de tres vías a un sensor de temperatura y a un transductor de presión para monitorización de presión venosa central e inyección salina helada. Conecta la luz proximal mediante una llave de paso de tres vías a una línea de infusión intravenosa para la administración de líquidos y la administración de anestesia suplementaria.
  3. Intubación endotraqueal
    1. Coloca la cabra en posición dorsal reclinada y asegura el cuello en extensión.
    2. Realizar una incisión longitudinal cutánea de 5–6 cm a lo largo de la línea media. Utiliza una disección roma para separar los músculos esternohioides y exponer un segmento de 2–3 cm de la tráquea.
    3. Coloca un tramo de sutura no absorbible debajo de la tráquea expuesta para levantarla y estabilizarla suavemente. Realiza una incisión horizontal en "T" a través de 2–3 anillos traqueales en el punto medio del segmento estabilizado.
    4. Inserta un tubo endotraqueal manguito tamaño 6.0 en la luz traqueal y avanza distalmente. Infla el manguito. Sutura la incisión traqueal de forma floja, y sutura el tubo de forma segura a la piel. Conecta el tubo endotraqueal directamente al circuito del ventilador mecánico.
      NOTA: Parámetros del ventilador: el modo de ventilación es ventilación intermitente a presión positiva (IPPV); el volumen de marea (VT) se establece en 8 mL/kg; la frecuencia respiratoria (RR) se mantiene en 15 respiraciones por minuto; la relación inspiratoria/espiratoria (I: E) está configurada como 1:1,5; el caudal (V) se establece en 7,2 L/min; la fracción de oxígeno inspirado (FIO 2) se ajusta al 21%; la presión positiva al final de la espiración (PEEP) se sitúa en 3,9 cm H2O; y la presión inspiratoria (Pinsp) varía de 9 a 12 cmH2O.
  4. Cateterismo de la arteria femoral
    1. Coloca la cabra en posición de reclinación lateral derecha y sujeta adecuadamente a la cabra.
    2. Realizar una incisión longitudinal cutánea de 3–4 cm a lo largo de la parte medial de la ingle. Emplea técnicas de disección contundente para revelar el haz neurovascular femoral, asegurando separar meticulosamente la arteria femoral de la vena y el nervio vecinos mediante una combinación de métodos de disección contundente y aguda.
    3. Realizar una pequeña arteriotomía transversal en el segmento aislado de la arteria femoral e insertar un catéter de termodilución Picco (4Fr) en la arteria. Avanza el catéter a 16 cm, asegurándote de que la punta esté en la arteria ilíaca común. Sutura firmemente el catéter a la piel circundante o al tejido subcutáneo.
      NOTA: Ten cuidado de no doblar ni forzar el catéter contra la pared del vaso, ya que esto comprometería mediciones precisas de transducción de presión y termodilución.
    4. Conecta el catéter mediante una llave de paso de tres vías a un transductor de presión para monitorizar hemodinámicamente de forma continua, como la presión arterial y el agua extravascular pulmonar. Esta línea también se utiliza para muestreos arteriales intermitentes de sangre. Mantener un lavado continuo con suero fisiológico heparinizado (1–2 mL/h) para evitar la oclusión del catéter.

6. Monitorización y mediciones

  1. Signos vitales
    1. Mide y registra los signos vitales en los siguientes momentos: 0 h antes de la lesión, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h y 12 h después de la lesión.
    2. Conecta todas las líneas de sensores al módulo de monitorización PiCCO. Coloca el transductor de presión a la altura del corazón. Abre la llave de paso del transductor al aire atmosférico y realiza cero calibración tanto para las líneas arteriales como venosas.
    3. Monitoriza y registra la presión arterial media (MAP). Colocar las almohadillas de electrodos para monitorizar la temperatura central (T), la frecuencia respiratoria (RR) y la frecuencia cardíaca (HR) en los lugares especificados: en el lado izquierdo del tórax, entre la segunda y la tercera costilla; en el lado izquierdo del pecho, entre la quinta y sexta costilla; y en el lado derecho del pecho, entre la segunda y la tercera costilla.
  2. Ultrasonografía (Modo B)
    1. Realizar exámenes de ecografía pulmonar en los siguientes momentos: 0 h antes de la lesión, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h y 12 h después de la lesión. Mantén una secuencia de escaneo consistente: examina primero el pulmón derecho y luego el izquierdo en cada momento de la época.
    2. Coloca la sonda de ultrasonido perpendicular a la superficie de la piel en el punto medio de cada partición. Asegúrate de que el punto marcador de la sonda esté orientado hacia la columna vertebral.
    3. Obtén vídeos escaneando los espacios intercostales desde la décima costilla hasta la primera costilla. Guarda grabaciones de vídeo que incluyan al menos dos ciclos respiratorios completos.
    4. Aplicar la siguiente puntuación estandarizada de ultrasonido pulmonar (LUS) a las imágenesguardadas 9: Asignar a dos ecografistas entrenados para realizar el proceso de puntuación de forma independiente. Calcula la media de las dos puntuaciones para la evaluación final.
      NOTA: La puntuación 0 indica la presencia de líneas A. La puntuación 1 se caracteriza por múltiples líneas B claramente separadas, o una unión de líneas B que abarca menos del 50% de la línea pleural. La puntuación 2 indica líneas B coalescentes difusas, comúnmente conocidas como "pulmón blanco". Se asigna la puntuación 3 cuando hay evidencia de consolidación, que puede presentarse como ecotextura tisular o broncogramas dinámicos de aire.
  3. Análisis de gases arteriales en sangre (GG)
    1. Recoger muestras de sangre arterial para su análisis en los siguientes momentos: 0 h antes de la lesión, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h y 12 h después de la lesión.
    2. Con jeringuilla, primero aspira y descarta el lavado de solución salina heparinizada y aproximadamente 5 mL de sangre de la línea arterial PiCCO. Posteriormente, extraer 0,3 mL de sangre arterial fresca directamente a través del catéter.
    3. Inyecta inmediatamente la muestra de sangre en un cartucho de prueba CG4+. Inserta el cartucho en el analizador portátil de gases sanguíneos para realizar el análisis.
    4. Registrar los valores medidos de pH, presión parcial de oxígeno (PaO 2) y otros parámetros relevantes. Calcula el índice de oxigenación (la relación entre la presión parcial de oxígeno y la fracción de oxígeno inspirado, PaO₂/FiO₂).
  4. Medición del agua extravascular pulmonar (EVLW)
    1. Realizar mediciones de EVLW mediante termodilución transpulmonar en los siguientes momentos: 0 h antes de la lesión, 0,5 h, 3 h, 6 h, 9 h y 12 h después de la lesión.
    2. Volver a poner a cero los transductores de presión arterial y venosa como se describe en la sección 6.1.2. Asegúrese de que se muestre una forma de onda arterial estable en el monitor antes de continuar.
    3. Inyecta exactamente 10 mL de solución salina helada (0 °C) como bolo a través del sensor de temperatura del catéter venoso central. Completa la inyección en un plazo de 7 segundos. Realiza tres inyecciones consecutivas en cada momento. Utiliza la media de las tres mediciones para el valor final de la VLW.
    4. Registrar EVLW y otros parámetros hemodinámicos proporcionados por el sistema PiCCO.
  5. Tomografía computarizada (TC)
    1. Haz tomografías torácicas a 0 h antes de la lesión y 12 h después de la lesión.
    2. Realizar el escaneo utilizando un escáner CT de 64 cortes con el siguiente protocolo: corriente de tubo: 200 mas; voltaje de válvula: 100 kV; Tiempo de rotación: 0,4 s.
    3. Que un radiólogo cualificado realice la exploración y el análisis posterior sin conocer las condiciones experimentales. Utiliza la estación de trabajo especializada para realizar un análisis volumétrico tridimensional del volumen pulmonar total y del volumen pulmonar lesionado con un umbral definido de la unidad de Hounsfield (HU) para segmentar el tejido pulmonar lesionado. Corrige el rango de daño manualmente.
    4. Calcula el porcentaje de volumen pulmonar lesionado (ratio de lesiones pulmonares) usando la fórmula: (volumen pulmonar lesionado / volumen pulmonar total) * 100%.

7. Procedimiento de lesión por explosión de la cabra

  1. Asignar aleatoriamente las cabras en una de tres categorías distintas de sobrepresión de explosión utilizando el tubo de biochoque BST-I. Ajustar la presión de impulso a niveles de 4,0 MPa (n = 4), 4,5 MPa (n = 12) y 5,0 MPa (n = 4), respectivamente, para producir las correspondientes ondas de choque primarias.
  2. Completar todas las mediciones y monitorizaciones previas a la lesión según lo detallado en la Sección 6. Asegura la cabra con correas de lona en posición de pie sobre el marco de fijación dentro del tubo de amortiguación. Coloca la cabra a 37,5 m de la fuente de la explosión con su lado derecho mirando hacia el epicentro de la explosión (Figura 3).
  3. Coloca el sensor de presión de aire en la ubicación del animal dentro del BST-I... Conecta el módulo de acondicionamiento de señales al sistema de adquisición de datos. Parámetros de lesión de registro: el pico de sobrepresión, el tiempo de ascenso, la duración positiva de la fase y el impulso positivo de la fase para cada evento de lesión.
    NOTA: Sobrepresión máxima: El valor máximo de la sobrepresión generada por la onda de choque. Tiempo de subida: El tiempo necesario para que la presión suba de 0 al valor máximo. Duración positiva de fase: La sobrepresión permanece por encima de la presión ambiente tras el paso del frente de choque. Impulso de fase positivo: El momento total por unidad de área impartido por la sobrepresión de la onda de choque.
  4. Recupera inmediatamente la cabra del tubo de descarga tras la explosión. Realiza una evaluación rápida del estado general de la cabra. Utiliza un dispositivo de succión para eliminar rápidamente cualquier secreción sangrienta del tubo endotraqueal y de las vías respiratorias. Inicia la ventilación manual inmediatamente si se observa apnea.
  5. Completar todas las mediciones y monitorizaciones posteriores a la lesión según se indica en la Sección 6.

8. Eutanasia y necropsia

  1. Anestesiar profundamente a la cabra con una inyección intravenosa de pentobarbital sódico al 3% tras completar el periodo de observación de 12 horas tras la lesión. Realizar la exanguinación mediante el catéter arterial u otro vaso principal. Procede a una esternotomía para extraer cuidadosamente el pulmón.
  2. Realiza la puntuación macroscópica usando el software ImageJ.
    1. Abre la imagen del pulmón bruto en ImageJ y conviértela a una imagen en escala de grises de 16 bits usando la ruta del menú: Imagen > Tipo > 16 bits. (Figura 4A–B)
    2. Fija el valor en escala de grises en la unión entre el tejido lesionado y el tejido normal como umbral. Designa todas las áreas por encima de este umbral en rojo para representar la zona de lesión (Figura 4C).
    3. Traza manualmente el borde externo del tejido pulmonar para definir el límite del área total del pulmón (Figura 4D).
    4. Calcula la proporción de píxeles (área de lesión / área pulmonar total) tanto para el lado dorsal como para el ventral usando el camino del menú: Analizar > establecer mediciones > Ctrl + M. Asegúrate de que las opciones 'Área', 'Fracción de área' y 'Límite al umbral' estén seleccionadas. Promedia estas dos proporciones para determinar la relación final de área de lesión para todo el pulmón.
  3. Calificar la contusión pulmonar usando un sistema de puntuación estandarizado adaptado de Yelverton etal 10, y los criterios históricos de nuestro laboratorio.
    NOTA: Criterios de puntuación para lesión pulmonar grave: Grado 0 (ausencia de lesión): Sin contusiones ni hemorragias visibles. Grado 1 (Leve): Petequias o contusiones dispersas que afectan menos del 10% de la superficie total pulmonar. Grado 2 (Moderado): Contusión o hepatización que abarca hasta el 30% de toda la superficie pulmonar. Grado 3 (Grave): Contusión o hepatización que afecta hasta el 50% de la superficie pulmonar total. Grado 4 (Muy grave): Contusiones o hepatización que afectan a más del 50% de toda la superficie pulmonar.

9. Análisis estadístico

  1. Realizar todos los análisis estadísticos utilizando el software SPSS (Versión 22.0).
  2. Expresa los datos de medición continua como media ± desviación estándar (x ± s).
  3. Prueba todos los conjuntos de datos para comprobar la normalidad.
  4. Emplea una prueba t de muestras independientes para comparar las medias entre dos grupos.
  5. Utiliza el coeficiente de correlación de Pearson para los análisis de correlación.
  6. Fija el umbral de significación en p < 0,05.
    NOTA: '#' significa p < 0,05, comparado con la puntuación previa a la lesión; '##' significa p < 0,01, comparado con la puntuación previa a la lesión. '*' significa p < 0,05, comparación entre el grupo de 4,0 MPa y el grupo de 4,5 MPa; '**' significa p < 0,01, comparación entre el grupo de 4,0 MPa y el grupo de 4,5 MPa.

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Resultados

En el grupo de 4,5 MPa, los parámetros medidos de lesión son los siguientes: sobrepresión máxima 396,92 ± 23,11 kPa, tiempo de subida 9,41 ± 0,32 ms, duración positiva de la fase 51,57 ± 1,39 ms, e impulso de fase positivo 5884,26 ± 231,44 kPa.ms. El perfil presión-tiempo de la onda de choque se muestra en la Figura 5. En la cohorte de 4,0 MPa, la tasa de mortalidad fue del 0% tanto inmediatamente después de la lesión como a las 12 horas. En la cohorte de 4,...

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Discusión

La lesión pulmonar por explosión es una condición grave resultante de la exposición a explosiones. Se caracteriza por daño parénquimata pulmonar, hemorragia alveolar, inflamación y trastornos de la coagulación, y frecuentemente progresa hacia SDRA con altamortalidad 11,12,13. Los métodos diagnósticos actuales incluyen TC para evaluación morfológicadetallada 3,14

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Divulgaciones

Todos los autores han declarado que no hay conflictos de interés.

Agradecimientos

Este trabajo contó con el apoyo de la Juventud Sobresaliente en Ciencia y Tecnología de Defensa Nacional (2023-JCJQ-ZQ-001), el Talento Destacado de Jóvenes Talentos de Biotecnología de Defensa Nacional (01-SWKJYCJJ06), el Fondo para la Juventud Sobresaliente de Chongqing (CSTB2022NSCQ-JQX0017) y el Proyecto de Construcción de Especialidades Clave Clínicas Militares.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
Escáner de TC de 64 cortesGE Lightspeed, EE. UU.5133730-3
Babylog 8000Drä Ger, Alemaniahttps://www.draeger.com/en_in/Products/Babylog-8000-plus
Tubo de choque biológico (el grande) (BST-I)Daping Hosipital, Universidad Médica del EjércitoBST-I
Cartucho de prueba CG4+Abbott, EE. UU.CG4+
Catéter venoso central de doble luzBraun, AlemaniaDuo V730
Aparato de succión eléctricaEquipo médico y equipamiento médico de Jiangsu Yuyue Supply Co., Ltd.7A-23D
Trompa endotraquealTAMPA, HangzhouETT6014C
Heparina sódicaChangzhou Qianhong Bio-pharma Co., Ltd.
Catéter intravenoso para uso únicoWeihai Jierui Medical Products Co., Ltd.22G y tiempos; 25mm/Y-G
Software ImageJ
IOTech  Software WaveView 7.15.6IOtech, EE. UU.https://iotechsoftware.com/
MidazolamNhwa Pharma Co. Chinahttp://pharma-api.com/2-2-5-midazolam-injection/
PCB  sensorPCB Piezotronics, Inc. (EE. UU.)M102A02
Pentobarbital sódicoShanghai PharmaceuticalNA
Estación de trabajo Philips IntelliSpace Portalhttps://www.philips.ca/healthcare/product/HC881101/intellispace-portal-12
Kit de monitorización PiccoPULSION, AlemaniaPV8215
Analizador portátil de gases en sangreAbbott, EE. UU.i-STAT 300G
Dispositivo portátil inalámbrico de ultrasonidos en colorYoukey Bio-Medical Electronics Co., ChinaD-236
Crema depilatoria pura VeetReckitt Benckiserhttps://www.veet.co.in/en/products/hair-removal-creams/

Referencias

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