Todos los procedimientos animales fueron revisados y aprobados por el Comité de Bienestar Animal y Ética del Colegio Médico de Nanchang (nº de aprobación). NY2SC 20250407). Todos los experimentos se llevaron a cabo de acuerdo con las directrices institucionales para el cuidado y uso de animales de laboratorio. Los productos químicos, reactivos y equipos se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Animales y tratamiento
En este estudio se utilizaron ratones machos C57BL/6J (tipo salvaje, 8 semanas). Los animales se alojaban bajo condiciones estándar de laboratorio con temperatura y humedad controladas y se les proporcionaba acceso libre a comida y agua. Tras la aclimatación, se indujo colitis crónica administrando tres ciclos de dextrano sulfato sódico (DSS) al 2,5% en el agua potable. Cada ciclo duraba 1 semana y estaba separado por un periodo de recuperación de 2 semanas con agua potable regularmente. Durante la última semana del protocolo experimental, los ratones de los grupos modelo y de tratamiento recibieron factor alfa de necrosis tumoral (TNF-α; 10 μg/100 g de peso corporal, dos veces al día) mediante gavage intragástrico para agravar aún más la lesión colónica. Los ratones de control normal recibieron solo vehículo y no estuvieron expuestos a DSS ni TNF-α.
Las cápsulas entéricas (FSEC) de cinco sabores de Sophora flavescens se utilizaron como un medicamento patentado chino comercializado y aprobado. La formulación contenía Sophora flavescens Aiton, Sanguisorba officinalis L., Indigo naturalis, Bletilla striata (Thunb.) Rchb.f., y Glycyrrhiza uralensis Fisch. ex DC. El contenido de las cápsulas del mismo lote de producción se pesaba y suspendía en agua destilada estéril para preparar suspensiones de dosificación frescas antes de su administración. Las suspensiones se mezclaban cuidadosamente antes de cada gavage para asegurar una dispersión uniforme. La fuente del producto, el número de aprobación, las especificaciones farmacéuticas y la información sobre control de calidad se proporcionan en la Tabla de Materiales. La calidad del producto se describió de acuerdo con la especificación farmacéutica aprobada y la información proporcionada por el fabricante, incluyendo especificaciones de cápsulas, apariencia, requisitos de liberación y desintegración enterica, requisitos de límite microbiano y estándares de control de calidad.
Los ratones tratados con FSC recibieron FSEC en dosis bajas (108 mg/kg de peso corporal), FSEC de dosis media (216 mg/kg de peso corporal) o FSEC de dosis altas (432 mg/kg de peso corporal) por gavage intragástrico dos veces al día durante la última semana de modelado. Los niveles de dosis se seleccionaron en función de la dosis clínica aprobada, la conversión de área de superficie corporal y consideraciones preliminares de rango de dosis. Los ratones tratados con vehículo recibieron el mismo volumen de agua destilada estéril por gavage intragástrica.
El grupo control positivo recibió el antagonista TLR4 CRX-526 a 1 mg/kg mediante inyección en la vena caudal durante la última semana de modelado. CRX-526 se utilizó como intervención antiinflamatoria de referencia. El estudio incluyó seis grupos (n = 6 por grupo): grupo control normal, modelo, FSC de baja dosis, FSC de dosis media, FSQ de dosis alta y CRX-526 grupo control positivo. Los ratones fueron sacrificados 24 horas después del último tratamiento del estudio. La eutanasia se realizó mediante dislocación cervical bajo anestesia isoflurana, de acuerdo con las directrices institucionales para el cuidado y uso de animales de laboratorio.
2. Evaluación histológica mediante tinción de hematoxilina y eosina
Se recogieron tejidos de colon de la región más afectada macroscópicamente entre el ano y la zona ileocecal. Para cada ratón, un segmento representativo de colon de esta región fue fijado en formol tampón neutro al 10%, incrustado en parafina, seccionado y teñido con hematoxilina y eosina. Para la evaluación histológica, se prepararon al menos tres secciones de cada animal y se examinaron cinco campos de alta potencia no solapados por sección. Los campos se seleccionaron sistemáticamente al azar escaneando la sección de un borde al otro, evitando áreas rasgadas, dobladas o con malas manchas. Los cambios histopatológicos, incluyendo ulceración mucosa, destrucción glandular, congestión e infiltración de células inflamatorias, fueron evaluados mediante microscopía óptica.
3. Medición de indicadores bioquímicos relacionados con el estrés oxidativo
Se recogieron muestras de sangre (0,5 mL) en tubos con anticoagulantes y centrifugadas aproximadamente a 1160 × g durante 10 minutos a 4 °C. El sobrenadante se recogió y utilizó para medir los niveles de hierro sérico, superóxido dismutasa (SOD), glutatión (GSH), catalasa (CAT) y mieloperoxidasa (MPO) utilizando los correspondientes kits de ensayo listados en la Tabla de Materiales según las instrucciones del fabricante.
4. Análisis inmunohistoquímico de JAK2 y STAT3
Las secciones de tejido de colon incrustadas en parafina (5 μm) se desparafinizaron en xileno, se rehidrataron mediante una serie de etanol graduado y se enjuagaron con solución salina tamponada con fosfato. La extracción de antígenos se realizó en un tampón de citrato (pH 6,0) mediante calentamiento por microondas. Tras enfriarse a temperatura ambiente, la actividad endógena de la peroxidasa se bloqueó con un 3% de H₂O₂ durante 10 minutos. Las secciones se bloquearon con suero normal de cabra al 5% durante 30 minutos a temperatura ambiente y se incubaron durante la noche a 4 °C con anticuerpos primarios contra JAK2 y STAT3 en diluciones de 1:50 y 1:80, respectivamente. Tras lavados salinos tamponados con fosfato, se incubaron secciones con un anticuerpo secundario conjugado con peroxidasa de rábano picante según las instrucciones del fabricante. Las señales inmunorreactivas se visualizaron usando 3,3′-diaminobenzidina, y los núcleos se contracoloraron con hematoxilina. Las secciones se deshidrataron, montaron y examinaron bajo un microscopio óptico.
5. Cuantificación de citocinas mediante ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas
Los tejidos del colon se cortaron en trozos de 2–3 mm, se homogeneizaron sobre hielo en solución salina tamponada con fosfato y se centrifugaron a 12.000 × g durante 15 minutos a 4 °C. Se recogió el sobrenadante y se midieron las concentraciones de TNF-α, IL-1α e IL-13 utilizando los correspondientes kits ELISA según las instrucciones del fabricante. Los valores de absorbancia se midieron usando un lector de microplacas y las concentraciones de citocinas se calcularon a partir de curvas estándar generadas para cada ensayo.
6. Análisis por Western blot de proteínas relacionadas con la ferroptosis
Se extrajeron proteínas totales de los tejidos del colon y se determinaron las concentraciones de proteínas mediante un ensayo de ácido bicinconínico. Cantidades iguales de proteína de cada muestra se separaron con SDS-PAGE y se transfirieron a las membranas. Tras bloquear con leche desnatada al 5% o un tampón bloqueador equivalente durante 2 horas a temperatura ambiente, las membranas se incubaron durante la noche a 4 °C con anticuerpos primarios contra GPX4, FTH1, ACSL4 y la proteína de control de carga β-actina, según se indica en la Tabla de Materiales. Al día siguiente, las membranas se lavaron e incubaron con el anticuerpo secundario conjugado con peroxidasa de rábano picante correspondiente durante 2 horas a temperatura ambiente. Las bandas proteicas se visualizaron usando un sustrato quimioluminiscente y se fotografiaron mediante un sistema de imagen quimioluminiscencia. Las intensidades de las bandas se cuantificaron mediante software de densitometría. Los niveles de expresión de GPX4, FTH1 y ACSL4 se normalizaron a β-actina, y se calculó la expresión relativa de proteínas para análisis estadístico.
7. Análisis estadístico
Los datos se presentan como media ± desviación estándar (DS). Se realizaron comparaciones entre varios grupos utilizando análisis unidireccional de la varianza, seguidos por la prueba post hoc de Bonferroni cuando se cumplieron las suposiciones de normalidad y homogeneidad de la varianza. Se consideró estadísticamente significativo un valor de P < 0,05.