Method Article

Un protocolo simplificado para microscopía de localización de molécula única en núcleos de Arabidopsis

DOI:

10.3791/70891

May 8th, 2026

In This Article

Summary

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Este protocolo presenta un flujo de trabajo eficiente para la microscopía de localización de moléculas individuales de núcleos aislados de Arabidopsis, utilizando aislamiento, fijación y marcaje optimizados para lograr una visualización nanométrica fiable de la cromatina y la ARN polimerasa II. Este enfoque puede adaptarse fácilmente a otras proteínas asociadas a la cromatina o modificaciones de histonas para imágenes de alta resolución.

Abstract

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Aunque la microscopía de fluorescencia confocal ha proporcionado valiosas perspectivas sobre la organización de la cromatina en núcleos vegetales, su resolución limitada por difracción limita la investigación de la arquitectura de la cromatina, lo que motiva el uso de técnicas de superresolución como la Microscopía de Localización de Molécula Única (SMLM). Entre estos enfoques, la microscopía de reconstrucción óptica estocástica directa (dSTORM) proporciona resolución a nanoescala en células individuales, permitiendo la visualización precisa de dominios de cromatina, modificaciones de histonas y organización nuclear. Aunque estos métodos se aplican cada vez más en sistemas de mamíferos, su uso en biología vegetal sigue siendo limitado, en gran parte debido a desafíos técnicos en la preparación de muestras.

Aquí presentamos un flujo de trabajo simplificado y reproducible para la imagen SMLM de núcleos aislados de Arabidopsis thaliana. Este protocolo comienza con la fijación de las plántulas para preservar la morfología nuclear, seguida de un corte suave de tejidos y centrifugación para enriquecer núcleos intactos. Los núcleos aislados se marcan luego con fluoróforo en medio líquido e inmovilizan en almohadillas de agarosa de baja fusión, una estrategia que mejora la estabilidad durante sesiones prolongadas de imagen con molécula única. Estos pasos minimizan colectivamente la fluorescencia de fondo, mejoran la consistencia del marcaje y aumentan la reproducibilidad entre réplicas biológicas.

Las preparaciones resultantes proporcionan una mayor claridad para visualizar modificaciones de la cromatina y la arquitectura nuclear en plantas. Al reducir las barreras técnicas para implementar la imagen SMLM en Arabidopsis, este protocolo proporciona un medio versátil para investigar la regulación epigenética, la organización de la cromatina y las variaciones topológicas nucleares a nanoescala. Este trabajo establece una base metodológica para aplicar la SMLM a las plantas, cerrando la brecha con la biología celular de mamíferos y abriendo nuevas oportunidades para estudiar cómo la arquitectura nuclear contribuye a la regulación genómica en respuesta a señales de desarrollo y ambientales en los sistemas vegetales.

Introduction

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La microscopía ha sido durante mucho tiempo una piedra angular para estudiar la organización de la cromatina y la arquitectura nuclear, revelando cómo el ADN y las proteínas asociadas a histonas se organizan en el espacio nuclear 3D y afectan la regulacióngénica 1,2. La microscopía de fluorescencia convencional ha proporcionado valiosos conocimientos sobre dominios de cromatina a gran escala como territorios cromosómicos, cromocentros y cuerposnucleares 3,4, factibles in situ, en particular en tejidos radicula....

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Protocol

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NOTA: La información detallada sobre los materiales e instrumentos utilizados en este protocolo está disponible en la Tabla de Materiales. Salvo que se especifique lo contrario, los tampones se eliminan en filtros apirogénicos de 0,2 μm. Se utiliza H2O ultrapuro destilado doble (ddH 2O) en todo este protocolo. Los pasos de centrifugación se realizan en microtubos de 1,5 mL utilizando un rotor de ángulo fijo.

1. Fijación de las plántulas y liberación de núcleos

  1. Coloque una placa de cultivo de 6 pozos sobre hielo bajo la campana extractora, y....

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Results

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El protocolo descrito anteriormente permite la preparación de núcleos de Arabidopsis thaliana de alta calidad adecuados para SMLM. Se realizaron varias rondas de optimización para mejorar la integridad nuclear y reducir los residuos citoplasmáticos y celulares que comprometen la calidad de la imagen. Tras cada paso de optimización, la calidad de las preparaciones nucleares se evaluaba mediante imágenes confocales utilizando un microscopio de disco giratorio Olympus IX81 antes de.......

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Discussion

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La preparación de núcleos de Arabidopsis thaliana para la microscopía de localización de moléculas individuales (SMLM) requiere varios pasos críticos que influyen fuertemente en la calidad final de la muestra. Como se describióanteriormente, es esencial un corte de tejido exhaustivo y consistente para maximizar la recuperación de núcleos intactos. El uso de cuchillas de microtomo en lugar de cuchillas estándar produce un.......

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Disclosures

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Los autores declaran no haber conflicto de intereses.

Acknowledgements

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Agradecemos al Lavis Lab y al equipo de Open Chemistry de Janelia por proporcionar generosamente los tintes JF y JFX. También estamos agradecidos a Elizabeth Kracik-Dyer y Célia Baroux por compartir amablemente su protocolo, así como a Aline Probst y Guillermo Orsi por sus consejos tan útiles. La imagen óptica se realizó en la plataforma de imagen M4D del centro Instruct-ERIC de Grenoble (ISBG; UAR 3518 CNRS-CEA-UGA-EMBL) dentro de la Asociación de Grenoble para Biología Estructural, apoyada por la Infraestructura Francesa para Biología Estructural Integrada (ANR-10-INBS-0005-02) y la Alianza de Grenoble para la Biología Estructural y....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Anticuerpo repetido YSPTSPS (fosfo S2) de la anti-ARN polimerasa II CTDAbcamAB5095Anticuerpo primario utilizado a 1/200 de dilución en un tampón de inmunotinción para visualizar la forma activa de la polimerasa (anticuerpo policlonal elevado en conejo)
Software de adquisiciónAbbelightNEO LiveImaging v2.18
Albúmina sérica bovinaSigma-AldrichA7906   
CatalaseSigma-AldrichC40
Agarosa certificada de baja fusiónBio-Rad1613111
Toplings de grosor de 1,5HMarienfeld117640Ø: 24 mm
D-(+)-Glucosa, anhidro, 99%Termo CientíficaA16828-36 
Espejo dicróicoSemrockDi03-R405/488/561/635-t1Espejo dicróico para la separación excitación/emisión
Dulbecco' s Solución salina tamponada con fosfato 10 y aguda;BioWestX0515 - 500 Trabajo en condiciones estériles
Cuchillas Epredia Ultra Desechables MicrotomoFisherScientific12191830Perfil bajo, de un solo uso
Placa de cultivo celular multipozo tratada con TC de 6 pozos transparentes y fondo plano, con tapa  Halcón353046
Solución de formaldehído 37%Carl Roth7398Trabaja bajo la campana extractora
Glucosa oxidasaSigma-AldrichG2133
GlicerolVWR24388.295
Anti-IgG anticonejo de cabra (H+L) Anticuerpo secundario altamente adsorbido cruzado, Alexa Fluor Plus 647Termo CientíficaA32733TRUsado a 1/200 como anticuerpo secundario acoplado a AF647
Solución Hoechst 33258Sigma-Aldrich94403Usado a 1/500 para contrateñir el ADN, añadido a la almohadilla de agarosa
Solución de ácido clorhídricoLaboratorio de QuímicaCL05.0311.1000 
JF549-HoechstLaboratorio Lavis y equipo de Química Abierta (Janelia)JF549-HoechstSe utiliza para contrateñir el ADN, añadido a la almohadilla de agarosa a una concentración final de 1,5 nM
Juego de molienda de tejido KIMBLE DounceSigma-AldrichD8938Tubo de 2 mL con morteros de espacio tanto grandes (0,0030-0,0050 pulgadas) como pequeños (0,0005-0,0025 pulgadas)
Unidad láserOxxiusL6CcEquipado con seis láseres: 405 nm - 100 mW, 488 nm - 200 mW, 532 nm - 500 mW, 561 nm - 300 mW, 640 nm - 500 mW y 730 nm - 30 mW
Cloruro de magnesio hexahidratoCarl RothHN03
Mercaptoetilamina (MEA)Sigma-Aldrich30070
MOPS sal sódica 98%Fisher Scientific SAS352590010
Filtro de emisión multibandaSemrockFF01-446/523/600/677Filtración por emisión multibanda para bloquear la luz de dispersión láser
NanodiamantesAdamas NanotecnologíasNDNV100nmHiWGA2mlEstojo 1 mg/mL
Cámara CMOS digital ORCA-FusionHamamatsuC14440-20UP 
Placa de Petri, 100/20 mm, PS, transparente, con ventilación, estérilGreiner Bio-One664161Se usaba para cultivar plantas con medio medio MS
Placa de Petri, cuadrada, PS, transparente, 120/120/17 mm, estérilGreiner Bio-One688161Se usa al cortar las plántulas de la planta
pluriStrainer Mini colador de célulaspluriSelect43-10030-50Tamaño de malla 30 y micro; m, adecuado para tubo Eppendorf de 1,5 mL
Cloruro de potasioSigma-AldrichP9333
Filtro de emisión de banda únicaSemrockFF01-698/70Filtro de emisión específico para el canal AF647
Filtro de emisión de banda únicaChromaET600/50mFiltro de emisión específico para el canal JF549
Cloruro de sodio (99,5%) y nbsp;Euromedex1112-A
Deslizamientos Star-Frost 76 x 26 mmKnittel  VS112711FKB.01
Filtro de jeringuilla estéril y barra de hueso; 33 mm porosidad 0,2 y micro; m Cono de esclusa de LuerClearLine146560
Sistema de superresoluciónAbbelightSAFe360Olympus IX83 equipado con objetivo de inmersión en aceite 100x NA1.5
Biomole de Tri-Sodio Citrato 2H2O Gen-ApexProlaboPRO-33615.268
Tris Base Molecular Biology GradePromegaH5135
Tris(2-carboxietil)fosfina cloruro (TCEP)Termo Científica20491
Triton X-100Euromedex2000-B
Preadolescentes 20Euromedex2001-B
Twinsil SpeedPicodente13001002Sellador de silicona
Sistema de limpieza por ozono ultravioleta horno UVOCSUVOCS Inc.T10X1020 minutos de exposición para limpieza de la cubierta y nbsp;
Bomba de vacíoVacuubrandVP 100C
Centrífuga Heraeus Megafuge 16RTermo CientíficaRotor TX-400 75003629. Centrifugación realizada con tubos de Eppendorf.

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Single Molecule LocalizationArabidopsis NucleiChromatin OrganizationSuper Resolution MicroscopydSTORM ImagingNuclear ArchitectureChromatin ModificationsFluorophore LabelingNuclei IsolationEpigenetic Regulation

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