Todos los procedimientos con animales siguieron la Guía del Consejo Nacional de Investigación para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio y fueron aprobados por el Comité de Ética del Hospital General de Fuzhou (número de aprobación: 202408002).
Reproducción de pez cebra
Todos los experimentos se realizaron utilizando pez cebra (Danio rerio) mantenidos bajo condiciones de laboratorio estándar. Se utilizaron peces cebra de tipo silvestre AB para el ensayo de toxicidad y el ensayo de regeneración tras amputación de la cola. Los peces cebra Tg(mpeg1:GFP) se utilizaron específicamente para la obtención de imágenes de macrófagos. Tg(mpeg1:GFP) es una línea reportera de macrófagos en la que la expresión de GFP marca las células de la línea de macrófagos bajo el control del promotor mpeg1, expresado en macrófagos. Todas las líneas de pez cebra se mantuvieron a 28,5 °C bajo un ciclo luz/oscuridad de 14 h/10 h. Solo se utilizaron embriones morfológicamente normales para los experimentos. En todos los experimentos, los embriones se incubaron en tampón Danieau, preparado con reactivos de grado analítico, incluyendo NaCl, KCl, Ca(NO₃)₂·4H₂O, MgSO₄·7H₂O y HEPES ajustado a pH 7,2.
Preparación del fármaco y determinación de la seguridad
Se disolvieron 40 mg de mollugina en 1 mL de DMSO para obtener un stock de 40 mg/mL. Primero, el stock se diluyó 1:10 en tampón de Danieau hasta 4 mg/mL, seguido de una dilución adicional a 22, 66 y 200 µg/mL para los tratamientos. Para determinar la concentración segura máxima, embriones de la cepa AB a 48 horas post-fecundación (hpf) fueron descorionados y desinfectados con hipoclorito de sodio al 0,003 % antes de distribuirlos en placas de 6 pocillos (n=20, tres pocillos por grupo). Los embriones se incubaron con mollugina (22 µg/mL, 66 µg/mL, 200 µg/mL, 240 µg/mL, 280 µg/mL, 320 µg/mL o 360 µg/mL) en medio E3 durante 48 h a 28,5 °C. La supervivencia se monitoreó mediante un microscopio estereoscópico, y la concentración más alta con una viabilidad embrionaria ≥90 % se estableció como el límite superior seguro para experimentos posteriores.
Construcción del modelo de amputación y regeneración de la cola
Para los estudios de regeneración, embriones silvestres AB de 48 hpf fueron anestesiados con tricaina al 0,03 % preparada en medio embrionario y colocados en posición lateral bajo un estereomicroscopio. Antes de la amputación de la cola, los embriones se mantuvieron en tampón de Danieau. Se realizó una amputación transversal estandarizada de la cola bajo guía estereomicroscópica. La línea de amputación se ubicó inmediatamente posterior al extremo de la notocorda, utilizando el extremo posterior de la notocorda como referencia anatómica. Se eliminó el pliegue de la aleta caudal distal a esta referencia mediante un microescalpelo para asegurar un nivel de lesión consistente entre los especímenes. Inmediatamente después de la amputación (0 h), se obtuvieron imágenes con un microscopio estereofluorescente. Tras la amputación, los embriones se transfirieron al medio de tratamiento correspondiente basado en E3 para el ensayo de regeneración. Las soluciones trabajo de mollugina se prepararon diluyendo la solución stock de mollugina en medio E3 hasta concentraciones finales de 22, 66 y 200 µg/mL. La mollugina se administró mediante exposición por inmersión durante el período de regeneración. Para igualar la exposición al vehículo, el grupo control sin lesión y el grupo modelo lesionado se mantuvieron en medio E3 que contenía DMSO al 0,5 %, correspondiente a la concentración final de DMSO en el grupo de mollugina de 200 µg/mL. Los embriones se mantuvieron en placas de 6 pocillos a 28,5 °C durante 2 días, con renovación diaria del medio de tratamiento correspondiente basado en E3. La regeneración se documentó mediante imágenes a las 24 y 48 h posteriores a la amputación, tanto con luz blanca como en condiciones de fluorescencia, para evaluar el crecimiento de la cola y la distribución de macrófagos. Las mediciones de las imágenes se realizaron con ImageJ.
Para la cuantificación de la regeneración, el área de la cola recuperada se midió como un área absoluta en µm2 y no se normalizó respecto al tamaño del embrión ni al tamaño original de la cola. Para minimizar la variabilidad, todos los embriones se amputaron en el mismo punto de referencia anatómico inmediatamente posterior al extremo del notocordio, y se utilizó el mismo punto de referencia para definir la región de medición en todos los grupos. Las regiones de interés se delimitaron manualmente en ImageJ según el contorno de la cola, y el análisis fue realizado por un investigador cegado respecto a los grupos de tratamiento. Para la cuantificación del área positiva para macrófagos, se analizaron en ImageJ imágenes de fluorescencia GFP de embriones Tg(mpeg1:GFP). La región de lesión/regeneración de la cola se definió manualmente como la región de interés utilizando el mismo punto de referencia anatómico empleado para la medición del área de la cola. Las imágenes se convirtieron a escala de grises de 8 bits y se restó la fluorescencia de fondo utilizando los mismos ajustes de corrección de fondo para todas las imágenes dentro del mismo experimento. Luego se aplicó uniformemente un umbral fijo de fluorescencia a todas las imágenes dentro de cada experimento para identificar las señales asociadas a macrófagos GFP-positivos. El área positiva para macrófagos se calculó como el área GFP positiva respecto al umbral dentro de la ROI definida. Las mediciones se basaron en el área positiva para fluorescencia, y no en la intensidad de fluorescencia ni en el recuento manual de células. Todos los análisis de imágenes fueron realizados por un investigador cegado respecto a los grupos de tratamiento.
Extracción de ARN y PCR cuantitativa en tiempo real (qRT-PCR)
Tras completar el ensayo de regeneración, se recolectaron y agruparon embriones de cada condición experimental (al menos 20 embriones por grupo) para el análisis de ARN. Para cada condición, una réplica biológica consistió en una muestra agrupada que contenía al menos 20 embriones del mismo grupo experimental. Se prepararon tres réplicas biológicas agrupadas e independientes para cada condición, las cuales se utilizaron para el análisis estadístico. El ARN total se aisló tras homogenización mecánica en un reactivo de extracción de ARN basado en fenol/guanidina. La calidad y concentración del ARN se evaluaron espectrofotométricamente mediante la medición de las relaciones A260/A280. La síntesis de ADN complementario (cDNA) se realizó utilizando un kit comercial de transcripción inversa. La amplificación por PCR se llevó a cabo con reactivos SYBR Green. Las condiciones de ciclado de la qRT-PCR fueron las siguientes: desnaturalización inicial a 95 °C durante 30 s, seguida de 40 ciclos de desnaturalización a 95 °C durante 5 s y hibridación/elongación a 60 °C durante 30 s. Se midieron los niveles de expresión de genes relacionados con apoptosis (caspasa-3 y Bcl-2), inflamación (TNF-α, IL-1β, IL-6, NF-κB1, TLR4, CCL2 e ICAM1) y fenotipo de macrófagos (iNOS y arginasa-1). La β-actina sirvió como gen de referencia. Los cambios relativos en la expresión génica se determinaron mediante el método 2−ΔΔCt. La información de los cebadores se lista en Tabla 1.
Ensayos de actividad para SOD y CAT
Los niveles de SOD y CAT se utilizaron para evaluar el estado antioxidante tras la lesión de la cola. A las 48 h posteriores a la amputación, se recolectaron los peces cebra de cada grupo y se homogenizaron en PBS frío. Tras la centrifugación, los extractos clarificados se utilizaron para la medición de SOD y CAT mediante kits comerciales de ensayo de actividad. La actividad de SOD se midió usando un kit de ensayo basado en WST-1, según las instrucciones del fabricante. Las muestras se cargaron en placas de ensayo de 96 pocillos junto con los patrones, y la absorbancia se leyó en un lector de microplacas. Las actividades enzimáticas se obtuvieron a partir de las curvas patrón. Todos los ensayos se realizaron por triplicado.
Análisis estadístico
Los datos se muestran como media ± EE de al menos tres experimentos independientes. Para el ensayo de toxicidad, cada experimento independiente consistió en un lote de embriones, con 20 embriones por grupo y pozos por triplicado. Para la imagen de regeneración y la imagen de macrófagos en pez cebra Tg(mpeg1:GFP), se utilizaron embriones individuales como unidades de medición, y se analizaron 10 embriones por grupo. Para el análisis de qRT-PCR, una réplica biológica consistió en una muestra agrupada que contenía al menos 20 embriones del mismo grupo experimental, y se analizaron tres réplicas biológicas agrupadas e independientes por condición. Para el análisis de actividad de SOD y CAT, se analizaron cinco réplicas biológicas agrupadas e independientes por condición. Las diferencias entre grupos se analizaron mediante ANOVA de un factor con la prueba post hoc de Tukey. Los análisis estadísticos se realizaron en GraphPad Prism. Las diferencias con p < 0,05 se consideraron significativas.