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Artículo de método

Enfoques integrados de aprendizaje automático para explorar el papel de los genes relacionados con la glicosilación en la fibrosis pulmonar idiopática

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DOI:

10.3791/71408

31 de julio de 2026

En este artículo

Resumen

Este estudio utilizó análisis transcriptómico integrado, aprendizaje automático (LASSO, SVM-RFE y XGBoost), análisis de infiltración inmune, acoplamiento molecular y validación RT-qPCR para identificar genes relacionados con la glucosilación asociados a fibrosis pulmonar idiopática. Se identificaron diez genes diagnósticos candidatos y se desarrolló y validó un modelo diagnóstico con un fuerte rendimiento en conjuntos de datos de tejido pulmonar.

Resumen

La fibrosis pulmonar idiopática (FI) es una enfermedad pulmonar crónica progresiva con una etiología poco clara, y la contribución de los genes relacionados con la glicosilación (GRG) a su patogénesis sigue siendo poco comprendida. Este estudio se centra en esclarecer los posibles mecanismos de las GRG en la IPF, identificar biomarcadores clave y desarrollar un modelo diagnóstico utilizando bioinformática y aprendizaje automático. Los datos transcriptómicos de la base de datos GEO se integraron con GRGs para investigar su papel en la IPF. Se identificaron genes expresados diferencialmente (DEGs) y se sometieron a análisis de enriquecimiento funcional e interacción proteína-proteína (IBP). Se aplicó un flujo de trabajo de aprendizaje automático que combinaba regresión LASSO, eliminación de características recursivas por vectores por máquina (SVM-RFE) y XGBoost para identificar genes clave y construir un modelo diagnóstico utilizando el conjunto de datos de entrenamiento GSE150910. El rendimiento del modelo fue evaluado posteriormente en cuatro conjuntos de datos independientes de validación. Se realizaron análisis adicionales, incluyendo análisis de enriquecimiento de conjuntos génicos (GSEA), análisis de infiltración inmunitaria, análisis de interacción fármaco-génico, acoplamiento molecular y validación RT-qPCR utilizando muestras de sangre periférica de pacientes con IPF y controles sanos, para investigar la relevancia biológica de los genes identificados. Se identificaron un total de 126 DEGs relacionados con la glicosilación y se seleccionaron 10 genes clave. El modelo diagnóstico alcanzó valores de área bajo la curva (AUC) de 0,963 y 0,814 en conjuntos de datos de tejido pulmonar, y 0,681 y 0,706 en conjuntos de datos sanguíneos. El análisis de infiltración inmunitaria reveló diferencias en la abundancia de células B entre subgrupos de pacientes, y la validación RT-qPCR confirmó la expresión diferencial de genes seleccionados en muestras clínicas. Estos hallazgos ofrecen una visión sobre la posible implicación de los GRG en la IPF y respaldan su relevancia como genes diagnósticos candidatos.

Introducción

La fibrosis pulmonar idiopática (IPF) es una enfermedad pulmonar intersticial progresiva y fibrosante caracterizada por una patogénesis heterogénea, que implica predisposición genética, desencadenantes ambientales y disfuncióninmunitaria 1,2. La enfermedad presenta desafíos clínicos significativos, principalmente debido a dificultades en el diagnóstico precoz, eficacia terapéutica limitada y un pronóstico generalmente deficiente. La prevalencia de la FPI oscila entre 20 y 80 pacientes por cada 100.000, y sin tratamiento, el tiempo medio de supervivencia tras el diagnóstico suele ser de 3 a 5 añosy 3,4. Identificar a los pacientes con mayor riesgo de progresión rápida de la enfermedad es fundamental para estrategias de tratamiento eficaces, permitiendo terapias dirigidas a quienes tienen más probabilidades de experimentar deterioro de la enfermedad.

La glicosilación, una modificación co-traduccional y pos-traduccional de las proteínas, desempeña un papel fundamental en la regulación de la actividad proteica y la biología celular 5,6. La glicosilación proteica desregulada probablemente contribuye a la progresión de laIPF 7,8. En muchas enfermedades reumáticas, se observan alteraciones en la glicosilación de proteínas, que están estrechamente asociadas con procesos inflamatorios y progresión dela enfermedad 9. Por ejemplo, Lyu et al. descubrieron que CRLF1 y GLG1 son actores clave en los procesos patológicos de laosteoartritis 10. Además, la glicosilación ha estado implicada en la activación de células inmunitarias en los tejidos pulmonares, vinculándola aún más con la patogénesis de las enfermedadespulmonares 11. Dado esto, la desregulación de la glicosilación proteica también puede contribuir a la progresión de la IPF. Sin embargo, el papel de los genes relacionados con la glicosilación (GRG) en la FPI sigue sin explorarse, y su potencial para diagnosticar la FPI merece una investigación más profunda.

En este caso, realizamos un estudio que integra enfoques de aprendizaje automático y datos de secuenciación de ARN para identificar GRGs clave asociados a la IPF. Estudios previos sobre IPF a menudo se han basado en análisis convencionales de expresión diferencial o en un único algoritmo de aprendizaje automático, lo que puede limitar la robustez y generalización de biomarcadores candidatos12,13. Para abordar estas limitaciones, empleamos un flujo de trabajo computacional de varios pasos que combinaba análisis de expresiones diferenciales con múltiples algoritmos de aprendizaje automático, incluyendo LASSO, SVM-RFE y XGBoost, para mejorar la fiabilidad en la selección de características. Además, el modelo diagnóstico fue evaluado a través de múltiples conjuntos de datos independientes y los hallazgos clave se validaron posteriormente utilizando muestras clínicas. Posteriormente se desarrolló y validó un modelo diagnóstico, y se analizaron las características de infiltración inmunitaria. Además, se exploraron el microambiente inmunitario y las posibles interacciones moleculares asociadas con los genes identificados. Aunque este estudio se centró en la IPF, la estrategia analítica empleada aquí puede ser aplicable a otras enfermedades pulmonares crónicas y conjuntos de datos transcriptómicos, proporcionando un marco reproducible para la identificación y validación de genes clave. Véase la Figura 1 para el proceso específico.

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Protocolo

Este estudio fue aprobado por la Junta de Revisión Institucional del Primer Hospital Afiliado de la Universidad Médica de Bengbu (Número de aprobación: 2023YJS162). Se obtuvo el consentimiento informado por escrito de todos los participantes antes de la recogida de la muestra.

Recogida de datos

Los datos transcriptómicos utilizados en este estudio se obtuvieron de la base de datos Gene Expression Omnibus (GEO) (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/; RRID: SCR_005012). El conjunto de datos principal de entrenamiento, GSE150910, se generó utilizando la plataforma Illumina NovaSeq 6000 (GPL24676) y comprendía 103 muestras de tejido pulmonar IPF y 103 de tejido pulmonar normal. Para validar los hallazgos, se emplearon conjuntos de datos independientes GSE24206, GSE110147, GSE93606 y GSE38958. La información detallada de cada conjunto de datos se proporciona en la Tabla 1. Además, se seleccionaron un total de 636 GRGs de un estudiopreviamente publicado 14.

Análisis de expresión diferencial y caracterización funcional de DEGs relacionados con la glicosilación

Se realizó un análisis diferencial de expresión entre muestras de tejido pulmonar IPF y normal del conjunto de datos GSE150910 utilizando el paquete R DESeq2 (RRID: SCR_015687). Genes con un valor p ajustado (padj) < 0,05 y |log2FoldChange| > 0,5 se consideraron genes expresados diferencialmente (DEGs). Las DEGs relacionadas con la glicosilación (GR-DEGs) se identificaron intersectando las DEGs con un conjunto predefinido de 636 GRGs. Para investigar más a fondo los roles biológicos de estos genes, se realizaron análisis de enriquecimiento por Ontología Génica (GO) y análisis de vías de la Enciclopedia de Genes y Genomas de Kioto (KEGG) para esclarecer sus funciones funcionales y su implicación en las vías. Se generó una red de interacción proteína-proteína (PPI) utilizando la base de datos STRING (RRID: SCR_005223)15 con un umbral de puntuación de confianza en la interacción de > 0,7, para dilucidar las interacciones moleculares y los posibles mecanismos reguladores de los GR-DEGs en la IPF.

Cribado de genes clave y construcción de un modelo diagnóstico

Para detectar genes clave para la IPF a partir de GR-DEGs, empleamos múltiples algoritmos de aprendizaje automático. Inicialmente, la regresión LASSO (RRID: SCR_003418) se equipó con regresión logística binaria (familia = "binomial") y el parámetro de penalización óptimo λ se seleccionó mediante validación cruzada de 10 veces (nfold = 10). Los resultados finales de selección fueron las características con coeficientes distintos de cero correspondientes a λ_(min) (0,01700442). Para SVM-RFE, se utilizó la función rfe del caret de paquete R. La eliminación recursiva de características se realizó mediante validación cruzada de 10 veces (método = "cv", número = 10), filtrando progresivamente características de 1 a 126, utilizando la precisión para determinar el subconjunto óptimo de características. En XGBoost, la función objetivo se configuró en regresión logística binaria (objetivo = "binario: logístico"), con la métrica de evaluación en pérdida logarítmica (eval_metric = "logloss"), el número de iteraciones (rondas) en 100 y la tasa de aprendizaje (eta) en 0,1. Los 20 genes principales fueron seleccionados en función de sus puntuaciones de importancia de características (Ganancia). Al intersectar los resultados de estos métodos, se identificó un conjunto refinado de genes clave. A partir de este conjunto génico, se construyó un modelo diagnóstico XGBoost utilizando el conjunto de datos de entrenamiento (GSE150910), y su rendimiento predictivo se evaluó mediante análisis de características operativas del receptor (ROC) en conjuntos de datos externos de validación (GSE110147, GSE24206, GSE93606 y GSE38958). Además, se desarrolló un nomograma para visualizar la contribución de cada gen seleccionado a la probabilidad de la enfermedad, y la utilidad clínica del modelo se evaluó a fondo mediante curvas de calibración y análisis de curvas de decisión (DCA).

Exploración de las vías biológicas de genes clave

Explorar el contexto biológico de los genes clave identificados por el aprendizaje automático. El Análisis de Enriquecimiento de Conjuntos Génicos (GSEA)16 se realizó basándose en las listas de genes de la Molecular Signatures Database (MSigDB) (RRID: SCR_016863)17y las vías fueron evaluadas para NES > 1. Las vías enriquecidas por el tope se visualizaron usando la función enrichplot.

Explorando la función biológica y las diferencias en el panorama inmunológico en subtipos de FPI basándose en puntuaciones génicas clave

Basándose en los perfiles de expresión de los genes clave identificados, se calcularon puntuaciones del Análisis de Enriquecimiento de Conjuntos Génicos (ssGSEA) de muestra única y se utilizaron para estratificar a los pacientes con IPF en grupos de alta y baja puntuación basándose en la mediana de la puntuación. Se realizó un análisis diferencial de expresión entre ambos grupos, seguido por GSEA (RRID: SCR_003199)18 para realizar análisis de Procesos Biológicos GO (GOBP) y de enriquecimiento de vías KEGG sobre los DEGs.

Análisis de la infiltración de células inmunitarias y diferencias clave en la expresión génica

Tras la estratificación de subgrupos basada en las puntuaciones ssGSEA, se evaluaron las diferencias en infiltración inmune entre los grupos con puntuación alta y baja. Primero, calculamos las abundancias relativas de 22 tipos de células inmunitarias en las muestras utilizando el algoritmo CIBERSORT (RRID: SCR_016955)19 en combinación con la matriz de características LM22. Específicamente, se utilizó la función deconv_tme en el paquete R IOBR (parámetros: método = "cibersort", arrays = FALSE, perm = 200) para los cálculos, y se generaron diagramas de caja usando el paquete ggpubr (RRID: SCR_021139) para evaluar las diferencias en la infiltración de células inmunitarias entre los grupos con puntuación alta y baja. Además, la función gsva en el paquete R GSVA (usando el método ssGSEA) se utilizó para calcular las puntuaciones de enriquecimiento de 28 tipos de células inmunitarias. Estas puntuaciones se normalizaron luego mediante escalado Min-Max para mapearlas al intervalo [0, 1], facilitando comparaciones entre tipos celulares. Finalmente, se realizaron pruebas de suma de rangos de Wilcoxon para comparar la expresión de genes clave entre muestras normales y pacientes con IPF en los conjuntos de datos GSE150910 y GSE110147, proporcionando un análisis exhaustivo de la infiltración celular inmunitaria y las diferencias de expresión génica entre subgrupos de IPF.

Validación de genes clave en pacientes con IPF mediante análisis RT-qPCR

Para validar la relevancia diagnóstica de los genes identificados, se seleccionaron seis genes con las puntuaciones de mayor importancia según el algoritmo XGBoost para validación de niveles de expresión en pacientes con IPF y controles sanos mediante PCR cuantitativa de transcripción inversa (RT-qPCR). Se recogieron un total de 20 muestras de sangre, incluyendo 9 de pacientes con IPF y 11 de individuos sanos, del Primer Hospital Afiliado de la Universidad Médica de Bengbu. Se extrajo ARN total de las muestras de sangre y se midió la concentración de ARN utilizando un microlector multifuncional. La calidad del ARN se evaluó antes de los análisis posteriores. El ADN genómico fue eliminado durante la transcripción inversa, y las secuencias de cebador utilizadas para RT-qPCR se enumeran en la Tabla 2. La especificidad del cebador fue verificada mediante análisis de curva de fusión. GAPDH se utilizó como gen de referencia interno. Los niveles relativos de expresión génica se calcularon utilizando el método 2-ΔΔCt . Este paso de validación proporciona un apoyo experimental preliminar para la expresión diferencial y la posible relevancia diagnóstica de los genes identificados en la IPF.

Análisis estadístico

Los datos se analizaron en R, y se utilizó la prueba de Wilcoxon para detectar diferencias entre ambos grupos. El análisis de enriquecimiento GSEA, GO y KEGG se realizó utilizando el cluster Profiler de paquetes R (RRID: SCR_016884). Un valor p < 0,05 se consideraba significativo salvo que se especificara lo contrario.

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Resultados

Análisis funcional y análisis de redes de interacción de GR-DEG

Para investigar la implicación génica en la IPF, se realizó un análisis de expresión diferencial de GSE150910, identificando 4.216 DEGs (Figura 2A). Al intersectar estos DEGs con 636 GRGs, se identificaron 126 genes de glicosilación asociados a la enfermedad (Figura 2B). Además, para evaluar las posibles ...

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Discusión

La FPI es una enfermedad crónica y progresiva de etiología desconocida que reduce significativamente la calidad de vida de los pacientes y conduce a una mortalidad mástemprana 4. A pesar de los avances en las estrategias terapéuticas, el tiempo medio de supervivencia sigue siendo bajo tras el diagnóstico, y la patogénesis de la FPI aún no se entiende completamente22. Por lo tanto, esclarecer los mecanismos moleculares subyacentes a la IPF e...

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Divulgaciones

Los autores no tienen conflictos de interés que declarar.

Agradecimientos

Agradecemos a todos los colegas que han brindado ayuda y apoyo durante todo el proceso de investigación. Su colaboración y apoyo han sido invaluables para nuestro trabajo. Esta investigación no recibió financiación externa.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
CaretR Foundation for Statistical ComputingVersión 6.0.94SVM-RFE
ClusterProfilerR Foundation for Statistical ComputingVersión 4.12.6GSEA, GO y análisis de enriquecimiento KEGG
DESeq2R Foundation for Statistical ComputingVersión 1.44.0Análisis de expresión diferencial
Fast First-Strand cDNA Synthesis MixGoonie Biotech Co., Ltd.500-101Síntesis de cDNA para RT-qPCR
FastTaq qPCR SYBR Green Master MixGooniebio500-102Amplificación de PCR cuantitativa
Sistema de PCR cuantitativa fluorescenteBio-Rad Laboratories, Inc.CFX96Amplificación de PCR cuantitativa
GEO DatabaseNCBIhttps://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/Fuente de datos del transcriptoma
ggpubr R Foundation for Statistical ComputingVersión 0.6.0Generación de gráficos de caja
GSVAR Foundation for Statistical ComputingVersión 1.52.3ssGSEA
MSigDBBroad Institutehttps://www.gsea-msigdb.org/Análisis GSEA
Sistema de PCRBio-Rad Laboratories, Inc.PTC TempoSíntesis de cDNA para RT-qPCR
PrimersTsingke Biotechnology Co., Ltd.N/ASíntesis personalizada de cebadores qPCR
Software RR Foundation for Statistical ComputingVersión 4.4.1Análisis estadístico y visualización
Reactivos de extracción de ARN total RNA IsolaterVazyme Biotech Co., Ltd.R401-01Extracción de ARN total de sangre completa
Base de datos STRINGSTRING Consortiumhttps://string-db.org/Construcción de red de PPI
Lector multimodo Synergy HTXBioTek Instruments, Inc.Synergy HTXMedición de concentración de ARN

Referencias

  1. Koudstaal T, Wijsenbeek MS. Idiopathic pulmonary fibrosis. Presse Med. 2023;52(3):104166.
  2. Moss BJ, Ryter SW, Rosas IO. Pathogenic Mechanisms Underlying Idiopathic Pulmonary Fibrosis. Annu Rev Pathol. 2022;17:515-46.
  3. Bonella F, Spagnolo P, Ryerson C. Current and Future Treatment Landscape for Idiopathic Pulmonary Fibrosis. Drugs. 2023;83(17):1581-93.
  4. Spagnolo P, et al. Idiopathic pulmonary fibrosis: Disease mechanisms and drug development. Pharmacol Ther. 2021;222:107798.
  5. Schjoldager KT, Narimatsu Y, Joshi HJ, Clausen H. Global view of human protein glycosylation pathways and functions. Nat Rev Mol Cell Biol. 2020;21(12):729-49.
  6. He M, Zhou X, Wang X. Glycosylation: mechanisms, biological functions and clinical implications. Signal Transduct Target Ther. 2024;9(1):194.
  7. Xie X, Kong S, Cao W. Targeting protein glycosylation to regulate inflammation in the respiratory tract: novel diagnostic and therapeutic candidates for chronic respiratory diseases. Front Immunol. 2023;14:1168023.
  8. Shi X, et al. Secreted RCN3 acts as an early epithelial-fibroblast mediator via TGFβR1-Smad signaling in post-ALI pulmonary fibrosis. Cell Commun Signal. 2026;24(1).
  9. Kissel T, Toes REM, Huizinga TWJ, Wuhrer M. Glycobiology of rheumatic diseases. Nat Rev Rheumatol. 2023;19(1):28-43.
  10. Lyu Y, et al. Identification of proteins and N-glycosylation sites of knee cartilage in Kashin-Beck disease compared with osteoarthritis. Int J Biol Macromol. 2022;210:128-38.
  11. Komaromy A, Reider B, Jarvas G, Guttman A. Glycoprotein biomarkers and analysis in chronic obstructive pulmonary disease and lung cancer with special focus on serum immunoglobulin G. Clin Chim Acta. 2020;506:204-13.
  12. Ruan H, Ren C. Integrating machine learning with bioinformatics for predicting idiopathic pulmonary fibrosis prognosis: developing an individualized clinical prediction tool. Exp Biol Med (Maywood). 2024;249:10215.
  13. Wang L, et al. Serum Proteomics Identifies Biomarkers Associated With the Pathogenesis of Idiopathic Pulmonary Fibrosis. Mol Cell Proteomics. 2023;22(4):100524.
  14. Shi Y, et al. Glycosylation-related molecular subtypes and risk score of hepatocellular carcinoma: Novel insights to clinical decision-making. Front Endocrinol (Lausanne). 2022;13:1090324.
  15. Szklarczyk D, et al. The STRING database in 2023: protein-protein association networks and functional enrichment analyses for any sequenced genome of interest. Nucleic Acids Res. 2023;51(D1):D638-d46.
  16. Yan S, et al. Identification of ITGAX and CCR1 as potential biomarkers of atherosclerosis via Gene Set Enrichment Analysis. J Int Med Res. 2022;50(3):3000605211039480.
  17. Wang T, He Q, Chan KHK. A Multi-omics approach to identify and validate shared genetic architecture in rheumatoid arthritis, multiple sclerosis, and type 1 diabetes: integrating GWAS, GEO, MSigDB, and scRNA-seq data. Funct Integr Genomics. 2025;25(1):91.
  18. Lu Y, Lu D, Li C, Chen L. Exploring Immune Cell Infiltration and Small Molecule Compounds for Ulcerative Colitis Treatment. Genes (Basel). 2024;15(12).
  19. Guan M, Jiao Y, Zhou L. Immune Infiltration Analysis with the CIBERSORT Method in Lung Cancer. Dis Markers. 2022;2022:3186427.
  20. Roy D, Ramasamy R, Schmidt AM. Journey to a Receptor for Advanced Glycation End Products Connection in Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 Infection: With Stops Along the Way in the Lung, Heart, Blood Vessels, and Adipose Tissue. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(2):614-27.
  21. Li Z, Yang P, Feng B. Effect of atorvastatin on AGEs-induced injury of cerebral cortex via inhibiting NADPH oxidase -NF-κB pathway in ApoE(-/-) mice. Mol Biol Rep. 2020;47(12):9479-88.
  22. Liu GY, Budinger GRS, Dematte JE. Advances in the management of idiopathic pulmonary fibrosis and progressive pulmonary fibrosis. Bmj. 2022;377:e066354.
  23. Liao Y, et al. Integrating cellular experiments, single-cell sequencing, and machine learning to identify endoplasmic reticulum stress biomarkers in idiopathic pulmonary fibrosis. Ann Med. 2024;56(1):2409352.
  24. Liu B, et al. A novel model for predicting prognosis in patients with idiopathic pulmonary fibrosis based on endoplasmic reticulum stress-related genes. Cell Biol Int. 2024;48(4):483-95.
  25. Zhu H, et al. Comprehensive analysis of an endoplasmic reticulum stress-related gene prediction model and immune infiltration in idiopathic pulmonary fibrosis. Front Immunol. 2023;14:1305025.
  26. Yeo HJ, et al. Development of a Novel Biomarker for the Progression of Idiopathic Pulmonary Fibrosis. Int J Mol Sci. 2024;25(1).
  27. Perkins TN, Oury TD. The perplexing role of RAGE in pulmonary fibrosis: causality or casualty? Ther Adv Respir Dis. 2021;15:17534666211016071.
  28. Dai J, et al. Construction of a lipid metabolism-related and immune-associated prognostic score for gastric cancer. BMC Medical Genomics. 2023;16(1):93.
  29. Li W, et al. An 11-gene glycosyltransferases-related model for the prognosis of patients with bladder urothelial carcinoma: development and validation based on TCGA and GEO datasets. Translational Andrology and Urology. 2024;13(12).
  30. Li SJ, et al. Identifying causal genes for migraine by integrating the proteome and transcriptome. J Headache Pain. 2023;24(1):111.
  31. Zhang W, et al. ANK2 as a novel predictive biomarker for immune checkpoint inhibitors and its correlation with antitumor immunity in lung adenocarcinoma. BMC Pulm Med. 2022;22(1):483.
  32. Burkhard T, et al. BS10 Characterising the degradome of the metalloprotease ADAMTS8: implications for pulmonary arterial hypertension. BMJ Publishing Group Ltd and British Cardiovascular Society; 2025.
  33. Lee HC, et al. The Therapeutic Potential of ADAMTS8 in Lung Adenocarcinoma without Targetable Therapy. J Pers Med. 2022;12(6).
  34. Bera T, Ghosh M, Ghosh SK. Elucidating the mycochemistry and anticancer efficacy of F5 fraction of ethanolic extract of Daldinia eschscholtzii. Scientific Reports. 2025;15(1):34953.
  35. Li F, et al. Construction and validation of a prognostic model for lung adenocarcinoma based on endoplasmic reticulum stress-related genes. Sci Rep. 2022;12(1):19857.
  36. Lin L, et al. Integrated profiling of endoplasmic reticulum stress-related DERL3 in the prognostic and immune features of lung adenocarcinoma. Front Immunol. 2022;13:906420.

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