Para investigar sistemáticamente posibles biomarcadores candidatos relacionados con las mitocondrias para LLF en el tratamiento de la DN, diseñamos un flujo de trabajo analítico de cuatro fases (Figura 1). En la Fase I, integramos datos transcriptómicos del conjunto de datos GSE142025 (conjunto de entrenamiento, riñón completo, n=36) y GSE96804 (conjunto de validación, glomérulo, n = 61) con 1.136 genes relacionados con mitocondrias de la base de datos MitoCarta 3.0 y 517 dianas predichas de 9 ingredientes activos de la base de datos TCMSP. La superposición de estos tres conjuntos de genes produjo 9 genes candidatos. En la Fase II, se aplicaron cuatro modelos de aprendizaje automático (RF, KNN, PLS y SVM) para priorizar los genes características utilizando RMSE < 0,281 como umbral. La validación entre conjuntos de datos mediante análisis ROC (AUC > 0,7 en ambos conjuntos de datos) identificó cuatro biomarcadores candidatos: CAT, FABP1, MAOB y MAOA. En la Fase III, realizamos análisis de enriquecimiento de vías KEGG mediante GSEA, análisis de infiltración inmunitaria utilizando CIBERSORT, predicción de modificaciones m6A y construimos redes lncRNA-miRNA-mRNA, redes ingrediente activo–biomarcador y redes ingrediente activo–biomarcador–vía, seguidos de acoplamiento molecular. En la Fase IV, se evaluaron los efectos farmacodinámicos de LLF y los cambios en la expresión de ARNm de los cuatro biomarcadores candidatos en un modelo de ratón db/db de DN.
Selección de genes candidatos para el tratamiento de la DN con LLF
En el conjunto de datos GSE142025, se identificaron 3.810 genes diferencialmente expresados (DEG) entre los grupos con DN y control, incluyendo 1.904 DEG regulados hacia arriba y 1.906 regulados hacia abajo (Figura 2A,B). Se predijeron 13 ingredientes activos de LLF mediante la base de datos TCMSP, a saber, beta-sitosterol, kaempferol, taxifolina, Lucidumoside D, Lucidumoside D_qt, (20S)-24-ene-3,20-diol-3-acetate, eriodictyol, siringaresinol diglucósido_qt, Lucidusculine, Olitoriside, Olitoriside_qt, luteolina y quercetina (Tabla 2). Cuatro ingredientes activos —Lucidumoside D_qt, (20S)-24-ene-3,20-diol-3-acetate, siringaresinol diglucósido_qt y Olitoriside_qt— no predijeron ningún gen diana potencial, mientras que los nueve ingredientes restantes predijeron 517 genes diana potenciales. Al superponer los 3.810 DEG, 1.136 MRG y 517 genes diana potenciales, se identificaron nueve genes candidatos: GPX1, BAX, CASP8, MAOA, MAOB, CAT, AKR1B10, ALDH2 y FABP1 (Figura 2C). Posteriormente, se construyó una red de ingredientes activos-genes candidatos (Figura 2D). Estos nueve genes candidatos se enriquecieron en 341 términos GO, incluyendo respuesta a sustancias tóxicas, proceso catabólico de compuestos hidroxílicos orgánicos y detoxificación celular (Figura 2E). Además, se asociaron con 52 vías KEGG, tales como metabolismo del triptófano, vías neurodegenerativas y metabolismo de la histidina (Figura 2F).
Selección de biomarcadores candidatos para el tratamiento de DN en LLF
La red de interacción de proteínas (PPI) reveló siete nodos y ocho enlaces, con interacciones entre MAOA, ALDH2, MAOB y AKR1B10 (Figura 3A). Los genes con valores de RMSE menores a 0,281 en cuatro modelos de aprendizaje automático se identificaron como genes característicos: CAT, MAOB, MAOA, BAX y FABP1 (Figura 3B-E). El análisis de expresión mostró que CAT, FABP1, MAOB y MAOA presentaban diferencias significativas entre los grupos con DN y el grupo control, y fueron consistentes en ambos conjuntos de datos GSE142025 y GSE96804 (Figura 3F,G). Además, sus valores de AUC en el análisis de la curva ROC superaron 0,7 en ambos conjuntos de datos, lo que indica que estos genes podrían diferenciar eficazmente las muestras de DN de las muestras control y servir como biomarcadores candidatos para el tratamiento de DN en LLF (Figura 4A-H).
Enriquecimiento significativo de biomarcadores candidatos en vías inflamatorias y relacionadas con el sistema inmune
El análisis GSEA identificó cuatro biomarcadores candidatos prominentemente enriquecidos en la vía de señalización de quimioquinas y en las interacciones citocina-receptor de citocina (Figura 5A-D). Entre estos, la vía de señalización de peroxidasa mostró una asociación significativa con CAT, MAOA y MAOB.
Correlación de los biomarcadores candidatos con células inmunitarias
Se observaron diferencias notables en la expresión de nueve tipos de células inmunitarias —células B naïve, macrófago M0, macrófago M1, macrófago M2, célula mastocítica activada, célula NK activada, célula T CD4+ de memoria en reposo, célula T CD4+ naïve y célula T CD8+— entre las muestras con DN y las muestras de control (P < 0,05) (Figura 6A,B). Se encontró una correlación positiva significativa (cor = 0,6) entre las células B naïve y las células NK activadas, mientras que se detectó una correlación negativa significativa (cor = -0,69) entre las células B naïve y las células mastocíticas activadas (Figura 6C). Todos los biomarcadores candidatos mostraron fuertes correlaciones negativas con las células T CD8+ y las células mastocíticas activadas, y correlaciones positivas con las células NK activadas y las células B naïve (Figura 6D).
Interacción de proteínas clave modificadas por m6A con biomarcadores candidatos
La modificación de metilación del ARN por m6A afecta profundamente la síntesis y el metabolismo del ARN y está implicada en la patogénesis de diversas enfermedades29. Las ubicaciones de los sitios de modificación por m6A en los biomarcadores candidatos y sus posiciones de alta confianza en las estructuras secundarias se ilustran en la Figura 7A-H. Un análisis adicional reveló que las proteínas clave modificadas por m6A que interactúan con CAT incluían AQR y RBM22, mientras que FABP1 interactuaba tanto con SF3A3 como con AQR. Se encontró que MAOA interactúa con IGF2BP3 e IGF2BP2, y MAOB con TIA1 (Tabla 3).
Predicciones de unión in silico favorables para taxifolina, beta-sitosterol y eriodictiol en el tratamiento con LLF de la DN
En miRNet, se predijo que CAT interactuaba con 24 miARNs, mientras que FABP1 se asoció con cinco miARNs. Además, MAOB y MAOA se vincularon con 29 y 26 miARNs, respectivamente. Entre estos, se identificaron 23 ARNlnc en ambas bases de datos, TarBase y Starbase. Luego se construyó una red reguladora ARNlnc-miARN-mARN, que incluyó cuatro biomarcadores candidatos, 74 miARNs y 23 ARNlnc (Figura 8A). Los ingredientes activos potenciales que actuaban sobre los biomarcadores candidatos incluyeron luteolina, beta-sitosterol, eriodictiol, kaempferol, quercetina y taxifolina (Figura 8B). Asimismo, se estableció una red ingrediente activo-biomarcador-vía metabólica basada en los ingredientes activos, los biomarcadores candidatos y las cinco vías principales identificadas en el análisis GSEA (Figura 8C). Por ejemplo, la taxifolina actuó sobre CAT en la vía del peroxisoma. Las energías de unión entre CAT y taxifolina (-8,8 kcal/mol), FABP1 y beta-sitosterol (-8,1 kcal/mol), y MAOB y eriodictiol (-9,8 kcal/mol) fueron todas inferiores a -5 kcal/mol, lo que sugiere fuertes afinidades entre estos biomarcadores candidatos y sus respectivos ingredientes activos27. Se identificó a la taxifolina, el beta-sitosterol y el eriodictiol como ingredientes activos potenciales con predicciones de unión in silico favorables en el tratamiento con LLF de la DN (Figura 8D-F). Sin embargo, se presentan como constituyentes predichos por bases de datos, no como intermediarios bioactivos confirmados de los efectos observados in vivo.
Validar biomarcadores candidatos en el modelo murino de DN
Evaluación farmacodinámica de LLF en el tratamiento de ratones con DN
Durante el período de administración, se monitorearon los niveles de glucosa en sangre y de microalbumina urinaria en los ratones (Figura 9A-D). En comparación con el grupo control, la glucosa en sangre y la microalbumina urinaria en el grupo modelo de DN aumentaron significativamente (P < 0,01); en comparación con el grupo modelo de DN, la glucosa en sangre de los ratones en el grupo de tratamiento disminuyó significativamente después de 4 semanas de administración (P < 0,01) y la microalbumina urinaria de los ratones en el grupo de tratamiento disminuyó significativamente después de 8 semanas de administración (P < 0,05). Los resultados sugieren que LLF podría ser beneficioso en el tratamiento de la DN.
Evaluación patológica del LLF en el tratamiento de ratones con DN
Tras la tinción con HE, el grupo control mostró estructuras glomerulares claras en el tejido renal. En contraste, el grupo modelo de DN presentó pirocariósis e hipercromasia nuclear glomerular, junto con infiltración de células inflamatorias alrededor de los glomérulos, en comparación con el grupo normal. El tratamiento con LLF mejoró el daño patológico en los riñones de ratones db/db (Figura 9E).
Análisis por RT-PCR de la expresión de biomarcadores candidatos en ratones con DN
Tras el establecimiento exitoso de un modelo de ratón con DN y la observación de una mejora significativa de los síntomas con el tratamiento con LLF, se utilizó además RT-qPCR para analizar los cambios en los biomarcadores candidatos. En comparación con el grupo control, el grupo con DN mostró una expresión significativamente reducida de CAT y MAOA (P < 0.05 o P < 0.001). Por el contrario, el grupo de tratamiento mostró una expresión de CAT y MAOA significativamente mayor que el grupo con DN (P < 0.05). Sin embargo, no se observaron diferencias estadísticamente significativas en la expresión de MAOB y FABP1 entre los grupos (Figura 9F-I).
Disponibilidad de los datos
Los conjuntos de datos de expresión génica analizados en este estudio están disponibles públicamente en el Gene Expression Omnibus (GEO) bajo los números de acceso GSE142025 y GSE96804. Los scripts en R utilizados para los análisis bioinformáticos, junto con los datos experimentales originales (glucosa en sangre, microalbumina urinaria y datos de RT-qPCR), se proporcionan en el Archivo Suplementario 1. Todas las demás bases de datos, software y recursos web utilizados en este estudio se enumeran en la Tabla de Materiales.

Figura 1: Flujo de trabajo del estudio. Se integraron conjuntos de datos transcriptómicos, genes relacionados con las mitocondrias y objetivos predichos de Ligustri Lucidi Fructus para identificar genes candidatos. Luego, se utilizaron cuatro algoritmos de aprendizaje automático para priorizar los genes característicos, seguidos de validación cruzada entre conjuntos de datos, caracterización funcional y validación experimental en ratones db/db. Abreviaturas: DN = nefropatía diabética; DEGs = genes diferencialmente expresados; MRGs = genes relacionados con las mitocondrias; LLF = Ligustri Lucidi Fructus; RF = bosque aleatorio; KNN = vecino más cercano k; PLS = mínimos cuadrados parciales; SVM = máquina de vectores de soporte; RMSE = error cuadrático medio; GSEA = análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes; RT-qPCR = reacción en cadena de polimerasa cuantitativa por transcripción inversa. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 2: Selección y caracterización funcional de genes candidatos para el tratamiento de la DN con LLF. (A) Gráfico de volcan mostrando los genes diferencialmente expresados entre muestras de DN y controles en GSE142025. (B) Mapa térmico de los 10 principales genes regulados hacia arriba y los 10 principales genes regulados hacia abajo, ordenados por |log2FC|. (C) Diagrama de Venn que muestra la intersección entre DEG, MRG y genes objetivo de LLF predichos. (D) Red de ingredientes activos–genes candidatos. (E) Análisis de enriquecimiento de Ontología Genética de los genes candidatos. La altura de las barras representa la significancia del enriquecimiento, y el valor z indica la dirección predicha de la regulación funcional. (F) Análisis de enriquecimiento de vías de la Enciclopedia de Kyoto de Genes y Genomas (KEGG) de los genes candidatos. Abreviaturas: DN = nefropatía diabética; LLF = Ligustri Lucidi Fructus; DEG = genes diferencialmente expresados; MRG = genes relacionados con mitocondrias; GO = Ontología Genética; KEGG = Enciclopedia de Kyoto de Genes y Genomas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3: Identificación basada en aprendizaje automático de biomarcadores candidatos. (A) Red de interacción proteína-proteína de las proteínas codificadas por los genes candidatos. (B) Distribución acumulativa inversa de los residuos para los modelos RF, KNN, PLS y SVM. (C) Diagramas de caja que muestran las distribuciones de residuos de los cuatro modelos; el punto rojo indica el error cuadrático medio. (D) Importancia basada en el RMSE de los genes candidatos en los cuatro modelos de aprendizaje automático. (E) Intersección de los genes característicos que cumplen el criterio de RMSE < 0,281 en los cuatro modelos. (F,G) Expresión de los genes característicos seleccionados en GSE142025 y GSE96804, respectivamente. Abreviaturas: RF = bosque aleatorio; KNN = vecino más cercano k; PLS = mínimos cuadrados parciales; SVM = máquina de vectores de soporte; RMSE = error cuadrático medio. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4: Curvas de característica de operación del receptor de los cuatro biomarcadores candidatos. Curvas ROC para CAT, FABP1, MAOB y MAOA en el conjunto de datos de entrenamiento (A-D) GSE142025 y el conjunto de datos de validación (E-H) GSE96804. El AUC representa el área bajo la curva de característica de operación del receptor. Abreviaturas: ROC = curva de característica de operación del receptor; AUC = área bajo la curva. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5: Análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes de biomarcadores candidatos. AEG mostrando vías KEGG significativamente enriquecidas asociadas con (A) CAT, (B) FABP1, (C) MAOA y (D) MAOB en el conjunto de datos GSE142025. Abreviaturas: AEG = análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes; KEGG = Enciclopedia de Kyoto de Genes y Genomas. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 6: Infiltración de células inmunitarias y su asociación con biomarcadores candidatos en la DN. (A) Proporciones relativas de 22 tipos de células inmunitarias estimadas mediante CIBERSORT en muestras de DN y controles. (B) Comparación de fracciones de células inmunitarias significativamente diferentes entre los grupos de DN y control. (C) Matriz de correlación entre los tipos de células inmunitarias con abundancia diferencial. (D) Correlaciones de Spearman entre la expresión de CAT, FABP1, MAOA y MAOB y los tipos de células inmunitarias con abundancia diferencial. Abreviaturas: DN = nefropatía diabética. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 7: Sitios predichos de modificación m6A y estructuras secundarias del ARN de los transcritos de biomarcadores candidatos. Sitios predichos de modificación m6A en (A) CAT, (B) FABP1, (C) MAOA y (D) MAOB. Estructuras secundarias predichas del ARN que muestran regiones asociadas a m6A con alta confianza para (E) CAT, (F) FABP1, (G) MAOA y (H) MAOB. Las regiones resaltadas en amarillo indican las regiones de secuencia predichas que contienen sitios de modificación m6A. Abreviatura: m6A = N6-metiladenosina. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 8: Redes reguladoras y acoplamiento molecular de los ingredientes activos potenciales de LLF. (A) Red reguladora predicha lncRNA–miRNA–mRNA que incluye los biomarcadores candidatos. (B) Red de ingredientes activos potenciales de LLF y biomarcadores candidatos. (C) Red de ingrediente activo–biomarcador–vía basada en los resultados del análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes (GSEA). (D-F) Conformaciones predichas de acoplamiento molecular de (D) CAT con taxifolina, (E) FABP1 con beta-sitosterol, y (F) MAOB con eriodictyol. Abreviaturas: LLF = Ligustri Lucidi Fructus; lncRNA = ARN largo no codificante; miRNA = microARN; GSEA = análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 9: Efectos del tratamiento con LLF sobre los indicadores bioquímicos, la histopatología renal y la expresión de biomarcadores candidatos en ratones db/db. (A,B) Niveles de glucosa en sangre en el momento basal y en la semana 8, respectivamente. (C,D) Niveles de microalbumina urinaria en el momento basal y en la semana 8, respectivamente. (E) Secciones representativas de riñón teñidas con hematoxilina y eosina de los grupos Control, DN y Tratamiento (aumento, ×40; barra de escala = 25 µm). (F-I) Niveles relativos de expresión de ARNm renal de Cat, Maoa, Maob y Fabp1, respectivamente, medidos mediante RT-qPCR. #P < 0,05, ##P < 0,01 y ###P < 0,001 frente al grupo Control; *P < 0,05, **P < 0,01 y ***P < 0,001 frente al grupo DN. Abreviaturas: LLF = Ligustri Lucidi Fructus; DN = nefropatía diabética; RT-qPCR = reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa por transcripción inversa. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
| cebo | secuencias |
| CAT F | TCACTGACGAGATGGCACAC |
| CAT R | ATCGAACGGCAATAGGGGTC |
| FABP1 F | CAATAGGTCTGCCCGAGGAC |
| FABP1 R | GTCATGGTCTCCAGTTCGCA |
| MAOB F | GCACTGAAACAGCCTCACAC |
| MAOB R | TCGTGCAGGGACATCCAAAG |
| MAOA F | ACTTACCCATTCCGTGGTGC |
| MAOA R | ACCACAGGGCAGATACCTCA |
| M-GAPDH F | CCTTCCGTGTTCCTACCCC |
| M-GAPDH R | GCCCAAGATGCCCTTCAGT |
Tabla 1: Secuencias de cebadores utilizadas para el análisis de transcripción reversa cuantitativa por reacción en cadena de la polimerasa (RT-qPCR) en tejidos renales de ratón. Abreviaturas: F = cebador directo; R = cebador inverso; RT-qPCR = reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa por transcripción reversa.
| ID de la molécula | Nombre de la molécula | OB (%) | DL | Número de dianas |
| MOL000358 | beta-sitosterol | 36.91 | 0.75 | 100 |
| MOL000422 | kaempferol | 41.88 | 0.24 | 103 |
| MOL004576 | taxifolin | 57.84 | 0.27 | 92 |
| MOL005146 | Lucidumoside D | 48.87 | 0.71 | 104 |
| MOL005147 | Lucidumoside D_qt | 54.41 | 0.47 | 0 |
| MOL005169 | (20S)-24-ene-3,20-diol-3-acetate | 40.23 | 0.82 | 0 |
| MOL005190 | eriodictyol | 71.79 | 0.24 | 101 |
| MOL005195 | syringaresinol diglucoside_qt | 83.12 | 0.8 | 0 |
| MOL005209 | Lucidusculine | 30.11 | 0.75 | 105 |
| MOL005211 | Olitoriside | 65.45 | 0.23 | 100 |
| MOL005212 | Olitoriside_qt | 103.23 | 0.78 | 0 |
| MOL000006 | luteolin | 36.16 | 0.25 | 102 |
| MOL000098 | quercetin | 46.43 | 0.28 | 103 |
Tabla 2: Trece ingredientes activos de Ligustri Lucidi Fructus identificados utilizando la base de datos TCMSP. Abreviaturas: OB = biodisponibilidad oral; DL = similitud con fármaco.
| ARNm | Proteína | RF | SVM |
| CAT | AQR | 0.7 | 0.98 |
| CAT | RBM22 | 0.8 | 0.97 |
| FABP1 | AQR | 0.65 | 0.94 |
| FABP1 | SF3A3 | 0.7 | 0.8 |
| MAOA | IGF2BP2 | 0.75 | 0.97 |
| MAOA | IGF2BP3 | 0.75 | 0.97 |
| MAOB | TIA1 | 0.85 | 0.89 |
Tabla 3: Interacciones predichas entre cuatro ARNm de biomarcadores mitocondriales y proteínas fijadoras de ARN relacionadas con m6A. CAT, FABP1, MAOA y MAOB denotan ARNm de biomarcadores humanos; AQR, RBM22, SF3A3, IGF2BP2, IGF2BP3 y TIA1 denotan proteínas fijadoras de ARN. Puntuaciones RF y SVM > 0,5 indican interacciones ARN–proteína predichas. Abreviaturas: RF = bosque aleatorio; SVM = máquina de vectores de soporte.
Archivo complementario 1. Secuencias de bioinformática y datos experimentales originales. Este archivo contiene los secuencias en R utilizados para el procesamiento de datos, análisis de expresión diferencial, enriquecimiento funcional, aprendizaje automático, análisis de características de operación del receptor, análisis de enriquecimiento de conjuntos de genes, análisis de correlación de Spearman y análisis de infiltración de células inmunitarias mediante CIBERSORT, junto con los datos originales de glucosa en sangre, microalbumina urinaria y experimentos de RT-qPCR. Haga clic aquí para descargar este archivo.