Resultados de la predicción de PLB y objetivos del cáncer de próstata
El CID de PubChem del PLB es 10205, con el nombre IUPAC: 5-hidroxi-2-metilnaftaleno-1,4-diona, SMILES: CC1=CC(=O)C2=C(C1=O)C=CC=C2O, InChIKey: VCMMXZQDRFWYSE-UHFFFAOYSA-N, InChI: InChI=1S/C11H8O3/c1-6-5-9(13)10-7(11(6)14)3-2-4-8(10)12/h2-5,12H,1H3, peso molecular: 188.18, fórmula molecular: C11H8O3, número CAS: 481-42-5. Tras eliminar duplicados, este estudio predijo 500 posibles dianas del PLB utilizando las bases de datos SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP y HERB (Tabla Suplementaria S1). Tras eliminar duplicados, se predijeron 1.199 posibles dianas para el cáncer de próstata utilizando las bases de datos GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD y HERB (Tabla Suplementaria S2).
Mecanismo de acción de PLB en el cáncer de próstata predicho por farmacología de redes
Se construyó un diagrama de Venn para analizar la intersección de blancos, lo que reveló 151 blancos superpuestos (Figura 1). Posteriormente, se construyó una red de interacción proteína-proteína (PPI) para estos genes intersecantes (Figura 2) y se visualizó según el grado del nodo, donde un rojo más oscuro y tamaños de nodo más grandes indican un grado mayor (Figura 3). El software Cytoscape se utilizó para analizar los genes diana principales (los 20 principales) entre los genes intersecantes, siendo TP53 el que mostró el grado más alto con 112, seguido de AKT1 con un grado de 111 (Figura 4).
Posteriormente, los genes intersecantes se cargaron en la base de datos DAVID para realizar análisis de enriquecimiento de Ontología Genética (GO) y de vías KEGG. El análisis de GO arrojó 4.156 procesos biológicos (Tabla Suplementaria S3), 292 componentes celulares (Tabla Suplementaria S4) y 562 funciones moleculares (Tabla Suplementaria S5). Los 10 términos más significativamente enriquecidos en cada categoría se representaron visualmente (Figura 5A-C). Según el análisis KEGG, 187 vías estuvieron significativamente enriquecidas (Tabla Suplementaria S6), y las 10 más relevantes se presentan en la Figura 5D. Estas incluyeron vías asociadas con cáncer de próstata, hepatitis B, proteoglicanos en el cáncer, resistencia a inhibidores de tirosina quinasa de EGFR, metabolismo lipídico y aterosclerosis, infección por citomegalovirus humano, cáncer colorrectal, resistencia endocrina, la vía AGE-RAGE en complicaciones diabéticas y la vía de señalización PI3K-Akt.
Objetivos principales de PLB en el tratamiento del cáncer de próstata
El análisis de farmacología de redes identificó 151 genes intersección entre el PLB y el cáncer de próstata. Basándonos en la red PPI, seleccionamos los 20 principales genes diana centrales potenciales con la mayor conectividad: proteína tumoral p53 (TP53), quinasa 1 de serina/treonina AKT (AKT1), transductor de señales y activador de la transcripción 3 (STAT3), receptor de estrógeno 1 (ESR1), regulador de la apoptosis BCL2 (BCL2), interleucina 6 (IL6), receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGFR), catenina beta 1 (CTNNB1), factor de necrosis tumoral (TNF), homólogo de fosfatasa y tensina (PTEN), caspasa 3 (CASP3), quinasa 3 activada por mitógenos (MAPK3), proteína de choque térmico 90 alfa, miembro de la clase A 1 (HSP90AA1), protooncogén SRC, cinasa tirosina no receptora (SRC), receptor gamma activado por proliferadores de peroxisomas (PPARG), cinasa del blanco mecanicista de la rapamicina (MTOR, proteína de choque térmico 90 alfa, miembro de la clase B 1 HSP90AB1), glucógeno sintasa quinasa 3 beta (GSK3B), ciclooxigenasa-2 (PTGS2y metaloproteasa 9 de la matriz (MMP9). TP53 exhibió la conectividad más alta, seguida de AKT1, lo que sugiere que estos podrían ser objetivos clave.
Para seleccionar los objetivos finales para las simulaciones de acoplamiento y dinámica molecular, priorizamos genes que codifican proteínas pro-oncogénicas con estructuras cristalinas disponibles y bolsillos de unión definidos, incluyendo AKT1, STAT3, ESR1, BCL2, IL6, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC, PPARG, MTOR, HSP90AB1, GSK3B, PTGS2 y MMP9. Por el contrario, los genes supresores de tumores, incluidos TP53, fueron excluidos ya que no se alinean con la estrategia terapéutica de inhibición del blanco.
Por lo tanto, se realizaron estudios adicionales de acoplamiento molecular. Los resultados mostraron que PLB interactúa con AKT1 mediante TRP80, SER205, LEU210, LEU264 y LYS268, con una energía de enlace (BE) de -7,764 kcal/mol27; PLB interactúa con STAT3 mediante GLU612, SER613, ARG609 y PRO639, con una BE de -5,149 kcal/mol28; PLB interactúa con ESR1 mediante LEU346, PHE404, ALA350, LEU387 y LEU391, con una BE de -7,165 kcal/mol29; PLB interactúa con BCL2 mediante LYS53, PHE54 e HIS50, con una BE de -5,564 kcal/mol30; PLB interactúa con IL6 mediante GLN28, LYS27 y ARG24, con una BE de -4,462 kcal/mol31; PLB interactúa con EGFR mediante LEU778, LEU707 y LEU789, con una BE de -6,255 kcal/mol32; PLB interactúa con TNF mediante TYR59, GLY121 y LEU120, con una BE de -6,570 kcal/mol33; PLB interactúa con MAPK3 mediante ALA69, VAL56, ILE48, LEU124, MET125 y LEU173, con una BE de -7,369 kcal/mol34; PLB interactúa con HSP90AA1 mediante LEU107, PHE138, TYR139 y TRP162, con una BE de -8,947 kcal/mol35; PLB interactúa con SRC mediante LEU276, TYR343, MET344, ALA296, LEU396 y VAL284, con una BE de -7,469 kcal/mol36; PLB interactúa con PPARG mediante LEU330, ARG288, ILE326, MET329 y ALA292, con una BE de -6,538 kcal/mol37; PLB interactúa con MTOR mediante ALA2073, SER2069 e HIS2024, con una BE de -4,672 kcal/mol38; PLB interactúa con HSP90AB1 mediante TYR134, PHE133, TRP157 y LEU102, con una BE de -6,928 kcal/mol39; PLB interactúa con GSK3B mediante VAL70, VAL135 y ALA83, con una BE de -6,799 kcal/mol40; PLB interactúa con PTGS2 mediante VAL315, THR561, ARG311 e ILE558, con una BE de -5,081 kcal/mol41; PLB interactúa con MMP9 mediante LEU187, ALA189, MET247, TYR248, LEU188, HIS226 y VAL223, con una BE de -7,101 kcal/mol42. Excepto para IL6 y MTOR, las energías de enlace de PLB con las demás proteínas fueron inferiores a -5 kcal/mol, lo que indica que PLB podría unirse establemente a estas proteínas (Tabla 1).
Posteriormente, se realizaron simulaciones de dinámica molecular para analizar más a fondo las interacciones de PLB con estas proteínas diana y para verificar la estabilidad del enlace. Aunque algunos compuestos obtuvieron puntuaciones altas en el acoplamiento molecular, simulaciones preliminares de dinámica molecular revelaron una rápida disociación del ligando o severas distorsiones conformacionales en varios sistemas. Por lo tanto, excluimos estos complejos inestables y conservamos únicamente aquellos que mantuvieron poses de unión consistentes tras la relajación inicial, avanzando con ellos como candidatos para simulaciones extendidas de dinámica molecular. Las dianas finales conservadas fueron AKT1 (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1), ESR1 (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S2), BCL2 (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S3), EGFR (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S4), TNF (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S5), MAPK3 (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S6), HSP90AA1 (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S7), SRC (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S8) y PPARG (Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S9). Tras 200 ns de simulación, el RMSD de las estructuras complejas de PLB con AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF, MAPK3, HSP90AA1, SRC y PPARG se estabilizó gradualmente a lo largo de la simulación (véase Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel A). Concurrentemente, métricas como el Rg (véase Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel B), la fluctuación cuadrática media (RMSF) (véase Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel C), la distancia entre la proteína y el sitio de unión del ligando (sitio de acoplamiento-ligando) (véase Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel D), el área de superficie accesible al solvente enterrada (Buried SASA) (véase Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel E) y la superposición de la conformación de unión (véase Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel F) se estabilizaron gradualmente a medida que avanzaba la simulación. Estos resultados sugieren que los complejos proteína-ligando mantuvieron estabilidad estructural durante toda la simulación. El RMSD, Rg, RMSF, la distancia proteína-ligando y el Buried SASA alcanzaron progresivamente valores estables, lo que indica un complejo compacto con fluctuaciones atómicas limitadas y ocupación sostenida del ligando dentro del bolsillo de unión. Además, el área de contacto entre la plumbagina y la proteína permaneció relativamente constante en el tiempo. Las interacciones de Van der Waals, hidrofóbicas y electrostáticas también mostraron perfiles estables a lo largo de las simulaciones, lo que respalda aún más la estabilidad general de los complejos proteína-plumbagina (véase Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel G).
Considerando la energía de solvatación y evaluando exhaustivamente el RMSD, Rg, distancia, SASA enterrada y energías de interacción, se seleccionaron las trayectorias del complejo en estado estable para calcular los términos relacionados con la energía de unión mediante el método MM-PBSA (área de superficie de Poisson-Boltzmann de la mecánica molecular). Para proporcionar medidas de confianza para los rangos de afinidad informados, todas las energías libres de unión se reportan como media ± EE calculada a partir de instantáneas extraídas a lo largo de las trayectorias de dinámica molecular equilibradas (Tabla 2). Entre estas, AKT1 mostró la energía libre de unión más negativa, seguida por ESR1, HSP90AA1, SRC y PPARG, lo que sugiere que el PLB puede unirse establemente a estas proteínas diana.
Además, este estudio analizó los residuos implicados en las interacciones entre el PLB y los blancos (detallados en la Tabla 3), encontrando que el PLB se une de manera estable a las proteínas diana principalmente mediante enlaces de hidrógeno (véase el Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel I), interacciones hidrofóbicas y fuerzas de van der Waals. Al analizar la contribución de las energías de enlace de los aminoácidos (véase el Archivo Suplementario 1—Figura Suplementaria S1-S9, panel H) y las interacciones proteína-PLB, este estudio reveló lo siguiente: para AKT1, los aminoácidos clave para la unión del PLB son TRP80 y LEU264, con las fuerzas de van der Waals desempeñando el papel principal, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas un papel secundario; para ESR1, los aminoácidos clave son LEU346 y LEU525, con las fuerzas de van der Waals como principales, las interacciones hidrofóbicas como secundarias y las interacciones electrostáticas como complementarias; para BCL2, los aminoácidos clave son TYR108 y PHE104, con las fuerzas de van der Waals desempeñando el papel principal, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas papeles secundarios; para EGFR, los aminoácidos clave son MET1002 y TYR998, con las fuerzas de van der Waals como principales, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas como secundarias; para TNF-α, los aminoácidos clave son TYR59 y HIE15, con las fuerzas de van der Waals como principales, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas como secundarias; para MAPK3, los aminoácidos clave son TYR53 y LEU173, con las fuerzas de van der Waals como principales, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas como secundarias; para HSP90AA1, los aminoácidos clave son PHE138 y LEU107, con las fuerzas de van der Waals como principales, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas como secundarias; para SRC, los aminoácidos clave son LEU276 y LEU396, con las fuerzas de van der Waals como principales, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas como secundarias; para PPARG, los aminoácidos clave son LEU330 e ILE326, con las fuerzas de van der Waals como principales, y las interacciones electrostáticas e hidrofóbicas como secundarias.
Todas las estructuras cristalinas de proteínas utilizadas en este estudio, excepto BCL2, se co-cristalizaron con inhibidores conocidos. Para validar aún más la fiabilidad de nuestro enfoque de acoplamiento molecular y el potencial de unión de PLB, definimos los bolsillos activos de unión basándonos en los sitios de unión originales de los inhibidores. Tanto PLB como los respectivos inhibidores nativos se acoplaron en los mismos bolsillos, y se calcularon y compararon sus energías libres de unión. Para cada diana, solo se consideraron para la comparación energética aquellas poses de acoplamiento del inhibidor nativo que reprodujeron de cerca la conformación de unión cristalográfica. Como se muestra en Tabla 4, las energías libres de unión por acoplamiento de PLB fueron comparables a las de los respectivos inhibidores nativos en las ocho dianas, lo que sugiere que PLB posee una afinidad de unión al bolsillo similar a la de estos compuestos activos validados. Este hallazgo indica que PLB, como molécula con un esqueleto novedoso, podría servir como una plantilla química prometedora para el desarrollo de nuevos agentes contra el cáncer de próstata que actúen sobre estos centros oncogénicos.
Valor pronóstico de los genes diana en el cáncer de próstata
Como objetivos representativos, evaluamos la importancia pronóstica de SRC y MAPK3 en el cáncer de próstata utilizando conjuntos de datos de TCGA. Para SRC, el análisis de distribución por gradiente mostró que una expresión más alta de SRC se asoció con mayor mortalidad y tiempos de supervivencia en seguimiento significativamente más cortos (Figura 6A). El análisis de supervivencia de Kaplan-Meier (Figura 6B) confirmó que el grupo de alta expresión tuvo una supervivencia general notablemente peor que el grupo de baja expresión (Log-rank P = 0.0317, HR = 9.708, IC del 95 %: 1,22–77,234). Las curvas de riesgo acumulado indicaron una mayor probabilidad de muerte en cualquier momento en la cohorte de alta expresión, identificando a SRC como un factor de riesgo para un pronóstico desfavorable. Las curvas ROC dependientes del tiempo (Figura 6C) mostraron valores de AUC de 0,99, 0,878 y 0,829 a 1, 3 y 5 años, respectivamente, todos superiores a 0,7, lo que indica un excelente rendimiento predictivo tanto para la supervivencia a corto como a largo plazo. En conjunto, estos hallazgos sugieren que una alta expresión de SRC podría servir como un marcador molecular independiente de mal pronóstico en el cáncer de próstata.
Para MAPK3, la distribución del gradiente reveló que una expresión elevada se asociaba con una mayor progresión tumoral y una supervivencia libre de progresión más corta, lo que sugiere preliminarmente a MAPK3 como un gen de riesgo potencial (Figura 7A). El análisis de supervivencia libre de progresión mediante la curva de Kaplan-Meier (Figura 7B) mostró que el grupo de alta expresión tuvo una supervivencia libre de progresión significativamente más corta que el grupo de baja expresión (Log-rank P = 0.0298, HR = 1.581, IC del 95 %: 1.046–2.391), con una mediana de supervivencia libre de progresión de solo 5,8 años en el grupo de alta expresión. Las curvas de riesgo acumulado validaron además una mayor probabilidad de progresión en cualquier momento. Sin embargo, las curvas ROC dependientes del tiempo (Figura 7C) revelaron valores de AUC de solo 0,568, 0,563 y 0,574 a 1, 3 y 5 años, todos considerablemente por debajo de 0,7, lo que indica que MAPK3 por sí solo tiene un valor predictivo independiente limitado para el riesgo de progresión del cáncer de próstata. En conjunto, aunque la alta expresión de MAPK3 se correlaciona con una peor supervivencia libre de progresión en el cáncer de próstata, su utilidad como indicador pronóstico único está limitada por una precisión predictiva modesta.
Declaración de disponibilidad de datos
Las contribuciones originales presentadas en este estudio se incluyen en el artículo o en los Materiales Suplementarios.

Figura 1: Intersección de los objetivos de la plumbagina y del cáncer de próstata. El azul representa el número de objetivos de la plumbagina, y el amarillo representa el número de objetivos del cáncer de próstata.

Figura 2: Red de interacciones proteína-proteína de los 151 objetivos comunes. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 3: Visualización de los 151 blancos principales basada en el grado del nodo en la red de interacciones proteína-proteína. Un mayor tamaño y un color más intenso de los círculos representan valores más altos de grado en la red. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 4: Valores de grado de los 20 principales objetivos centrales. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 5: Análisis de enriquecimiento de los 151 objetivos principales. (A) Los 10 términos principales en la categoría de proceso biológico del análisis GO, (B) los 10 términos principales en la categoría de componente celular del análisis GO, y (C) los 10 términos principales en la categoría de función molecular del análisis GO. (D) Las 10 vías enriquecidas de KEGG de los 151 objetivos principales. Abreviaturas: GO = Ontología Genética; KEGG = Enciclopedia de Genes y Genomas de Kioto. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 6: Análisis pronóstico de SRC en el cáncer de próstata (TCGA). (A) Distribución gradiente de la expresión de SRC según el estado de supervivencia y el tiempo de seguimiento. (B) Curvas de supervivencia global de Kaplan-Meier para grupos con expresión alta frente a baja de SRC (Log-rank P = 0.0317, HR = 9.708, IC 95%: 1.22–77.234). (C) Curvas ROC dependientes del tiempo a 1, 3 y 5 años (AUC = 0.990, 0.878 y 0.829). Abreviaturas: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = razón de riesgo; IC = intervalo de confianza; ROC = característica de operación del receptor; AUC = área bajo la curva. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figura 7: Análisis pronóstico de MAPK3 en cáncer de próstata (TCGA). (A) Distribución gradiente de la expresión de MAPK3 según el estado de progresión y el tiempo libre de progresión. (B) Curvas de supervivencia libre de progresión de Kaplan-Meier para grupos con alta y baja expresión de MAPK3 (Log-rank P = 0.0298, HR = 1.581, IC 95%: 1.046-2.391). (C) Curvas ROC dependientes del tiempo a 1, 3 y 5 años (AUC = 0.568, 0.563 y 0.574). Abreviaturas: TCGA = The Cancer Genome Atlas; HR = razón de riesgo; IC = intervalo de confianza; ROC = característica operativa del receptor; AUC = área bajo la curva. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Tabla 1: Energías de enlace y residuos que interactúan de la plumbagina en el acoplamiento molecular con moléculas diana clave. Las referencias citadas corresponden a entradas de estructuras PDB (asignaciones del sitio de unión cristalográfico) y no a estudios de validación biológica, indicándose explícitamente los IDs PDB correspondientes. Haga clic aquí para descargar esta tabla.
Tabla 2: Energías de enlace y sus componentes de los complejos plumbagina-diana en condiciones de estado estacionario (kJ/mol). Se realizó una única trayectoria de 200 ns por complejo con una única semilla aleatoria de velocidad, sin réplicas paralelas. Todas las muestras conformacionales se extrajeron de la región de meseta equilibrada que abarca de 100 a 200 ns de cada trayectoria. ΔEele representa la interacción electrostática entre la molécula pequeña y la proteína, ΔEvdw representa la interacción de van der Waals, ΔEpol es la energía de solvatación polar, que puede representar la energía potencial electrostática, y ΔEnonpol es la energía de solvatación no polar, que puede representar la interacción hidrofóbica. ΔEMMPBSA = ΔEele + ΔEvdw + ΔEpol + ΔEnonpol. La energía libre de Gibbs de enlace, ΔGbind = ΔEMMPBSA + -TΔS. Haga clic aquí para descargar esta tabla.
Tabla 3: Diagrama esquemático de los residuos que interactúan obtenidos de la simulación de dinámica molecular de la plumbagina con proteínas diana. Haga clic aquí para descargar esta tabla.
Tabla 4: DEnergías libres de unión de acoplamiento para la plumbagina y los inhibidores nativos co-cristalizados con las nueve proteínas diana. Haga clic aquí para descargar esta tabla.
Archivo Suplementario 1: Análisis mediante simulaciones de dinámica molecular de los complejos de la plumbagina con AKT1, ESR1, BCL2, EGFR, TNF-α, MAPK3, HSP90AA1, SRC y PPARG. Haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria S1: Posibles dianas de PLB predichas por las bases de datos SwissTarget, SEA, TargetNet, PharmMapper, CTD, TCMSP y HERB.Haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria S2: Objetivos potenciales del cáncer de próstata predichos por las bases de datos GeneCards, DrugBank, TCMSP, CTD y HERB.Haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria S3: Procesos biológicos de GO enriquecidos para los 151 objetivos comunes de PLB y el cáncer de próstata.Haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria S4: Componentes celulares de GO enriquecidos para los 151 objetivos comunes de PLB y el cáncer de próstata.Haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria S5: Funciones moleculares de GO enriquecidas para los 151 objetivos comunes de PLB y el cáncer de próstata.Haga clic aquí para descargar este archivo.
Tabla suplementaria S6: Vías KEGG significativamente enriquecidas para los 151 objetivos comunes de PLB y el cáncer de próstata.Haga clic aquí para descargar este archivo.