Materiales y diseño experimental
El bagazo de caña de azúcar se utilizó como fuente de residuos lignocelulósicos para la preparación de nanocelulosa. El bagazo fresco se lavaba con agua del grifo y agua desionizada, se secaba a 60 °C durante 24 horas, se cortaba en fragmentos de 1–2 cm, se molía y se pasaba por un tamiz de 40 mallas. El polvo seco se almacenaba en bolsas de polietileno selladas con gel de sílice a temperatura ambiente y se utilizaba en un plazo de 1 mes. Todos los reactivos, materiales y equipos utilizados en este estudio están listados en el archivo de Tabla de Materiales .
Salvo que se especifique lo contrario, todos los productos químicos eran de grado analítico y se usaban según la recibencia. Se utilizaron hidróxido de sodio, peróxido de hidrógeno, ácido acético, nitrato de plata, borohidruro de sodio, 4-nitrofenol, azul de metileno, nitrato de plomo, ácido clorhídrico, ácido nítrico, cloruro de sodio, cloruro de calcio, cloruro de magnesio, etanol, reactivo de folin-ciocalteu, carbonato sódico y ácido gálico para pretratamiento, carga de agroalimentación, ensayos catalíticos, adsorción, regeneración y calibración analítica. El nitrato de plata (reactivo ACS, ≥99,0%), el borohidruro de sodio (≥98,0%), el reactivo de Folin-Ciocalteu (1,9–2,1 N) y las especificaciones estándar del ácido gálico están listados en la Tabla de Materiales. Se utilizó quitosano con un grado de desacetilación del 85%–90% como biopolímero secundario. Las hojas de té verde se utilizaron para preparar el extracto reductor acuoso para la formación de nanopartículas de Ag, ya que los polifenoles del té pueden actuar como agentes reductores y estabilizadores durante la síntesis deAgNP 13. El flujo de trabajo general incluyó extracción de celulosa, preparación de nanocelulosa, fabricación de aerogeles, carga de AgNP, caracterización estructural y pruebas funcionales, como se muestra en la Figura 1. Las composiciones de muestra y los parámetros de preparación se enumeran en la Tabla 1.
El bagazo de caña de azúcar se pretrataba mediante lavado, secado, molienda, tratamiento alcalino y blanqueamiento con peróxido de hidrógeno para obtener pulpa rica en celulosa. La pulpa se convertía en nanocelulosa derivada de residuos mediante homogeneización y sonicación a alta presión, y luego se combinaba con quitosano para fabricar aerogeles de nanocelulosa/quitosano mediante congelación y liofilización. Las nanopartículas agrícolas se cargaron in situ utilizando AgNO₃ y extracto de té verde estandarizado como medio reductor. Los aerogeles resultantes fueron evaluados mediante caracterizaciones estructurales, químicas, térmicas y mecánicas multimodales, seguidas de evaluaciones antibacterianas, catalíticas, de adsorción, regeneración y liberación de Ag. Ag-WNC/CS-A-3 fue seleccionada como la formulación optimizada de aerogel multifuncional.
Preparación de pulpa rica en celulosa
El polvo de bagazo seco se trató con NaOH al 4% en peso a una proporción sólido-líquido de 1:20 g/mL. La mezcla se calentó a 80 °C durante 3 horas bajo una agitación a 500 rpm. Las fibras tratadas se filtraban y lavaban con agua desionizada hasta que el filtrado alcanzaba pH 7,0 ± 0,2, y luego se secaban a 60 °C durante 12 horas.
Las fibras tratadas con álcalis se blanquearon con un 3% de H₂O₂ en peso a pH 11,0 ± 0,2 y 80 °C durante 2 horas. El proceso de blanqueamiento se repitió dos veces. La pulpa rica en celulosa obtenida se lavó hasta un pH neutro y se almacenó en agua desionizada a 4 °C durante no más de 7 días. Se determinaron los contenidos de celulosa, hemicelulosa, lignina y ceniza mediante análisis composicional gravimétrico para confirmar la eliminación de componentes nocelulósicos 14.
El rendimiento de la pasta se calculaba como:
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Preparación de nanocelulosa derivada de residuos
La pulpa húmeda de celulosa equivalente a 5,0 g de masa seca se dispersó en 500 mL de agua desionizada y se prehomogeneizó a 10.000 rpm durante 10 minutos. La suspensión se procesó entonces mediante homogeneización a alta presión: dos pasadas a 300 bar, tres a 600 bar y cinco a 900 bar. La temperatura de salida se mantenía por debajo de 35 °C mediante un sistema de circulación de agua helada.
La suspensión homogeneizada se sonificó a 400 W durante 10 minutos en modo pulso, con 3 s encendidos y 3 s apagados. La nave se mantenía en un baño de hielo durante la sonicación. La suspensión final se diluyó hasta un 1,0% en peso y se almacenó a 4 °C. Se descartaron las suspensiones que mostraran sedimentación visible o separación de fases tras 24 horas. La preparación de nanocelulosa solo se aceptó cuando el diámetro medio de la fibra TEM estaba por debajo de 50 nm y el potencial zeta absoluto superaba los 25 mV.
El rendimiento de la nanocelulosa se calculaba como:
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Preparación y estandarización del extracto de té verde
Se añadió té verde en polvo, 5,0 g, a 100 mL de agua desionizada y se calentó a 80 °C durante 30 minutos. El extracto se enfriaba, se filtraba a través de papel filtro Whatman No. 1, se centrifugaba a aproximadamente 7.500 × g durante 10 minutos (equivalente a unas 8.000 rpm para un radio de rotor de 10,5 cm), se filtraba a través de una membrana de 0,45 μm y se almacenaba a 4 °C durante no más de 48 horas.
El contenido fenólico total se midió mediante el método de Folin-Ciocalteu. En resumen, se mezclaron 0,5 mL de extracto diluido con 2,5 mL de reactivo Folin-Ciocalteu diluido y 2,0 mL de carbonato sódico al 7,5% en wt. Tras la incubación en la oscuridad durante 30 minutos, la absorbancia se midió en 765 nm. El ácido galo se utilizaba como estándar. Solo se utilizaron lotes extractos con contenido fenólico total dentro del ±10% de la media del lote para la reducción de AgNP.
Fabricación de aerogeles de nanocelulosa/quitosano
El quitosano se disolvió en ácido acético al 1,0 vol% para preparar una solución al 1,0% en peso y se removió durante la noche. La solución se filtraba a través de una malla de nylon de 100 μm antes de su uso.
Para la preparación de WNC/CS-A, se mezclaron 80 mL de suspensión de nanocelulosa al 1,0% en peso con 20 mL de solución de quitosano al 1,0% en peso a 600 rpm. El pH se ajustó a 5,5 ± 0,2 usando 0,1 M NaOH a una tasa inferior a 0,5 mL/min. La mezcla se descartaba si se detectaba floculación o separación de fases en un plazo de 30 minutos.
Se vertió un volumen fijo de 5,0 mL de dispersión en moldes cilíndricos de polipropileno con un diámetro interior de 20 mm y una altura de 20 mm. Las muestras se congelaron a -80 °C durante 12 horas y se liofilizaron a -55 °C durante 48 horas bajo una presión de cámara inferior a 20 Pa. Se utilizó liofilización para preservar la red porosa de nanocelulosa durante la formaciónde aerogel 15. WNC-A se preparó usando el mismo procedimiento sin quitosano. El aerogel seco solo se aceptaba cuando mantenía una forma monolítica y mostraba una contracción en altura inferior al 20%.
Carga verde in situ de nanopartículas de Ag
Los monolitos secos de WNC/CS-A se sumergieron en 30 mL de solución de AgNO₃ a 1, 3 o 5 mM durante 6 horas en la oscuridad. Los aerogeles se transfirieron luego a 30 mL de extracto estandarizado de té verde y reaccionaron a 50 °C durante 4 horas en la oscuridad. Tras la reducción, las muestras se lavaron cinco veces con agua desionizada, se congelaron a -80 °C durante 6 horas y se liofilizaron a -55 °C durante 36 horas. Las muestras finales se codificaron como Ag-WNC/CS-A-1, Ag-WNC/CS-A-3 y Ag-WNC/CS-A-5. La inmovilización de Ag en aerogeles de celulosa mejora la recuperación del catalizador y reduce la pérdida de nanopartículas en comparación con los sistemas de AgNPno soportados 16.
La carga de agro se cuantificó mediante espectroscopía de emisión plasmática acoplada inductivamente (ICP-OES). Aproximadamente 20 mg de aerogel cargado de Ag se digerieron en ácido nítrico diluido a 80 °C, se diluyeron a 50 mL y se analizaron usando una curva de calibración Ag de 0,01–5,0 mg/L. La eficiencia de carga Ag se calculó como:
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Los indicadores de proceso ecológico utilizados para el rendimiento, uso de reactivos, carga agrícola, liberación agrícola y evaluación de reutilización se resumen en la Tabla 2.
Densidad, porosidad, captación de agua y estabilidad dimensional
La densidad de aerogel se calculó a partir de la masa seca y el volumen geométrico. Las muestras se secaron a 60 °C durante 6 horas, se enfriaron en un desecador y se midieron con un calibrador digital en tres posiciones.
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Se estimó la porosidad como:
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donde ρs se tomó como 1,50 g/cm 3 para sólidos a base de celulosa.
La captación de agua se medía sumergiendo aerogeles secos en agua desionizada durante 24 horas. Las muestras se secaron durante 10 segundos y se pesaron inmediatamente.
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donde Ws yW d son los pesos de los aerosoles húmedos y secos. La estabilidad dimensional se evaluó comparando altura y diámetro antes y después de la inmersión. Se analizaron al menos cinco monolitos por grupo.
Caracterización morfológica y de estructura porosa
La morfología de la nanocelulosa fue observada por TEM. Se colocó una suspensión de 0,005% en peso sobre una rejilla de cobre recubierta de carbono, teñida con ácido fosfotungstico al 1% en peso durante 60 s, secada e imagada a 80–120 kV. Se midieron al menos 100 fibras de tres suspensiones independientes usando la versión 1.54 de ImageJ.
La morfología de aerogel fue observada por el SEM. Las muestras se fracturaron en nitrógeno líquido, se montaron sobre muñones de aluminio, se recubrieron con oro por pulverización durante 60 segundos y se tomaron imágenes a 5–10 kV. Se registraron al menos cinco campos por muestra. Se realizó un mapeo EDS para determinar la distribución de Ag, C, O y N.
Se realizó un análisis de adsorción y desorción de nitrógeno a 77 K. Las muestras se desgasificaron a 60 °C durante 12 horas antes del análisis. La superficie de BET y la distribución del tamaño de los poros de Barrett-Joyner-Halenda (BJH) se calcularon porque la accesibilidad de los poros afecta directamente a la adsorción y al rendimiento catalítico en aerogeles decelulosa 17.
ANÁLISIS FTIR, XRD, XPS y TGA
Se recogieron espectros FTIR en modo ATR de 4000 cm-1 a 500 cm-1 con una resolución de 4 cm-1 con 32 escaneos por muestra. Los espectros se corrigieron según la línea base y se normalizaron a la banda de celulosa C-O-C cerca de 1050 cm-1. La FTIR se utilizó para evaluar grupos funcionales relacionados con celulosa y quitosana; La formación agrícola fue confirmada por XRD, XPS, EDS e ICP-OES.
La XRD se realizó utilizando radiación Cu K-alfa a 40 kV y 40 mA. Las muestras se escanearon de 5° a 80° a 5°/min. El índice de cristalinidad de la celulosa se calculó mediante el método Segal. La Ag metálica cristalina solo se asignaba cuando se detectaban picos de difracción cerca de 38,1°, 44,3° y 64,4°, y la formación de Ag se interpretaba junto con XPS, mapeo EDS e ICP-OES en lugar de solo a partir de la XRD.
El XPS se utilizaba para determinar la composición elemental de la superficie. Se registraron espectros de encuesta desde 0 eV hasta 1200 eV, y se recogieron espectros de alta resolución para C 1, O 1, N 1 y Ag 3d. Las energías de enlace se calibraron a C1s a 284,8 eV. El ajuste de picos se realizó usando la versión 2.3.25 de CasaXPS. Se utilizó el ajuste Ag 3d como evidencia de apoyo para especies de agropeces de superficie; como no se incluyó el análisis de parámetros de Barrino, las contribuciones relativas de las especies de Ag0 metálico y Ag oxidadas se interpretaron con cautela.
La TGA se realizó bajo nitrógeno desde 30 °C hasta 700 °C a 10 °C/min. Se usaron aproximadamente entre 5 y 8 mg de muestra seca en cada prueba. Se registraron la temperatura de inicio de degradación, la temperatura máxima de degradación y la masa residual a 700 °C.
Ensayos mecánicos
Las pruebas de compresión se realizaron utilizando una máquina universal equipada con una celda de carga de 100 N. Muestras cilíndricas de 20 mm de diámetro y 20 mm de altura se comprimieron hasta un 50% de deformación a 2 mm/min. Se calcularon esfuerzos de compresión al 50% de deformación y módulo de Young por debajo del 10%.
Se realizó compresión cíclica durante cinco ciclos de carga-descarga con un 50% de deformación. La recuperación de la forma se calculaba a partir de la altura recuperada tras cada ciclo. Se analizaron al menos cinco especímenes por grupo. Se excluyeron muestras con deslizamiento, desgarro de borde antes del 20% de deformación o defectos visibles. Se utilizaron pruebas mecánicas para evaluar la estabilidad de manejo durante la inmersión, recuperación yreutilización 18.
Ensayo antibacteriano
Se evaluó la actividad antibacteriana frente a Escherichia coli y Staphylococcus aureus. Las bacterias se cultivaron en caldo Luria-Bertani (LB) a 37 °C durante la noche y se diluyeron a aproximadamente 1 × 106 UFC/mL. La concentración se verificó mediante el recuento de placas.
Los discos de aerogel de 10 mm de diámetro y 3 mm de grosor fueron esterilizados por irradiación UV durante 30 minutos en cada lado. La esterilidad se confirmó incubando aerogeles tratados en caldo LB a 37 °C durante 24 horas.
Para ensayos de eliminación de contacto, se incubaron discos aerogel estériles en 2 mL de suspensión bacteriana a 37 °C durante 4 horas, agitando a 120 rpm. La suspensión se diluía en serie, se recubría en lagar LB y se incubaba a 37 °C durante 24 horas. La reducción bacteriana se calculó como:
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Los controles incluyeron solo PBS, disco de papel filtro estéril, WNC-A, WNC/CS-A, solución de AgNO₃ con concentración de Ag equivalente a la liberación medida de Ag-WNC/CS-A-3, y un disco antibiótico comercial.
Para los ensayos de zonas de inhibición, se colocaron discos de aerogel sobre placas de agar distribuidas con 100 μL de suspensión bacteriana. Las placas se incubaron a 37 °C durante 24 horas y se midieron los diámetros de las zonas de inhibición. Cada ensayo utilizaba tres lotes independientes de aerogel con triplicados técnicos. Se utilizaron tanto ensayos de eliminación por contacto como de zona de inhibición porque el contacto superficial y las especies Ag liberadas pueden contribuir de forma diferente a la actividadantibacteriana 19.
Reducción catalítica del 4-nitrofenol
La actividad catalítica se evaluó mediante la reducción de 4-nitrofenol a 4-aminofenol. Se mezcló una solución de 4-nitrofenoles de 0,10 mM con NaBH₄ recién preparado para obtener una concentración final de NaBH₄ de 10 mM. NaBH₄ se utilizó en menos de 30 minutos después de la preparación. La reacción estaba protegida de la luz directa.
Se añadió una muestra de aerogel de 10,0 mg ± 0,5 mg a 10 mL de solución de reacción a temperatura ambiente. A intervalos de 1 minuto, se midieron 1 mL de alícuotas mediante espectroscopía UV-Vis desde 250 nm hasta 500 nm y se devolvieron al recipiente de reacción. La absorbancia a 400 nm se utilizaba para monitorizar la conversión.
Los controles incluyeron una reacción sin aerogel, WNC-A, WNC/CS-A y un control de adsorción paralela sin NaBH4 para distinguir la reducción catalítica de la adsorción de 4-nitrofenol. El control de adsorción sin NaBH4 se trató como un blank de eliminación física; solo la disminución adicional en el sistema que contiene NaBH4 se interpretó como conversión catalítica. La constante de tasa pseudo-de primer orden se calculó como:

La conversión se calculó como:
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El ensayo de reducción de 4-nitrofenoles fue seleccionado porque es una reacción estándar trazable por UV-Vis para evaluar catalizadores de Agapoyados 20.
Reutilización catalítica
Ag-WNC/CS-A-3 se reutilizó durante cinco ciclos catalíticos. Tras cada ciclo, se retiraba el aerogel, se lavaba tres veces con agua desionizada, se sumergía en agua desionizada durante 10 minutos y se liofilizaba a −55 °C durante 12 horas. La conversión a los 15 minutos y la app de k se registraron para cada ciclo.
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Tras cinco ciclos, el aerogel utilizado fue analizado por SEM e ICP-OES para evaluar la retención estructural y la pérdida de Ag.
Adsorción azul de metileno
El azul de metileno se utilizó como tinte catiónico modelo. Se añadió aerogel seco, 20,0 mg ± 0,5 mg, a 50 mL de solución de 50 mg/L MB a pH 7,0 ± 0,2. La mezcla se agitaba a 150 rpm y a 25 ± 1 °C.
A 5, 10, 20, 30, 60, 90, 120 y 180 minutos, se recogieron 1 mL de alicotas que se filtraron a través de una membrana de 0,22 μm y se midieron a 664 nm. La concentración de MB se calculó mediante una curva de calibración de 1 a 50 mg/L con R2 ≥ 0,995.
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Los datos cinéticos se ajustaron utilizando modelos pseudo-de primer y pseudo-segundo orden. La selección del modelo consideró R2, la concordancia entre q_e calculada y experimental, y la distribución residual. MB fue seleccionado porque los aerogeles de nanocelulosa se evalúan comúnmente para la eliminación de colorantes mediante interacción electrostática, enlaces de hidrógeno y difusión de redporosa 21.
Adsorción Pb(II)
La adsorción de Pb(II) se probó utilizando solución de nitrato de plomo. Se diluyó una solución de 1000 mg/L antes de su uso. Se añadió aerogel seco, 20,0 mg ± 0,5 mg, a 50 mL de solución de 50 mg/L de Pb(II) a pH 5,5 ± 0,2. La mezcla se agitó a 150 rpm y 25 °C ± 1 °C durante 180 minutos.
Las alicuotas fueron filtradas a través de una membrana de 0,22 μm, acidificadas con ácido nítrico al 1 vol% y analizadas por ICP-OES. Los controles en blanco sin aerogel se ejecutaron al mismo pH inicial que las muestras de adsorción, y se incluyeron controles sin Pb(II) para comprobar las señales de fondo.
Para el análisis isotérmico, se analizaron concentraciones de Pb(II) de 10, 25, 50, 75, 100 y 150 mg/L durante 24 horas. Se utilizaron los modelos de Langmuir y Freundlich para el ajuste de equilibrio. Pb(II) se utilizó para evaluar la unión de grupos que contienen oxígeno y nitrógeno dentro de la red deaerogeles 22. Dado que el riesgo de especiación y precipitación de Pb(II) son sensibles al pH y al tiempo de contacto, Pb(II) se interpretó principalmente a través de datos de punto final y equilibrio/isotermia controlados por pH; Por tanto, los parámetros del modelo cinético se reportan solo para MB.
pH, iones coexistentes y efectos de la matriz de agua
El efecto del pH se probó en pH 3,0, 5,0, 7,0 y 9,0 para MB, y en pH 3,0, 4,5, 5,5 y 6,5 para Pb(II). La adsorción de Pb(II) no se probó en condiciones alcalinas para evitar precipitaciones. Se registraron el pH inicial y final, y se repitieron las pruebas de adsorción cuando la deriva del pH superaba 0,5 unidades. Se utilizaron controles en blanco con el mismo pH sin aerogel para distinguir la adsorción de aerogel de la pérdida o precipitación de Pb(II) dependiente del pH.
El efecto de los iones coexistentes se evaluó añadiendo 10 mM de NaCl, 5 mM de CaCl₂ o 5 mM de MgCl₂. También se probó una condición de iones mixtos que contenía las tres sales. Las aguas residuales simuladas contenían 10 mM de NaCl, 2 mM de CaCl₂, 2 mM de MgCl₂ y 5 mg/L de ácido húmico. El pH se ajustó a 7,0 ± 0,2 para MB y 5,5 ± 0,2 para Pb(II). Estas pruebas se incluyeron para evaluar el rendimiento de adsorción bajo matrices de agua máscomplejas 23.
Regeneración por adsorción
Ag-WNC/CS-A-3 se regeneró durante cinco ciclos de adsorción. Para MB, los aerogeles cargados se sumergieron en una solución de etanol/agua de 30 mL a 50:50 v/v durante 2 horas. Para Pb(II), los aerogeles cargados se sumergieron en 30 mL de 0,05 M HCl durante 1 hora y se lavaron a pH 6,5–7,0. Tras cada paso de regeneración, las muestras se secaron liofilizadas a -55 °C durante 12 horas.
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Se registró masa seca en aerogel antes y después de cada ciclo. Las muestras con colapso visible, fragmentación o pérdida de masa seca superior al 15% se clasificaron como estructuralmente falladas.
Liberación agrícola
La liberación de Ag se probó sumergiendo 20,0 ± 0,5 mg de aerogel cargado en Ag en 50 mL de agua desionizada, solución de NaCl al 0,9% en peso o un tampón de acetato de pH 5,5 a 25 ± 1 °C. A las 24 horas y 72 horas, se recogieron 2 mL de alicotas que se acidificaron con ácido nítrico al 1 vol% y se analizaron mediante ICP-OES. El volumen muestreado fue reemplazado por medio fresco.
La liberación de Agro se informó en μg/L y como porcentaje del total de Agro cargado:
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Este ensayo se utilizó para evaluar si el aumento de la carga de Ag causaba una lixiviación innecesaria de Ag, manteniendo al mismo tiempo un rendimiento antibacteriano y catalítico24.
Software y procesamiento de datos
Las imágenes SEM y TEM se analizaron usando la versión 1.54 de ImageJ. Se procesaron espectros FTIR, patrones XRD, curvas cinéticas UV–Vis, cinética de adsorción e isotermas usando OriginPro 2024. Los espectros XPS se instalaron usando la versión 2.3.25 de CasaXPS. El análisis estadístico y la preparación de grafos se realizaron utilizando GraphPad Prism 10.
Para el ajuste por adsorción, los modelos no se seleccionaron únicamente porR2 . También se consideró la concordancia entre la capacidad de adsorción experimental y calculada, la distribución residual y la plausibilidad física delos parámetros 25.
Control de calidad y análisis estadístico
Todos los experimentos se realizaron utilizando aerogeles de al menos tres lotes de fabricación independientes. Las pruebas físicas y mecánicas utilizaron cinco especímenes por grupo. Los ensayos antibacterianos, catalíticos, de adsorción, regeneración y de liberación de Ag utilizaron tres lotes independientes con triplicados técnicos cuando procedía.
Los lotes de aerogel solo se aceptaron cuando la variación de densidad seca dentro del mismo grupo era inferior al 15%. Se aceptaron placas antibacterianas cuando el número de colonias estaba dentro de 30–300 UFC. Se repitieron pruebas catalíticas cuando la absorbancia inicial a 400 nm varió más del 10% respecto a la media del lote. Las pruebas de adsorción se repitieron cuando la deriva del pH superaba 0,5 unidades. Las curvas de calibración ICP-OES y UV–Vis requerían R2 ≥ 0,995.
Los datos se presentan como media ± desviación estándar. La normalidad se evaluó mediante la prueba de Shapiro–Wilk. Los datos normalmente distribuidos se analizaron mediante ANOVA unidireccional seguida de la prueba post hoc de Tukey. Los datos no normales fueron analizados mediante la prueba de Kruskal-Wallis seguida por la prueba de comparación múltiple de Dunn. Se consideró estadísticamente significativo un valor p inferior a 0,05. No se eliminó ningún caso atípico salvo que existiera una razón técnica documentada.