Se describe un enfoque modificado para la extracción del primer molar mandibular en ratones y se compara con el enfoque convencional para evaluar la eficiencia y la reproducibilidad del procedimiento. El enfoque modificado mejora la consistencia del procedimiento y reduce los desafíos técnicos en el establecimiento de un modelo de curación del alvéolo dental mandibular en ratones.
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Artículo de método
Un enfoque modificado de extracción dental para mejorar la eficiencia y la consistencia procedimentales en un modelo de cicatrización del alvéolo dental mandibular murino
En este artículo
Resumen
Resumen
El modelo de curación del alvéolo dental (TSHM) es un modelo animal ampliamente utilizado para investigar los mecanismos moleculares que subyacen a la regeneración ósea. Aunque el TSHM mandibular en ratones es valioso para estudiar procesos patológicos específicos de la mandíbula, establecer este modelo sigue siendo técnicamente desafiante debido a las características anatómicas y biomecánicas de la región molar mandibular. Este protocolo describe un enfoque modificado para la extracción del primer molar mandibular en ratones y compara su desempeño con la técnica convencional para mejorar la eficiencia y la reproducibilidad del procedimiento. Bajo condiciones experimentales controladas, el enfoque modificado redujo significativamente el tiempo promedio de extracción de 29 a 10 minutos. Además, el grupo modificado presentó menos complicaciones relacionadas con la extracción, incluyendo fracturas radiculares y del hueso alveolar, lo que indica una mayor consistencia del procedimiento. El análisis mediante microtomografía computarizada (μCT) demostró además una mejor preservación de la arquitectura del alvéolo de extracción durante las primeras etapas de curación. Estos hallazgos indican que el enfoque modificado de extracción mejora la eficiencia y la reproducibilidad del procedimiento, al tiempo que reduce los desafíos técnicos asociados con la extracción dental mandibular en ratones. Este protocolo podría facilitar un establecimiento más consistente de modelos de curación del alvéolo dental mandibular en ratones, especialmente para investigadores con experiencia limitada en microcirugía.
Introducción
El modelo de curación del alvéolo dental (TSHM) es un modelo clásico para estudiar la regeneración ósea1. Este modelo crea una lesión desafiante pero subcrítica dentro del hueso alveolar, lo que permite una curación natural favorable sin intervención adicional1. Los ratones se utilizan ampliamente como organismos modelo debido a su fondo genético, similitudes con el metabolismo óseo humano, costos relativamente bajos de cría y facilidad de mantenimiento2. En las últimas décadas, los rápidos avances en la tecnología de edición génica han convertido a los ratones en indispensables para investigar los mecanismos moleculares subyacentes a la regeneración ósea3. En consecuencia, la extracción de molares en ratones transgénicos se ha utilizado ampliamente para establecer el modelo TSHM con el fin de investigar los mecanismos reguladores de la regeneración ósea4,5,6.
La mayoría de los estudios previos han establecido el modelo murino de extracción de molares superiores utilizando el maxilar4,5,6, ya que la mandíbula es mecánicamente más rígida y menos flexible que el maxilar7, lo que aumenta la dificultad técnica de la extracción dental. Además, el campo quirúrgico para la extracción de molares maxilares es relativamente más accesible, y el maxilar es más fácil de estabilizar que la mandíbula, lo que hace que el procedimiento sea técnicamente menos exigente. A pesar de estos desafíos, la morfología curva y ensanchada de la raíz apical del primer molar mandibular del ratón incrementa la retención mecánica dentro del hueso alveolar circundante8,9, complicando aún más la extracción (Figura 1). No obstante, los modelos de extracción mandibular siguen siendo indispensables para investigar procesos patológicos específicos de la mandíbula, incluyendo osteomielitis, osteonecrosis relacionada con medicamentos en la mandíbula, osointegración de implantes y regeneración ósea mediante biomateriales10,11,12. Por lo tanto, un método reproducible y confiable para la extracción de molares mandibulares en ratones es importante para estudios que requieran modelos de curación del alvéolo dental específicos de la mandíbula.
Figura 1. Comparación esquemática de la morfología dental en humanos y ratones.
(A) Ilustración esquemática de un diente humano adulto. (B) Ilustración esquemática del primer molar mandibular de un ratón adolescente. (C) Ilustración esquemática del primer molar mandibular de un ratón adulto. Los diagramas resaltan las diferencias en la morfología de las raíces y la distribución del cemento que contribuyen al mayor retención mecánica de los primeros molares mandibulares de ratones adultos dentro del hueso alveolar. El esmalte, la dentina y el cemento se indican mediante los colores correspondientes mostrados en la leyenda. Las características anatómicas se basan en descripciones publicadas8,9,15. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
Una técnica previamente desarrollada de extracción dental de nuestro grupo de investigación utiliza jeringas modificadas en elevadores dentales13. Aunque este método permite la extracción exitosa del primer molar mandibular derecho en ratones, requiere un alto nivel de precisión técnica y presenta una curva de aprendizaje pronunciada que exige una práctica extensa. Los operadores inexpertos pueden causar inadvertidamente lesiones en estructuras anatómicas adyacentes. Además, la extracción del primer molar mandibular izquierdo requiere entrenamiento adicional en "imagen especular" para alcanzar la competencia del procedimiento. Estos desafíos pueden comprometer la integridad del alvéolo postextracción, reducir la consistencia de los resultados de cicatrización entre los animales y limitar la accesibilidad del modelo para investigadores con experiencia limitada en microcirugía.
Este protocolo describe un enfoque modificado para la extracción del primer molar mandibular en ratones, con el fin de mejorar la accesibilidad y la reproducibilidad del procedimiento. El protocolo fue validado en ratones macho C57BL/6 de 8 semanas de edad para establecer un TSHM del primer molar mandibular. El enfoque modificado se comparó sistemáticamente con la técnica convencional para evaluar la eficiencia del procedimiento, el éxito de la extracción y las complicaciones relacionadas con el procedimiento. Además, se analizaron los modos comunes de fallo técnico encontrados durante la adquisición del método para ofrecer orientación práctica a los investigadores que establecen el TSHM mandibular murino.
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Protocolo
Todos los procedimientos fueron aprobados por el Comité Ético de la Escuela de Estomatología de West China, Universidad de Sichuan (WCHSIRB-D-2025-188), y se realizaron de acuerdo con las directrices institucionales de cuidado de animales.
NOTA: Utilice ratones macho C57BL/6 de 8 semanas de edad que pesen entre 22 y 29 g. Mantenga a los animales con una dieta estándar de pienso y agua disponible ad libitum en condiciones habituales de alojamiento (21 °C–24 °C, humedad del 40 %–60 % y ciclo luz-oscuridad de 12 horas). Utilice los materiales e instrumentos enumerados en la Tabla de Materiales. Utilice 24 ratones para la evaluación comparativa y la presentación de los casos fallidos. Utilice ratones adicionales para la capacitación del operador antes del experimento comparativo.
1. Preparación prequirúrgica
- Preparación del instrumento
- Prepare agujas de jeringa de 25 G para usar como elevadores (opcional). Doble la punta biselada de cada aguja aproximadamente entre 20° y 40°13.
- Prepare pinzas oftálmicas dentadas para usar como fórceps dentales. Inspeccione la punta dentada bajo aumento para confirmar que los dientes estén correctamente alineados y libres de deformaciones.
- Monte un retractor bucal utilizando una banda de goma y cuatro agujas de jeringa de 25 G. Prepare una tabla de espuma o cartón como plataforma quirúrgica, cinta adhesiva para fijar las extremidades del ratón y una lámpara frontal para iluminar el campo operatorio.
- Prepare una almohadilla térmica para la recuperación postoperatoria y precaliente a aproximadamente 38°C antes de la cirugía. Prepare bolitas de algodón para la hemostasia y una cantidad adecuada de solución salina para limpiar la cavidad oral.
- Prepare una funda para el dedo pulgar para cubrirlo y proteger al operador durante el procedimiento de extracción.
- Coloque un tejido no tejido estéril sobre la superficie quirúrgica y la almohadilla térmica para mantener un campo estéril.
- Preparación de la anestesia
- Desinfecte el abdomen del ratón utilizando una bolita de algodón empapada en solución antiséptica de povidona-yodo. Administre pentobarbital sódico al 1% (50 mg/kg) por vía intraperitoneal14. Evalúe la profundidad de la anestesia mediante la prueba de compresión del dedo del pie y administre anestesia complementaria según sea necesario.
NOTA: Si reaparece el reflejo de compresión del dedo del pie o el procedimiento se acerca a la duración anestésica esperada, interrumpa el procedimiento y administre anestesia complementaria de acuerdo con el protocolo veterinario institucional aprobado. - Aplique una pomada oftálmica veterinaria en ambos ojos inmediatamente después de la anestesia para prevenir el secado corneal.
- Desinfecte el abdomen del ratón utilizando una bolita de algodón empapada en solución antiséptica de povidona-yodo. Administre pentobarbital sódico al 1% (50 mg/kg) por vía intraperitoneal14. Evalúe la profundidad de la anestesia mediante la prueba de compresión del dedo del pie y administre anestesia complementaria según sea necesario.
- Preparación de desinfección y esterilización
- Desinfecte la plataforma quirúrgica, la almohadilla térmica, la cinta adhesiva, la funda para el dedo, y el área de trabajo circundante con etanol al 75%. Utilice hisopos estériles nuevos, tejido no tejido, bandas de goma y agujas para cada ratón. Esterilice las pinzas dentadas y la solución salina utilizando el protocolo institucional estándar de esterilización por vapor antes del uso.
ADVERTENCIA: El etanol al 75% es inflamable. Úselo en un área bien ventilada, lejos del calor, chispas, llamas abiertas y otras fuentes de ignición. Use equipo de protección personal adecuado. Deje que los instrumentos y superficies tratados con etanol sequen completamente antes de comenzar el procedimiento. - Realice la higiene de manos antes de iniciar el procedimiento. Use ropa quirúrgica limpia, gorro quirúrgico estéril, mascarilla quirúrgica y guantes estériles.
- Desinfecte la plataforma quirúrgica, la almohadilla térmica, la cinta adhesiva, la funda para el dedo, y el área de trabajo circundante con etanol al 75%. Utilice hisopos estériles nuevos, tejido no tejido, bandas de goma y agujas para cada ratón. Esterilice las pinzas dentadas y la solución salina utilizando el protocolo institucional estándar de esterilización por vapor antes del uso.
2. Proceso quirúrgico
- Fijación y limpieza del ratón
- Coloque al ratón en posición supina sobre la placa de fijación y asegure las extremidades con cinta adhesiva. Inserte dos agujas de 25 G en la tabla de espuma a la altura del plano orbito-auricular e inserte dos agujas adicionales de 25 G por debajo de la mandíbula.
- Coloque la banda de goma sobre las agujas y a través de los incisivos para mantener la boca abierta. Retraiga suavemente la lengua y colóquela en el lado opuesto al sitio de extracción para evitar la obstrucción del campo quirúrgico. Utilice el primer molar mandibular derecho como ejemplo representativo a lo largo de este protocolo.
- Elimine los restos de alimento y otros materiales extraños de la cavidad oral utilizando una pequeña bola de algodón humedecida con solución salina.
NOTA: Apriete bien la bola de algodón para eliminar el exceso de solución salina y evitar que líquido entre en la cavidad oral, lo cual podría causar asfixia.
- Eliminación de la resistencia distal y mesial (opcional)
- Use pinzas con la mano izquierda para retraer el ángulo derecho de la boca y exponer completamente el primer molar mandibular derecho y los tejidos blandos bucales y linguales circundantes.
- Sujete las pinzas con la mano derecha. Luego, sostenga una aguja de 25 G con la mano izquierda e inserte cuidadosamente la aguja en el ligamento periodontal bucal adyacente a la raíz distal para crear un espacio en el ligamento periodontal.
- Avance lentamente la aguja hacia la región periapical mientras la gira mesialmente y hacia la lengua, en dirección al molar, para aflojar la raíz del alvéolo.
- Inserte una aguja de 25 G en la furcación radicular desde el lado bucal y levántela en dirección oclusal con la mano izquierda. Inserte una segunda aguja de 25 G en el ligamento periodontal lingual adyacente a la raíz mesial con la mano derecha para crear un espacio en el ligamento periodontal, luego gire la aguja en dirección distal y bucal.
- Retire ambas agujas del campo quirúrgico tras completar el aflojamiento previo del ligamento periodontal.
NOTA: Realice el aflojamiento previo del ligamento periodontal solo cuando el diente presente movilidad mínima y resistencia marcada tras el balanceo inicial con las pinzas.
- Balanceo y extracción
- Estabilice la cabeza del ratón utilizando los dedos índice y medio de la mano izquierda. Coloque el pulgar, cubierto con una funda protectora, contra los incisivos mandibulares para dar soporte mientras sostiene las pinzas con la mano derecha.
- Sujete las puntas de las pinzas perpendicularmente al plano oclusal y paralelas al eje largo del diente. Coloque las puntas estriadas dentro de la furcación radicular para obtener una tracción estable.
NOTA: No agarre directamente la raíz del diente con las pinzas, ya que esto podría causar fractura radicular. - Agarre la corona con las pinzas y aplique movimientos suaves de balanceo bucolingual. Limite el ángulo de balanceo bucal a 30° y el ángulo de balanceo lingual a 50°. Realice un movimiento de balanceo cada 1–1,5 s.
- Mantenga la tracción a lo largo del eje largo del molar, desde el ápice hacia la corona, mientras aplica un contrasostén constante contra los incisivos mandibulares con la almohadilla del pulgar izquierdo para estabilizar la mandíbula.
NOTA: Mantenga un contrasostén continuo y estable, evitando la compresión excesiva o el desplazamiento de los incisivos y los tejidos blandos adyacentes. - Continúe los movimientos de balanceo hasta que el diente se vuelva gradualmente móvil y la superficie oclusal se eleve visiblemente por encima de los molares adyacentes. Mantenga las puntas de las pinzas paralelas al eje largo del diente durante todo el procedimiento y luego extraiga el diente una vez que se haya alcanzado movilidad suficiente.
NOTA: Antes de aplicar la fuerza final de extracción, evalúe la movilidad del diente balanceando suavemente la corona en dirección bucolingual. Proceda con la extracción solo cuando la corona pueda desplazarse con mínima resistencia y la amplitud del movimiento bucolingual alcance aproximadamente la mitad del ancho de la corona. Vuelva a evaluar inmediatamente la profundidad de la anestesia antes de completar la extracción. Administre anestesia complementaria si es necesario (Figura 2).
Figura 2. Comparación de los métodos convencional y modificado para la extracción del primer molar mandibular en ratones.
(A) Ilustración esquemática del método convencional de extracción, en el que una aguja doblada de calibre 25 se inserta en el ligamento periodontal y se utiliza como palanca para luxar el diente. (B) Ilustración esquemática del método modificado de extracción, en el que pinzas oftálmicas dentadas sujetan la corona y aplican tracción paralela al eje longitudinal del diente. (C) Imagen representativa de la punta doblada de la aguja de calibre 25 utilizada como elevador. (D) Imagen representativa de las pinzas oftálmicas dentadas utilizadas como fórceps microquirúrgicos de extracción. (E) Imagen intraoperatoria representativa que muestra el alvéolo de extracción inmediatamente después de la extracción del primer molar mandibular; los contornos discontinuos indican los alvéolos de extracción. (F) Vista bucal de un primer molar mandibular extraído con éxito. (G) Vista lingual del mismo primer molar mandibular extraído. Barras de escala = 2 mm (C,D) y 400 µm (E–G). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
3. Examen de los dientes extraídos y de los alvéolos postextracción
- Inspeccione el diente extraído para confirmar la remoción completa y la integridad estructural. Confirme que la morfología radicular se haya conservado, con una raíz mesial más larga, una raíz distal más corta y ensanchamiento apical15. Verifique que no queden fragmentos de hueso alveolar adheridos al diente extraído.
- Inspeccione el alvéolo de extracción para confirmar que esté limpio y libre de fragmentos residuales de raíz (Figura 2).
NOTA: Si se sospecha la presencia de una raíz retenida o fracturada durante la extracción, evite la manipulación repetida, ya que intentos excesivos podrían agravar los defectos del alvéolo. Inspeccione el sitio de extracción con aumento para confirmar la presencia de fragmentos residuales de raíz. Registre los casos con raíces retenidas o fracturadas como extracciones fallidas y exclúyalos de la evaluación posterior del modelo. Trate a estos animales de acuerdo con el protocolo para animales aprobado.
4. Cuidados posoperatorios
- Aplique algodón seco para lograr hemostasia. Limpie la cavidad oral utilizando una pequeña bola de algodón humedecida con solución salina, y luego reposicione la lengua.
NOTA: Humedezca la bola de algodón con el volumen mínimo de solución salina estéril necesario para humedecer su superficie sin producir líquido libre. - Administre carprofeno (5 mg/kg, por vía subcutánea) después de la cirugía para analgesia postoperatoria.
- Coloque al animal sobre una almohadilla térmica y monitórelo continuamente hasta que recupere la conciencia.
- Después de la recuperación de la anestesia, proporcione alimento estándar ablandado o una dieta en gel sobre el suelo de la jaula durante 3 días, con agua disponible ad libitum. Reanude la dieta estándar después de confirmar un comportamiento normal de alimentación.
- Monitoree la ingesta de alimento, el peso corporal, la actividad, el comportamiento de aseo, la hinchazón facial, el sangrado oral y los signos de dolor o malestar en intervalos predeterminados.
5. Capacitación de los operadores
- Asignar aleatoriamente a dos operadores, ninguno de los cuales tenga experiencia previa con modelos de regeneración de tejidos duros en ratones, a un grupo de extracción convencional o modificado. Capacitar a los operadores por separado bajo la supervisión del mismo instructor, quien debe ser competente en los enfoques de extracción convencional y modificado.
- Durante la primera semana, indicar a cada operador que practique el procedimiento de extracción asignado en cadáveres de ratón para familiarizarse con el flujo quirúrgico.
- Durante la segunda semana, supervisar la capacitación en ratones vivos para evaluar y perfeccionar la aplicación práctica de cada técnica. Monitorear cada procedimiento para garantizar una anestesia adecuada y prevenir complicaciones quirúrgicas no deseadas, incluyendo lesiones accidentales a los tejidos blandos circundantes causadas por manipulación inadecuada del instrumental o daño a las estructuras alveolares. Confirmar la competencia del operador cuando este pueda realizar de forma independiente tres extracciones exitosas consecutivas. Tras completar la capacitación supervisada, proceder a los experimentos comparativos de extracción.
6. Preparación de la muestra
- Sacrificar a los ratones mediante dislocación cervical. Diseccionar las mandíbulas de la cabeza y eliminar los tejidos blandos adheridos.
- Fijar las mandíbulas en una solución de paraformaldehído al 4% durante 48 h. Almacenar los especímenes en PBS antes del escaneo de µCT.
7. µCT y análisis
- Escanear las mandíbulas utilizando un µCT escáner. Establezca los parámetros de escaneo en 80 kV, 500 µA, 10 µm resolución del vóxel y escaneo capa por capa
- Calibre el µCT sistema utilizando un fantasma de hidroxiapatita. Escanee el fantasma y exporte las imágenes reconstruidas utilizando DataViewer.
- Analice las imágenes del fantasma utilizando CTAn. Establezca una curva de calibración correlacionando los valores medidos de atenuación TC de los insertos del fantasma con sus densidades minerales conocidas para convertir los valores de atenuación en DMO.
- Aplique parámetros idénticos de escaneo y reconstrucción a todas las muestras.
- Reconstruir todos los conjuntos de datos utilizando el flujo de trabajo de reconstrucción estandarizado en CTAn asociado con el µCT sistema. Aplique configuraciones de reconstrucción idénticas, definición de ROI y criterios de análisis cuantitativo a todas las muestras. Realice la reconstrucción tridimensional por separado utilizando Mimics Research para una visualización representativa, siguiendo la misma definición de ROI utilizada para el análisis cuantitativo en CTAn.
- Defina la región de interés (ROI) seleccionando la región apical de la raíz del primer molar mandibular extraído. Recolecte 100 cortes transversales consecutivos que se extiendan hacia la zona apical desde la unión cemento-esmalte del segundo molar adyacente.
- Delinear manualmente la ROI en cada corte a lo largo del límite del hueso alveolar recién formado que rodea el alvéolo postexodoncia. Realizar el procesamiento de imágenes subsiguiente y el análisis cuantitativo mediante CTAn con parámetros de análisis idénticos para todas las muestras.
- Realice una reconstrucción tridimensional utilizando Mimics Research. Calcule la incidencia de fractura radicular y de defectos en la pared del alvéolo como la proporción de muestras mandibulares que presentan cada condición respecto al número total de muestras mandibulares.
- Realice todos los análisis estadísticos y genere gráficos utilizando GraphPad Prism v10.1.2. Evalúe la normalidad de las variables continuas mediante la prueba de Shapiro-Wilk.
- Defina al ratón individual y su correspondiente alvéolo de extracción como la unidad experimental para todos los análisis.
- Comparar el tiempo de extracción, la densidad mineral ósea (BMD) y la relación entre el volumen óseo y el volumen total (BV/TV) entre grupos mediante una prueba t de Student no pareada de dos colas t prueba. Compare la incidencia de fractura radicular y defectos de la pared del alvéolo mediante la prueba exacta de Fisher.
- Denote la significancia estadística de la siguiente manera: *, p < 0.05; **, p < 0,01; y ***, p < 0,001. Utilice «ns» para indicar que no existe una diferencia estadísticamente significativa entre los dos grupos.
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Resultados
Las características anatómicas relevantes para la extracción del primer molar mandibular se ilustran en la Figura 1, y los enfoques convencional y modificado para la extracción se muestran esquemáticamente en la Figura 2A,B. Se presentan imágenes representativas de la aguja preparada y de las pinzas oftálmicas dentadas, de los alvéolos postextracción frescos y del primer molar mandibular extraído en la Figura 2C
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Discusión
El establecimiento exitoso del MHT requiere la eliminación completa del diente conservando al mismo tiempo la arquitectura alveolar circundante, ya que una lesión relacionada con la extracción puede comprometer la regeneración ósea posterior16. Por lo tanto, la reproducibilidad del procedimiento de extracción representa un determinante crítico de la fiabilidad del modelo17. En este estudio, un enfoque modificado para la extracción del primer molar mandibular mediante fórcep...
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Divulgaciones
Los autores declaran que no tienen conflictos de interés.
Agradecimientos
Este trabajo fue financiado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (número de beca 82571084) y el Programa de Ciencia y Tecnología de la Provincia de Sichuan (número de beca 2024JDKXJ0001).
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Materiales
| Nombre | Empresa | Número de catálogo | Comentarios |
|---|---|---|---|
| Agujas desechables de jeringa 25 G | Beyotime | FS802-30pcs | Agujas desechables de jeringa utilizadas para el retractor bucal y el aflojamiento opcional del ligamento periodontal |
| Solución de paraformaldehído al 4% | Solarbio | P1110 | Solución de paraformaldehído al 4% utilizada para la fijación de especímenes |
| Etileno al 75% | Ouse Medical Devices Store | N/A | Etileno de grado médico al 75% utilizado para la desinfección superficial |
| Ratones C57BL/6 | Charles River | 213 | Ratones macho C57BL/6 de 8 semanas de edad que pesan entre 22–29 g |
| Carprofeno | Solarbio | C5350 | Analgésico posoperatorio administrado por vía subcutánea a 5 mg/kg |
| Bolas de algodón | Ouning Medical Devices | N/A | Bolas de algodón estériles utilizadas para la limpieza bucal y la hemostasia |
| CTAn v1.18.4.0+ | SkyScan | N/A | Software utilizado para el análisis de imágenes de μTC |
| DataViewer v1.5.6.2 | SkyScan | N/A | Software utilizado para visualizar y exportar imágenes de μTC reconstruidas |
| Fundas para dedos | LeSu Office | MEKU-1/2/3B | Fundas para dedos utilizadas para proteger el pulgar durante la extracción |
| Cartón de espuma | Dongguan Lijianglong Industrial Co., Ltd. | N/A | Cartón de espuma utilizado como plataforma quirúrgica y de fijación |
| Dieta en gel | ReadyDietech | J10001 | Dieta posoperatoria proporcionada en el suelo de la jaula durante 3 días, cuando se utiliza |
| GraphPad Prism v10.1.2 | GraphPad | RRID: SCR_002798 | Software utilizado para análisis estadístico y generación de gráficos |
| Lámpara frontal | Bazhou Pengen Protective Equipment Factory | N/A | Lámpara frontal utilizada para iluminar el campo quirúrgico |
| Almohadilla térmica | Shijiazhuang Jianuan Electrical Appliances Co., Ltd. | N/A | Almohadilla térmica precalentada a aproximadamente 38 °C para la recuperación posoperatoria |
| Fantoma de hidroxiapatita | QRM | QRM-70127 | Fantoma de calibración utilizado para convertir los valores de atenuación de TC en densidad mineral ósea |
| Dispositivo de ampliación | Olympus Corporation | SZX10 | Dispositivo utilizado para inspeccionar las puntas de las pinzas dentadas y el alvéolo de extracción con aumento |
| Mascarilla | Serlun Medical Devices Specialty Store | N/A | Mascarilla quirúrgica |
| Escáner de microtomografía computarizada | Bruker SkyScan | SkyScan 1276 | Escáner de μTC utilizado a 80 kV, 500 μA y resolución de vóxel de 10 μm |
| Mimics Research v21.0 | Materialise | RRID: SCR_015802 | Software utilizado para la reconstrucción tridimensional |
| Sodio pentobarbital | Sigma-Aldrich | P3761 | Sal de sodio pentobarbital utilizada como solución anestésica al 1% |
| Solución salina tamponada con fosfato | Solarbio | P1010 | Polvo de solución salina tamponada con fosfato 0,01 M, pH 7,2–7,4 |
| Solución antiséptica de povidona-yodo | Belkon Pharmacy Flagship Store | N/A | Solución de povidona-yodo utilizada para la desinfección abdominal |
| Ligas elásticas | Foshan Puli Rubber Products Factory | N/A | Ligas elásticas utilizadas para armar el retractor bucal |
| Solución salina | Thermo Fisher | BR0053G | Comprimidos salinos utilizados para preparar la solución para la limpieza bucal |
| Dieta estándar en raciones | Jiangsu Xietong Pharmaceutical and Biotechnology Engineering Co., Ltd. | XTC01WC-001 | Dieta estándar utilizada para el alojamiento rutinario y ablandada para la alimentación posoperatoria |
| Sterilizador de vapor | Instalación institucional | N/A | Equipo utilizado para esterilizar las pinzas dentadas y la solución salina |
| Hisopos de algodón estériles | Kangbailai Medical Devices Store | N/A | Hisopos de algodón estériles de un solo uso |
| Guantes estériles | Serlun Medical Devices Specialty Store | N/A | Guantes estériles de látex |
| Tela no tejida estéril | Shandong Xinhua Infection Control Supplies Hangzhou Store | N/A | Tela no tejida estéril utilizada para cubrir la superficie quirúrgica y la almohadilla térmica |
| Casco quirúrgico estéril | Serlun Medical Devices Specialty Store | N/A | Casco quirúrgico estéril |
| Indumentaria quirúrgica | Serlun Medical Devices Specialty Store | N/A | Indumentaria quirúrgica limpia usada durante el procedimiento |
| Cinta adhesiva | Thermo Fisher | 15947 | Cinta adhesiva utilizada para fijar las extremidades del ratón |
| Pinzas oftálmicas dentadas | Beyotime | FS229 | Pinzas de oftalmología dentadas utilizadas como fórceps dentales |
| Pomada oftálmica veterinaria | Dechra Veterinary Products | 143-16 | Pomada oftálmica aplicada tras la anestesia para prevenir el secado corneal |
Referencias
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