Fuente: Laboratorio del Dr. Jimmy Franco - Merrimack College
Cristalografía de la radiografía es un método comúnmente utilizado para determinar el arr…
1. preparación del tubo de cristal y filtro
2. Añadir la muestra al tubo de cristal
3. cristal crecimiento
4. cristal selección

Figura 1. Una imagen del filtro pipeta. Un pequeño trozo de paño libre de pelusa ha sido encajado firmemente en el embotellamiento de la pipeta. Las soluciones se pasan aunque estos filtros pipeta antes de ser introducido en el tubo de cristal.

Figura 2. Una vez que la solución que contiene compuestos específicos se coloca en el tubo de cristal, anti-solvent es capas lentamente en la parte superior pasando por un nuevo filtro de pipeta.
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Se requiere un solo cristal para la determinación de su estructura. La calidad del cristal influye en gran medida en la calidad y precisión de la determinación estructural.
Un solo cristal es un sólido en el que la disposición de las moléculas se repite en las tres dimensiones. La disposición espacial de los átomos dentro del sólido cristalino se puede determinar mediante cristalografía de rayos X. En esta técnica, una muestra cristalina pura es envuelta por un haz de rayos X. El cristal difracta los rayos X en un patrón distintivo relacionado con la estructura y la composición molecular de los cristales. Si un cristal se forma demasiado rápido, las moléculas pueden estar desordenadas, las impurezas pueden incorporarse al cristal o se pueden formar dos o más cristales fusionados en lugar de un solo cristal. Por lo tanto, se necesitan métodos especializados con énfasis en el crecimiento lento para producir cristales de calidad suficiente para la cristalografía de rayos X.
Este video ilustrará las características deseadas de los cristales con calidad de rayos X, demostrará un procedimiento para cultivarlos e introducirá algunas aplicaciones de esta técnica en química.
Los electrones dispersan los rayos X emitiendo una onda esférica de rayos X cuando son golpeados. Si los átomos están en una disposición ordenada, la interferencia constructiva entre las ondas produce un patrón de difracción característico en un detector de rayos X. El cristal se gira dentro del haz para recoger patrones de difracción desde múltiples ángulos. Con suficientes patrones de difracción, se puede derivar la estructura molecular.
Los cristales con calidad de rayos X generalmente forman formas simétricas y tienen caras lisas que reflejan la luz. Cuando se observan bajo un microscopio polarizador, serán transparentes, pero la mayoría se oscurecerá cuando se giren 90 grados. Esto indica una estructura muy ordenada. Para hacer crecer estos cristales, a menudo se utiliza la difusión líquido-líquido. Para ello se emplean dos disolventes miscibles: un disolvente de baja densidad, o precipitante, en el que el compuesto a recristalizar es insoluble; y un disolvente de alta densidad en el que el compuesto es soluble. Normalmente, la relación volumétrica entre el precipitante y el disolvente es de 2:1.
El precipitante de baja densidad se coloca en capas sobre una solución concentrada del compuesto en el solvente de alta densidad. Con el tiempo, el compuesto se vuelve menos soluble a medida que el precipitante se mezcla con la solución. Una interfaz de disolvente más pequeña da como resultado una tasa de difusión más lenta, lo que produce cristales más grandes y puros. Ahora que comprende los principios del cultivo de cristales de calidad de rayos X, repasemos un procedimiento para cultivarlos por difusión líquido-líquido.
Para comenzar, obtenga el equipo necesario que se encuentra en el protocolo de texto. Adquiera un solvente para el compuesto y un precipitante menos denso.
Para preparar un filtro de pipeta, coloque un pequeño trozo de Kimwipe en la parte superior de una pipeta de vidrio y presione suavemente el papel hasta la parte inferior del cuerpo de la pipeta con una varilla o el tallo de otra pipeta, teniendo cuidado de no perforar el papel. Prepare dos filtros de pipeta. Coloque uno en el tubo de RMN. Si es necesario, asegure el conjunto con una abrazadera de laboratorio y un soporte de anillo. Disolver unos 10 mg del compuesto a recristalizar en 0,75 mL de disolvente.
Ahora, agregue con cuidado la solución de muestra en el filtro de pipeta. Coloque una pera en la parte superior y apriétela lentamente para pasar la solución al tubo de RMN para eliminar las impurezas sólidas. No permita que la bombilla se vuelva a expandir mientras está conectada, ya que la succión desalojará el papel de filtro.
A continuación, retire el filtro de pipeta usado y coloque el segundo filtro en el tubo de RMN. Pipetee aproximadamente 1,5 mL de precipitante en el tubo. Deje que el solvente pase a través del filtro por gravedad. A partir de ahora, tenga cuidado de no alterar el filtro durante cualquier manipulación. Una vez que todo el precipitante se haya filtrado en el tubo, retire el filtro y tape el tubo. Colóquelo en un gabinete u otro lugar fácil de revisar donde no se agite.
Después de al menos un día, inspeccione los tubos para ver si hay crecimiento de cristales. Si no hay cristales o los cristales son muy pequeños, deje el tubo de muestra intacto. Si los cristales son visibles, compruebe su tamaño y forma sin alterar las capas de disolvente.
Si los cristales son grandes, bien definidos y no están agrupados, inspeccione los cristales bajo un microscopio para verificar su potencial de calidad de rayos X. No retire los cristales del tubo hasta que el difractómetro esté listo para comenzar la exploración. Si se incorporan moléculas de solvente a la estructura cristalina, permitir que el cristal se seque degradará el cristal. Utilizando cristalografía de rayos X, se verificó que la estructura molecular de estos cristales de color púrpura rojizo oscuro era tetrafenilporfirina.
La cristalografía de rayos X es una herramienta analítica esencial en química y bioquímica.
Los métodos de recristalización incluyen calentamiento y enfriamiento, difusión líquido-líquido, difusión de vapor y evaporación lenta. En la evaporación lenta de un solo sistema de solvente, el compuesto se disuelve en una pequeña cantidad de solvente y se coloca en un recipiente con un pequeño orificio en la tapa. A medida que el solvente se evapora, la concentración aumenta hasta que el compuesto comienza a cristalizarse.
La funcionalidad de las proteínas suele estar relacionada con su estructura. Sin embargo, las proteínas pueden ser muy difíciles de cristalizar. Se deben desarrollar técnicas especializadas para cultivar cristales de proteínas con calidad de rayos X. Aquí, una gota de solución de proteína se mezcla con una gota de precipitante y esta mezcla se sella en una cámara con precipitante puro. A medida que el vapor del solvente se difunde fuera de la gota, la solubilidad de la proteína en la gota disminuye y la proteína se cristaliza lentamente. Otra técnica mezcla la solución proteica y el precipitante con aceite mineral. Con estas técnicas, se puede cristalizar una variedad de proteínas para su análisis.
En la difracción de polvo, cada posible orientación espacial se representa en la muestra simultáneamente. La difracción de polvo no es tan informativa sobre la estructura como la difracción de rayos X de un solo cristal debido a la pérdida de datos de estructura tridimensional. En cambio, la difracción de polvo sobresale en el análisis de mezclas de sólidos cristalinos y en la evaluación de la cristalinidad de estructuras amorfas.
Acabas de ver la introducción de JoVE al cultivo de cristales para la cristalografía de rayos X. Ahora debería estar familiarizado con las propiedades de los cristales de calidad de rayos X, un procedimiento para cultivarlos y algunas aplicaciones de esta técnica en química.
¡Gracias por mirar!
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Q1: What makes a crystal suitable for X-ray diffraction analysis?
X-ray-quality crystals form symmetric shapes with smooth, light-reflecting faces. Under a polarizing microscope, they appear transparent but turn dark when rotated 90 degrees, indicating highly ordered molecular arrangement. This ordered structure is essential because crystal quality directly influences the accuracy of structural determination in X-ray crystallography.
Q2: Why does slow crystal growth produce better results for X-ray analysis?
Rapid crystal formation causes molecular disorder, incorporates impurities, or creates fused crystals instead of single crystals. Slow growth allows molecules to arrange orderly and prevents contamination. A smaller solvent interface during liquid-liquid diffusion reduces the diffusion rate, yielding larger, purer crystals suitable for X-ray crystallography.
Q3: How does liquid-liquid diffusion work in crystal growth?
Liquid-liquid diffusion uses two miscible solvents: a low-density precipitant where the compound is insoluble, and a high-density solvent where it dissolves. The precipitant is layered onto the concentrated compound solution. As the precipitant gradually mixes with the solution, the compound becomes less soluble, causing slow, controlled crystallization that produces high-quality crystals.
Q4: What is the role of the pipette filter in the crystal growth procedure?
The pipette filter removes solid impurities from the compound solution before crystallization begins. A small piece of Kimwipe is placed in the glass pipette and pressed to the bottom. The sample solution passes through the filter by gentle bulb pressure, ensuring only pure dissolved compound enters the NMR tube for clean crystal formation.
Q5: How does X-ray crystallography determine molecular structure?
When X-rays hit a crystal with ordered atoms, electrons scatter the rays, producing constructive interference and a characteristic diffraction pattern. The crystal is rotated to collect patterns from multiple angles. With sufficient diffraction data, the three-dimensional spatial arrangement of atoms can be derived, revealing the molecule's complete structure and composition.
Q6: What alternative methods can be used to grow X-ray-quality crystals?
Besides liquid-liquid diffusion, recrystallization methods include vapor diffusion, slow evaporation, and heating-cooling cycles. In slow evaporation, the compound dissolves in solvent in a container with a small hole; as solvent evaporates, concentration increases until crystallization occurs. Protein crystallization often requires specialized techniques like purifying compounds by recrystallization under mineral oil.
Q7: Why is single-crystal X-ray diffraction preferred over powder diffraction?
Single-crystal X-ray diffraction preserves three-dimensional structural information because each crystal orientation is distinct. Powder diffraction loses this spatial data since all possible orientations exist simultaneously in the sample. While powder diffraction excels at analyzing crystalline mixtures and assessing amorphous structure crystallinity, single-crystal methods provide superior structural detail for determining molecular shape.