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Fuente: Laboratorio del Dr. B. Jill Venton - Universidad de Virginia
El objetivo de muchos análisis químicos es un análisis cuantitativo, donde se determina la cantidad de una sustancia en una muestra. Para calcular con precisión la concentración de un desconocido de una muestra, preparación de muestras cuidadosa es la clave. Cada vez que una muestra es manejada o transferida, de la muestra puede ser perdido. Sin embargo, existen estrategias para minimizar la pérdida de muestra. También existen estrategias para sobrellevar la pérdida de muestra y todavía hacer mediciones precisas de la concentración.
Para minimizar la pérdida de muestra, lo ideal es minimizar el número de medidas de manejo y transferencia de muestra. Por ejemplo, reuniendo una muestra sólida directamente en un matraz que se determinara una solución reduce un paso de la transferencia. Si es necesario trasladar de un matraz a otro y se hace una dilución, luego triple enjuague la cristalería ayuda a garantizar que la muestra se transfiere. Otras estrategias son más específicos de la muestra. Por ejemplo, las muestras que se adsorben al vidrio, como las proteínas, podrían manejarse mejor en tubos desechables de polipropileno. Los tubos no son hidrofílicos, por lo que si una pequeña cantidad de muestra debe pipetearse en agua, es mejor ya haber agregado el agua al tubo, por lo que la muestra puede pipetearse directamente en el solvente. Sería mejor concentrarse en lugar de secar completamente una muestra, debido a las pérdidas de insolubilities después de la rehidratación.
Otra fuente de pérdida de muestra es a través de manipulaciones de la muestra incompleto. Por ejemplo, si se utiliza un procedimiento de derivatización y la derivatización es incompleta, entonces el monto total de la muestra no se observa. Errores como este son errores sistemáticos y pueden ser resuelto por corregir el problema, como cambiar el procedimiento de derivatización. Otra causa de error sistemático en las mediciones es efectos de matriz. Estos pueden interferir con la medición de determinadas sustancias y realizar calibraciones en la misma matriz como la muestra puede reducir este efecto.
Análisis cuantitativo se realiza típicamente usando estándares internos o externos. Para los estándares externos, se realiza una curva de calibración midiendo diferentes concentraciones conocidas del analito de interés. Luego, la muestra se ejecuta por separado de la norma. Normas internas, el estándar está en la misma muestra como el analito de interés, lo que permite la medida a adoptarse simultáneamente. Por lo general, se agrega una especie diferente llamada estándar interno y la relación de la respuesta para esa norma interna y el analito se calcula. La idea es que la relación de la respuesta, llamada el factor de respuesta, es proporcional a su concentración. Mientras que el método debe ser capaz de distinguir entre el analito de interés y del estándar interno, las pérdidas de muestra que se producen después de que se agregó el estándar interno deben ser similares para ambas sustancias y por lo tanto el cociente de la respuesta permanece igual. Un caso especial del uso de estándares internos es el método de adiciones estándar, donde cantidades crecientes de la sustancia a analisar se agrega a la solución y la cantidad original de analito es calculado por la espalda. Estándares internos pueden utilizarse en electroquímica y cromatografía y espectroscopia.
1. manejo de muestras correcta: Lo que una solución
2. preparación de una curva de calibración estándar interno
3. preparación de una muestra Real con estándar interno para cromatografía de gases
4. ejecutar la muestra y calcular la concentración
5. resultados: Análisis de GC de cafeína con estándar interno

Figura 1. Parcela de calibración utilizando un patrón interno. Una parcela de los cocientes de concentración de área ratios vs 3 muestras estándar de cafeína (1, 0,5 y 0,2 mg/mL) con estándar interno de adenina de 0,33 mg/mL añadido a cada uno. La pendiente de la recta es 1.8, que es el factor de respuesta.

Figura 2. Cromatograma de café con estándar interno adenina. Una parcela de la respuesta del detector FID a las muestras. Los tres picos principales son adenina (IS), cafeína y ácido palmítico.
Pérdida de la muestra puede ocurrir cada vez que una muestra es manejada o transferida, lo que precisa cálculos de concentración difícil.
Para asegurar la precisión, los efectos de pérdida de muestra deben reducirse al mínimo mediante la preparación cuidadosa y limitando el número de medidas de manejo y transferencia de muestra. Sin embargo, la pérdida de muestra puede también ocurrir debido a errores sistemáticos, tales como manipulación de la muestra incompleto, efectos de matriz y variaciones en el procedimiento analítico.
Estas fuentes de pérdida pueden explicarse mediante la adición de una concentración conocida de una especie similar pero no idéntico, del compuesto de interés. Esto se llama un patrón interno. Pérdidas de muestra que se producen para el estándar interno deben ser similares para el analito, lo que permite la concentración a calcularse con precisión.
Este video ilustra el uso de una técnica de laboratorio interno estándar y apropiada para tener en cuenta para la pérdida de muestra para determinar la concentración de un desconocido.
Un patrón interno es una sustancia en una cantidad conocida a estándares, muestras y espacios en blanco durante un análisis.
En cromatografía y espectroscopia, se calcula el cociente de la señal para el estándar interno y el analito. Esta relación, llamada el factor de respuesta, es proporcional a la relación entre el analito y concentraciones estándar.
Factor de respuesta, R, puede expresarse por la siguiente ecuación, donde una representa las señales analíticas de la muestra y el estándar interno y C representa las concentraciones de la muestra y el estándar interno.
Estándar interno puede compensar errores sistemáticos y aleatorios. Por ejemplo, los errores aleatorios, tales como inconsistencias al medir una muestra de—será el mismo para el estándar interno y el analito. Por lo tanto, no cambiará la relación de sus señales.
De errores sistemáticos, tales como efectos de matriz en la solución, la relación será afectada como el efecto de la matriz es igual para el estándar y el analito.
Mientras que los estándares internos proporcionan grandes beneficios, puede ser difícil elegir uno que sea adecuado. Estándar interno debe tener una señal de que es similar pero no idéntico, al analito. También no afecta la medición del analito en forma alguna.
Por último, la concentración debe ser conocida. Esto se logra al asegurar que el estándar interno no es nativa presente en la muestra; así, la única fuente de la misma en la solución es la concentración conocida añadida.
En el siguiente experimento, se determinará la concentración de cafeína en una muestra desconocida por cromatografía de gases.
Esto se logra mediante la creación de una curva de calibración con soluciones conocidas de la cafeína, de adenina como estándar interno. La pendiente de la curva de calibración es igual al factor de respuesta.
Una vez conocido el factor de respuesta, se puede calcular la concentración de lo desconocido de su proporción del área del cromatograma medido.
Ahora que usted entiende los fundamentos de normas internas, echemos un vistazo en el procedimiento.
Para comenzar el procedimiento, pesar exactamente 100 mg de la adenina estándar, interno, en un vaso limpio.
A continuación, disolver en aproximadamente 20 mL de dimetilsulfóxido y mezclar la solución.
Una vez que la adenina se disuelva, verter la solución en un matraz aforado de 50 mL.
Enjuague el vaso y stir bar con 10 mL de DMSO y verter el enjuague al matraz. Repita este enjuague dos veces, para asegurar a la transferencia de la solución adecuada. Llene hasta la marca de calibración, dando por resultado un estándar interno con una concentración de 2 mg/mL.
A continuación, pesar 100 mg de cafeína en un vaso para preparar una solución madre. Disolver la cafeína con una pequeña cantidad de metanol. A continuación, utilice 3 enjuagues transferir esta solución a un matraz aforado de 25 mL fresco. Esta es la solución 4 mg/mL. Se usa para crear 3 niveles de cafeína.
A continuación, agregar 0,2 mL de la adenina estándar, interno, a cada matraz. Llene cada uno al final volumen con metanol. Transferencia de cada solución a un frasco de la muestra.
Ejecute cada estándar de cafeína a través de un cromatógrafo de gases. Calcular la relación de zonas de pico para la cafeína versus la adenina estándar.
En primer lugar, pesar 2 g de café en un vaso de precipitados de 100 mL y registrar el peso.
A continuación añadir 20 mL de metanol para extraer la cafeína del café. Deje que la solución a agitar durante 20 minutos.
Usando un embudo Büchner, filtrar el café. Enjuague el vaso con una pequeña cantidad de metanol y vierta este enjuague en el embudo. Repetir el enjuague dos veces.
Medir el volumen final del filtrado; debe ser aproximadamente de 35 mL.
Para preparar la muestra para análisis, añadir 1 mL del extracto de café a un frasco de la muestra. Luego, agregar 0,2 mL de estándar interno de adenina y coloque el frasco en el estante del muestreador automático del instrumento.
Realizar un análisis de cromatografía de gases de la muestra, garantizar que las condiciones son tales que la cafeína y la adenina son separados.
Después de completar el análisis, calcular el área de pico del estándar interno y el analito.
Una vez que todas las muestras han sido analizadas, puede determinarse la curva de calibración estándar para las soluciones de cafeína/adenina trazando las proporciones de las áreas de pico frente a los cocientes de las concentraciones. La pendiente de esta recta, que representa el factor de respuesta, fue de 1.8.
A continuación, se analizan los datos de la GC de la muestra de café extraído. Se calculó el cociente de las áreas de pico en 1.78. Utilizando el factor de respuesta y la concentración conocida de la adenina estándar, interno, la concentración de cafeína en la muestra desconocida se calculó en 0,33 mg/mL.
Diferentes tipos de reacciones, a través de varios discípulos científicos, utilizan estándares internos para minimizar los efectos de errores y pérdida de la muestra.
Los efectos de pérdida de muestra durante la preparación de la muestra pueden ser minimizados utilizando estándares internos, manteniendo su proporción de concentración casi constante.
En este ejemplo, lípidos bioactivos fueron extraídos de las células sometidas a lisis mediante un proceso de extracción líquido-líquido. Estándares internos de isótopos estables fueron agregados al principio de la extracción para tener en cuenta errores durante la preparación de la muestra.
Normas internas no sólo fueron fundamentales para la preparación de los lípidos bioactivos, sino también para el análisis. Los lípidos fueron separados utilizando cromatografía líquida de alto rendimiento y analizado mediante espectrometría de masas.
En espectroscopia, estándares internos pueden ayudar a corregir errores aleatorios debido a los cambios en intensidad fuente de luz. Si una lámpara u otra fuente de luz tiene potencia variable, afecta la absorción y por lo tanto, la emisión de una muestra. Sin embargo, la relación de un estándar interno al analito permanecerá constante, incluso si la fuente de luz no lo hace.
En cromatografía, una de las mayores fuentes de error es la inyección. Auto muestreadores minimizar esto, pero el error puede ser de 1 – 2% desviación estándar relativa.
En este ejemplo, estándares de vapor que contiene un patrón interno se analizaron mediante cromatografía de gases para establecer una curva de calibración. Una vez esta completa, entonces se podía medir la muestra desconocida y contabilizan las pérdidas debido a la volatilidad de la muestra.
Sólo ha visto introducción de Zeus de estándares internos. Ahora debe comprender las mejores prácticas para reducir al mínimo pérdida de muestra, normas internas y los factores de respuesta.
¡Gracias por ver!
La pérdida de muestra puede ocurrir cada vez que se manipula o transfiere una muestra, lo que dificulta los cálculos precisos de la concentración.
Para garantizar la precisión, los efectos de la pérdida de muestras deben minimizarse mediante una preparación cuidadosa de la muestra y limitando el número de pasos de manipulación y transferencia de muestras. Sin embargo, la pérdida de muestras también puede ocurrir debido a errores sistemáticos, como la manipulación incompleta de la muestra, los efectos de la matriz y las variaciones en el procedimiento analítico.
Estas fuentes de pérdida pueden explicarse añadiendo una concentración conocida de una especie similar, pero no idéntica, al compuesto de interés. A esto se le llama norma interna. Cualquier pérdida de muestra que ocurra en el patrón interno debe ser similar para el analito, lo que permite calcular la concentración con precisión.
Este video ilustrará el uso de un estándar interno y una técnica de laboratorio adecuada para tener en cuenta la pérdida de muestras al determinar la concentración de un desconocido.
Un patrón interno es una sustancia que se añade en una cantidad conocida a los estándares, muestras y blancos durante un análisis.
En cromatografía y espectroscopia, se calcula la relación entre la señal para el patrón interno y el analito. Esta relación, llamada factor de respuesta, es proporcional a la relación entre el analito y las concentraciones estándar.
El factor de respuesta, R, se puede expresar mediante la siguiente ecuación, donde A representa las señales analíticas de la muestra y el patrón interno y C representa las concentraciones de la muestra y el patrón interno.
Un estándar interno puede compensar tanto los errores sistemáticos como los aleatorios. Por ejemplo, los errores aleatorios, como las inconsistencias al medir una muestra, serán los mismos tanto para el patrón interno como para el analito. Por lo tanto, la proporción de sus señales no cambiará.
En el caso de errores sistemáticos, como los efectos de matriz en solución, la relación no se verá afectada siempre que el efecto de matriz sea igual tanto para el patrón como para el analito.
Si bien las normas internas proporcionan grandes beneficios, puede ser difícil elegir una que sea adecuada. Un patrón interno debe tener una señal que sea similar, pero no idéntica, al analito. Tampoco puede afectar la medición del analito de ninguna manera.
Por último, hay que conocer bien la concentración. Esto se logra asegurándose de que el patrón interno no esté presente de forma nativa en la muestra; Por lo tanto, la única fuente de ella en solución es la concentración conocida añadida.
En el siguiente experimento, se determinará la concentración de cafeína en una muestra desconocida mediante cromatografía de gases.
Esto se logra mediante la creación de una curva de calibración utilizando soluciones de cafeína conocidas, con adenina como patrón interno. La pendiente de la curva de calibración es igual al factor de respuesta.
Una vez que se conoce el factor de respuesta, la concentración de la incógnita se puede calcular a partir de la relación de área del cromatograma medida.
Ahora que comprende los conceptos básicos de las normas internas, echemos un vistazo al procedimiento.
Para comenzar el procedimiento, pese con precisión 100 mg del patrón interno, adenina, en un vaso de precipitados limpio.
A continuación, disuélvalo en aproximadamente 20 ml de dimetilsulfóxido y mezcle la solución.
Una vez que la adenina se haya disuelto, vierta la solución en un matraz aforado de 50 ml.
Enjuague el vaso de precipitados y la barra agitadora con 10 ml de DMSO y vierta el enjuague en el matraz. Repita este enjuague dos veces para asegurar una transferencia adecuada de la solución. Llene hasta la marca de calibración, lo que da como resultado un patrón interno con una concentración de 2 mg/mL.
A continuación, pese 100 mg de cafeína en un vaso de precipitados para preparar una solución madre. Disuelve la cafeína con una pequeña cantidad de metanol. A continuación, utilice 3 enjuagues para transferir esta solución a un matraz aforado fresco de 25 ml. Esta es la solución madre de 4 mg/mL. Úsalo para crear 3 estándares de cafeína.
A continuación, añada 0,2 mL del patrón interno, adenina, a cada matraz. Llene cada uno hasta el volumen final con metanol. Transfiera cada solución a un vial de muestra.
Pase cada patrón de cafeína a través de un cromatógrafo de gases. Calcule la proporción de áreas pico para la cafeína en comparación con el estándar de adenina.
Primero, pese 2 g de café en un vaso de precipitados de 100 ml y registre el peso.
A continuación, agregue 20 ml de metanol para extraer la cafeína del café. Deje que la solución revuelva durante 20 minutos.
Usando un embudo B?chner, filtre los posos de café. Enjuague el vaso de precipitados con una pequeña cantidad de metanol y vierta este enjuague en el embudo. Repita el enjuague dos veces.
Mida el volumen final del filtrado; debe ser de aproximadamente 35 mL.
Para preparar la muestra para el análisis, agregue 1 mL del extracto de café a un vial de muestra. A continuación, añada 0,2 ml del patrón interno de adenina y coloque el vial en la gradilla del muestreador automático del instrumento.
Realice un análisis de cromatografía de gases de la muestra, asegurándose de que las condiciones sean tales que la cafeína y la adenina estén separadas.
Después de completar el análisis, calcule el área de pico tanto para el patrón interno como para el analito.
Una vez que se han analizado todas las muestras, se puede determinar la curva de calibración estándar para las soluciones de cafeína / adenina trazando las proporciones de las áreas pico frente a las proporciones de las concentraciones. La pendiente de esta línea, que representa el factor de respuesta, fue de 1,8.
A continuación, se analizan los datos de GC de la muestra de café extraída. Se calculó que la relación entre las áreas de pico era de 1,78. Utilizando el factor de respuesta y la concentración conocida del patrón interno, adenina, la concentración de cafeína en la muestra desconocida se calculó en 0,33 mg/mL.
Muchos tipos diferentes de reacciones, a través de varios discípulos científicos, utilizan estándares internos para minimizar los efectos de los errores y la pérdida de muestras.
Los efectos de la pérdida de muestra encontrados durante la preparación de la muestra se pueden minimizar utilizando estándares internos, manteniendo su relación de concentración casi constante.
En este ejemplo, los lípidos bioactivos se extrajeron de las células lisadas mediante un proceso de extracción líquido-líquido. Se añadieron patrones internos de isótopos estables al comienzo de la extracción para tener en cuenta los errores durante la preparación de la muestra.
Los patrones internos no solo fueron críticos para la preparación de los lípidos bioactivos, sino también para el análisis. Los lípidos se separaron mediante cromatografía líquida de alta resolución y se analizaron mediante espectrometría de masas.
En espectroscopia, los patrones internos pueden ayudar a corregir errores aleatorios debidos a cambios en la intensidad de la fuente de luz. Si una lámpara u otra fuente de luz tiene potencia variable, afectará la absorción y, en consecuencia, la emisión de una muestra. Sin embargo, la relación entre un patrón interno y un analito permanecerá constante, incluso si la fuente de luz no lo hace.
En cromatografía, una de las mayores fuentes de error es la inyección. Los muestreadores automáticos ayudan a minimizar esto, pero el error aún puede ser del 1,2% de desviación estándar relativa.
En este ejemplo, los patrones de vapor que contienen un patrón interno se analizaron mediante cromatografía de gases para establecer una curva de calibración. Una vez completado, se podía medir la muestra desconocida y contabilizar las pérdidas debidas a la volatilidad de la muestra.
Acabas de ver la introducción de JoVE a los estándares internos. Ahora debe comprender las prácticas recomendadas para minimizar la pérdida de muestras, los estándares internos y los factores de respuesta.
¡Gracias por mirar!
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