30 de noviembre de 2006
La capacidad de medir la cinética de liberación de vesículas puede ayudar a dar una idea de algunos de los fundamentos de la neurotransmisión. Aquí hemos utilizado imágenes en tiempo real de las vesículas marcadas con el tinte rojo fluorescente FM 4-64 para medir la velocidad de liberación de la vesícula presináptica en cultivos neuronales del hipocampo.
Soy Jimmy Lynn. Soy estudiante de posgrado en el programa de Biología Molecular y Celular en Harvard. Actualmente trabajo en el Murphy Lab y en el laboratorio trabajamos con Neurohipocampal.
Y ahora mismo voy a mostrarle cómo realizar experimentos con FM d. Así que ahora vamos a proceder a montar la laminilla que tiene neuronas en esta cámara hecha a medida. Nuestro microscopio es un CCD invertido y asegúrese de secar completamente la parte inferior.
No voy a conectar los electrodos. No. Ahora se ha configurado la perfusión. Voy a colocarla en un extremo de la cámara.
Utilizamos arcilla para sujetar. Los líderes de HBS por experimento procederán a agregar todo eso. La fusión está preparada.
Debe colocar arcilla para mantener esto en su lugar, supongo que así, en una zona que tenga cuerpos celulares, ya que las membranas de los cuerpos celulares absorberán mucho del colorante y se verán muy intensos en la sinapsis. Tal vez en un área adyacente como aquí, en este lugar donde solo estaba la zona inmediata y hacia donde vamos. Y así, el fotoblanqueamiento inicial a partir de las primeras 10 imágenes.
Y luego aquí es donde, soy Jamil Newton. Soy estudiante de posgrado en el programa de biología molecular aquí en Harvard. Actualmente trabajo en un laboratorio de neurociencia con Vinky Murphy como mi PI.
Y lo que quiero comentarles hoy es realizar experimentos con FM. ¿Cuál es su objetivo, cuál es la meta de su experimento? Una ventaja de FM es que se trata de un colorante fluorescente que nos permite rastrear la cinética de la exocitosis.
Primero nos aseguramos de que el colorante sea incorporado en la sinapsis aplicando un estímulo de carga. Luego, tras un período de lavado, aplicamos un estímulo de retención en el que el colorante se libera de las vesículas. ¿Está trabajando con un tipo específico de neuronas?
Y así, dentro de nuestro laboratorio, utilizamos esto para neuronas del hipocampo y lo empleamos en neuronas cultivadas en lugar de en lisis. ¿Cuáles son los posibles problemas con este experimento? Algunos de los problemas comunes son los que utilizamos con la estimulación eléctrica.
A veces en el pasado, por cualquier razón, ha habido problemas para hacer funcionar la estimulación eléctrica. Y sé que otros laboratorios también utilizan solución de alto contenido de potasio. Por lo tanto, la solución de alto potasio puede ser una buena alternativa al uso real del estímulo eléctrico si existen problemas al respecto.
Además, normalmente, por cualquier motivo durante el paso de lavado, parece que no se está logrando una suficiente eliminación de la tinción inespecífica. Con frecuencia he encontrado que simplemente aumentando el caudal, es decir, en lugar de medio ml, usar un ml y medio por minuto, y aumentando el tiempo de lavado de cinco a diez minutos, se mejora notablemente el resultado. ¿Cuáles son las posibles aplicaciones de este experimento?
¿Qué es exactamente lo que desea estudiar? Bien, puede utilizarlo para probar células de control frente a células que han sido manipuladas de alguna manera. Por ejemplo, con diferentes líneas de ratones, puede observar si la cinética de liberación es diferente de alguna forma, o puede ver si al agregar un fármaco determinado este afecta realmente la citosis.
Gracias.
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Este estudio se centra en la medición de la cinética de la liberación de vesículas para mejorar la comprensión de la neurotransmisión. Mediante imágenes en tiempo real con el colorante FM 4-64, la investigación analiza las tasas de liberación de vesículas presinápticas en cultivos neuronales del hipocampo.
La medición cuantitativa de la exocitosis de vesículas sinápticas mediante etiquetado con colorantes FM proporciona información útil sobre los mecanismos de liberación de neurotransmisores, apoyando la validación temprana de objetivos en el descubrimiento de fármacos centrado en neurobiología. Este enfoque permite la comparación directa de la cinética de liberación de vesículas entre neuronas manipuladas genética o farmacológicamente y controles, aportando datos para la desviación mecanicista y una mayor confianza predictiva en el punto crítico del descubrimiento.
La medición de la exocitosis basada en colorantes FM se integra en el continuo de descubrimiento a preclínico, conectando estudios mecanicistas iniciales y validación traslacional en sistemas neuronales.