29 de septiembre de 2009
La práctica de biopsias por aspiración con aguja fina (PAAF) de los alumnos es relativamente difícil, debido a la falta de un fácil acceso, adecuados lesión. Preparación de un AV lesión fantasma para practicar el procedimiento de la PAAF y la competencia es relativamente fácil de dominar.
Para preparar una lesión simulada, corte un trozo de cartón de seis por seis pulgadas para usar como placa base. Cubra la placa base con una capa de masilla de media pulgada de espesor. Luego, corte un trozo de plátano de dos pulgadas y media de largo y presiónelo suavemente en la masilla.
El plátano sirve como núcleo de la lesión simulada. Introduzca completamente el núcleo en la masilla sin atrapar burbujas de aire. Cubra el núcleo con un trozo de film plástico y déle forma de montículo liso. Deje que el soporte de masilla cure en un lugar cálido después de que la masilla esté firme y completamente curada.
Retire el envoltorio de plástico y practique la competencia en FNA para obtener una muestra del centro del plátano y practique la preparación de extensiones. Soy el Dr. Vino, de la División de Citopatología del Departamento de Patología del Colegio de Medicina de Wisconsin. Y yo soy el Dr. George Varszegi, médico fellow de Citopatología en el mismo departamento.
Hoy demostraremos un procedimiento para preparar una lesión simulada con el fin de practicar la destreza en la realización del procedimiento de FNAV, utilizando herramientas y materiales sencillos y fácilmente disponibles. Generalmente utilizamos esta técnica para introducir a los médicos residentes de citopatología y a los residentes de anatomía patológica en el procedimiento final de biopsia por aspiración. Posteriormente, durante su formación, los residentes y médicos en formación perfeccionarán sus habilidades realizando aspiraciones finas en lesiones clínicamente palpables bajo la supervisión del personal docente.
Así que comencemos. Prepare la lesión simulada uno o dos días antes de la sesión prevista de práctica de FNAAB. Antes de comenzar, tenga listos sobre la mesa un trozo de cartón, una pistola de silicona, un plátano sin pelar y papel plástico transparente.
El primer paso para preparar una lesión simulada consiste en cortar un trozo de cartón de seis por seis pulgadas que servirá como placa base. A continuación, corte un segmento de plátano de aproximadamente dos pulgadas de largo, el cual servirá como núcleo de la lesión simulada. Una vez que el núcleo de la lesión simulada esté listo, tome una pistola de sellado y extienda una capa de aproximadamente media pulgada de espesor de masilla sobre la placa base.
Presione suavemente el núcleo de la lesión simulada en el sellador húmedo. A continuación, agregue más sellador sobre el núcleo de la lesión simulada para incrustarlo completamente. Tenga cuidado de no atrapar burbujas de aire en el sellador mientras usa guantes.
Extienda la masilla manualmente sobre el núcleo de la lesión simulada para asegurarse de que quede completamente rodeado. Ahora cubra el montículo con un trozo de film plástico de seis por seis pulgadas y modele el montículo hasta obtener una forma convexa suave. Coloque el montículo de masilla en un lugar cálido para que cure durante seis u ocho horas más que el tiempo de curado recomendado para la marca específica de masilla que esté utilizando.
La masilla se endurece cuando se expone al aire. Puede dejar el montículo a temperatura ambiente superior a 60 grados Fahrenheit o incubarlo a 37 grados Celsius para acelerar el curado. Después del curado, la masilla queda firme y puede retirar fácilmente la envoltura de plástico.
La lesión simulada de FNA ya está lista para usarla en la práctica del procedimiento de FNA. Ahora que ha preparado su lesión simulada y esta ha curado, puede utilizarla para practicar el procedimiento de PAAF. Aquí estamos utilizando el recolector de tejido con válvula funcional, pero puede usar cualquier sistema de PAAF en resumen.
El THFB consta de una aguja para perforar la muestra, un conector de aguja para recolectar el material aspirado, una jeringa para controlar la presión dentro del dispositivo y una válvula para conectar y desconectar el conector de aguja de la jeringa. Comience preparando el conjunto de PAAF con la válvula que conecta el conector de aguja a la jeringa cerrada. Ahora retire el émbolo de la jeringa para crear un vacío dentro del cilindro de la jeringa.
Luego inserte la punta de la aguja en la lesión. Abra la válvula para conectar el conector de la aguja al vacío en el cuerpo de la jeringa. El vacío aspira el material de la lesión hacia la aguja y hacia el conector de la aguja.
Mueva la aguja hacia adelante y hacia atrás en la lesión para aspirar una muestra representativa de componentes celulares. Manteniendo el vacío, muestree diferentes áreas de la lesión insertando la aguja en la lesión en distintas direcciones. Cuando termine de tomar muestras, gire la válvula para desconectar el vacío en el cuerpo de la jeringa e iguale la presión con las condiciones exteriores abriendo la válvula.
A continuación, gire la válvula para desconectarse del exterior y del cuerpo de la jeringa. Retire la aguja de la lesión con la válvula cerrada. Mantener la válvula cerrada conserva una ligera presión negativa en el extremo del conector y evita que la muestra retroceda hacia la lesión por acción capilar.
Comparable al fenómeno de pipeteo, su muestra de tejido ahora está segura en el cono de la aguja. Una vez que haya retirado la aguja del lugar de la biopsia, aspire el contenido sobre un portaobjetos para preparar una extensión directa. Una vez que haya depositado una gota del aspirado sobre el portaobjetos, puede extenderla utilizando varios métodos según la naturaleza del aspirado; normalmente extendemos la muestra entre dos portaobjetos utilizando el método mostrado aquí.
Si una muestra real se diluye con sangre, drene el exceso de sangre inclinando la laminilla antes de colocar la segunda laminilla de vidrio encima. Si el aspirado es predominantemente una suspensión sin fragmentos microscópicos, como en lesiones linfoproliferativas, puede extenderse mediante el método de costillas, en el que se utiliza el borde de una laminilla para crear una serie de extensiones similares a costillas sobre otra laminilla, o puede emplearse el método de extensión, en el que una laminilla se utiliza para crear una película sobre una segunda laminilla. Una vez preparadas las extensiones, puede procesarlas y fijarlas de diversas maneras.
Para diferentes métodos de tinción, el mejor enfoque es secar al aire todas las extensiones rápidamente, dentro de uno o dos minutos. El secado de las extensiones más gruesas y húmedas puede acelerarse moviendo las laminillas lateralmente en el aire o, preferiblemente, con un secador de pelo o un ventilador portátil de mano con batería. Al usar un ventilador, tenga cuidado de prevenir la aerosolización, especialmente en lesiones que se espera estén infectadas; una vez que las extensiones estén secas, tiñalas según sea apropiado para sus experimentos.
Aquí estamos demostrando la tinción de frotis secados al aire con tinción D rápida, que es uno de los colorantes de Romanowski para tiempos determinados. Siga las instrucciones del fabricante. Descubrimos que el secado al aire mejora notablemente la claridad de la tinción, como se muestra en este ejemplo de frotis teñidos con PAP.
El análisis de estas tinciones iniciales determinará las pruebas adicionales que podría desear realizar, como microscopía electrónica selectiva de bloque celular, cultivos de microbiología u otras. La finalización exitosa del lesión simulada permitirá la aspiración adecuada del material de la lesión, en este caso, material vegetal pastoso de plátano. Este material puede extenderse sobre portaobjetos de vidrio para practicar el extendido y la tinción.
Así que acaban de mostrarles cómo preparar una lesión simulada para practicar la competencia en FNA. Al realizar este experimento, es importante recordar que deben preparar la lesión simulada al menos 36 horas antes de la sesión de evaluación de competencia, ya que el gel de sellado requiere cierto tiempo para solidificarse. Otro punto importante es la aplicación y liberación del vacío en una secuencia adecuada para obtener una muestra óptima del material aspirado durante el procedimiento de FNAV.
Así que eso es todo. Gracias por ver este video y mucha suerte en la práctica. Y muchas gracias.
Este artículo describe la preparación de una lesión simulada para practicar biopsias por aspiración con aguja fina (BAAF), lo cual es esencial para los estudiantes. El método descrito es sencillo y utiliza materiales fácilmente disponibles.
Este método proporciona un modelo de fantasma de bajo costo y reproducible para la capacitación en biopsia por aspiración con aguja fina (BAAF), abordando una brecha crítica en el desarrollo de habilidades previas a la clínica para los residentes de anatomía patológica. Al permitir la práctica repetida de la aspiración de tejidos, la preparación de extensiones y los procedimientos de tinción, favorece la adquisición temprana de competencias en citopatología diagnóstica. El modelo mejora la preparación para la capacitación antes de la exposición a lesiones clínicas, reduce la variabilidad en el desempeño de los residentes y apoya la evaluación estandarizada de habilidades entre diferentes instituciones.
El método se integra en el flujo de trabajo de descubrimiento temprano mediante la capacitación del personal en técnicas de muestreo de lesiones antes de trabajar con modelos preclínicos de enfermedad, asegurando la obtención confiable de muestras para análisis posteriores.