4 de septiembre de 2009
El cariotipo es una técnica sencilla y útil ampliamente utilizado para la detección de alteraciones genéticas. A continuación se describe paso a paso el protocolo para la preparación de los cromosomas propagación de células madre embrionarias humanas para controlar el estado cromosómico de estas células se mantienen en cultivo.
Introducción. Hola. Somos del Instituto de Ciencias Biométricas de la Universidad Federal de Faja en Brasil. En este video prepararemos extensiones cromosómicas de células madre embrionarias humanas para detectar posibles alteraciones cromosómicas milagrosas. Aunque se ha demostrado que las células madre embrionarias humanas presentan un cariotipo estable y normal, varios estudios han reportado que, dependiendo de las condiciones de cultivo, tienden a adquirir anomalías cromosómicas, como la adición de cromosomas completos o de partes de ellos.
La caracterización de la integridad genética de HASS in vitro es crucial considerando su importancia esencial en estudios de embriogénesis y pruebas de fármacos. Además, para futuras propuestas terapéuticas, los cambios cromosómicos son una preocupación real, ya que frecuentemente se asocian con la carcinogénesis. Así que comencemos.
Trate las células con ate. En este procedimiento, lo utilizamos. La ocho a nueve tiene la línea curada en el F 12 suplementado con 20% de reemplazo de suero sin conteo y 80 a nueve gramos por mililitro de factor de crecimiento de fibroblastos. Comience retirando el frasco de cultivo del incubador y, bajo una campana de flujo laminar, agregue coit a una concentración final de 0,1 microgramo por mililitro.
La adición de Coit al medio induce mitoka, reposo y metafase. Cuando los cromosomas estén bien condensados y puedan visualizarse más fácilmente al microscopio, asegúrese de utilizar técnicas estériles para evitar contaminación. Una vez que haya agregado Coit, guarde el matraz y devuelva las células al incubador.
Después del período de incubación, las células aún no están listas para ser fijadas. No es necesario trabajar bajo condiciones estériles. Comience por aspirar el medio y, cuando termine, agregue una tripsina.
El DTA es del 0,05 % al frasco. Asegúrese de agregar suficiente triptasa para cubrir la superficie inferior de las células. Tape el frasco y agítelo suavemente para distribuir uniformemente.
La tripsina permite que las células incuben durante cinco minutos a temperatura ambiente. Después de los cinco minutos de incubación a temperatura ambiente, las células ya no deberían estar adheridas al fondo del frasco y será necesario inactivar la tripsina agregando medio de corte que contenga suero o añadiendo suero suavemente a las células. Retire cuidadosamente la tapa del frasco y agregue el medio de corte o el suero, permitiendo que el líquido fluya por el fondo del frasco sobre las células.
Pipetee la suspensión celular hacia arriba y hacia abajo varias veces para disociar completamente las células. Transfiéra las células a un tubo cónico de 15 mililitros, pero antes de hacerlo, asegúrese de que las células se hayan disociado bien y de que la suspensión no contenga ningún agregado celular visible. Una vez completada la transferencia, tape el tubo y centrifugue.
Doble la suspensión durante cinco minutos. A 800 RPM después de la centrifugación, debería haber una paleta celular en el fondo del tubo. Tenga cuidado de no perturbar la paleta celular.
Aspire el sobrenadante utilizando una pipeta P1000 hasta que queden aproximadamente 200 microlitros. Este es un volumen intermedio respecto a Resus. Suspender el precipitado en Resus.
Suspenda el paladar. Agite suavemente el tubo con los dedos varias veces. Asegúrese de que las células hayan quedado bien suspendidas comprobando que no queden grumos de células en la solución.
En este momento, la solución debería estar turbia. A continuación, debe agregar cinco mililitros de una solución de cloruro de potasio de 75 milimolar precalentada a 37 grados Celsius. La solución hipotónica debe agregarse muy lentamente por debajo del tubo mientras gira el tubo.
Después de haber agregado los primeros tres mililitros, tape firmemente el tubo y con cuidado. Homogenice la suspensión celular con una solución hipotónica girando suavemente el tubo en posición horizontal y rotándolo lentamente.
Continúe agregando lentamente los dos mililitros restantes de la misma manera que antes. La finalidad de la solución hipotónica es aumentar el volumen celular para permitir que los cromosomas se desenreden. Por lo tanto, este período de incubación es crucial para obtener buenos extendidos cromosómicos. Una vez que se hayan agregado los cinco mililitros completos, tape el tubo e incube las células en un baño de agua a treinta y siete grados Celsius durante 15 minutos.
Una vez finalizado el período de incubación de 15 minutos, retire el tubo del baño de agua. En este momento, trabaje bajo campana extractora, ya que los vapores producidos por la solución fijadora son tóxicos. Si no tiene acceso a una campana extractora, asegúrese de trabajar en un área bien ventilada.
Retire el tapón del tubo y agregue tres gotas de la solución fijadora. Esta es una relación de tres a uno de metanol y ácido acético y debe prepararse el día de su uso. Tape el tubo firmemente y gírelo suavemente en posición horizontal mientras lo rota lentamente: primero en sentido horario y luego en sentido antihorario.
Centrifugar el tubo durante cinco minutos a 800 RPM sin freno. Es muy importante que el ciclo de centrifugación se detenga lentamente para evitar la pérdida de material causada por la desintegración celular tras la centrifugación. Este estado cardíaco vive en aproximadamente 200.
Solo para suspender el paladar, agite suavemente el tubo con los dedos varias veces. Asegúrese de que las células hayan quedado bien suspendidas comprobando que no queden grumos de células. Añada lentamente, por la pared del tubo, la solución fijadora hasta completar tres mililitros, mientras gira el tubo después de haber agregado los primeros tres mililitros.
Cierre herméticamente el tubo T y homogenice cuidadosamente la suspensión celular girando suavemente el tubo en posición horizontal y rotándolo lentamente. Asegúrese de realizar al menos una rotación completa. Para maximizar este proceso de mezclado, agregue más.
Dos mililitros de la solución fijadora junto a la pared del tubo para sedimentar las células. Almacene la suspensión celular a cuatro grados Celsius durante la noche. Estas células fijadas pueden almacenarse en la solución fijadora a cuatro grados Celsius durante meses.
Lave las células al día siguiente centrifugando durante cinco minutos a 800 rpm sin freno. Deseche el sobrenadante y resuspenda en aproximadamente 200 microlitros. Suspenda el precipitado golpeando el tubo con los dedos varias veces.
Asegúrese de que las células se hayan asociado adecuadamente y de que la suspensión no contenga ningún agregado celular visible. Añada cinco mililitros de solución fijadora fresca lentamente por la pared del tubo. Tape el tubo y homogenice las células girándolo suavemente en posición horizontal mientras lo rota lentamente.
Además de proteger las células, la solución fijadora elimina los lípidos y luego las proteínas, y como resultado, facilita la extensión de los cromosomas. Centrifugue el tubo durante cinco minutos a 800 RRM sin freno. Preparación de los portaobjetos: tras el paso de centrifugación, deje una cantidad suficiente de solución para homogeneizar el paladar celular.
Esta cantidad de líquido puede depender del número de células. Agitar suavemente el tubo con los dedos varias veces. Asegurarse de que las células estén bien disociadas comprobando que no haya grumos visibles de células.
En este momento, se debe agregar el objetivo, depositando entre 20 y 30 microlitros de la suspensión celular sobre un portaobjetos limpio y seco, moviendo la pipeta paralelamente a esta superficie luminosa. A medida que la solución fijadora se evapora, la superficie luminosa se vuelve inmediatamente granulada. Exponga esta superficie hacia arriba al vapor de agua caliente durante 30 segundos para provocar la hinchazón de las células.
Analizando estas preparaciones. Después de preparar estos portaobjetos, analícelos bajo microscopio de contraste de fases utilizando los objetivos de 10 y el peludo para verificar si la densidad celular es adecuada para un análisis posterior. Este portaobjeto es un ejemplo de uno que está demasiado concentrado.
Tenga en cuenta que los núcleos celulares están demasiado cerca de las extensiones metafásicas. Si tiene un portaobjetos en el que la densidad celular es demasiado alta, entonces diluya la suspensión celular agregando más solución fijadora. Este portaobjetos muestra la densidad celular deseada.
Tenga en cuenta que las extensiones en metafase están bien dispersas y aisladas. Una vez que se ha obtenido un portaobjetos con una densidad celular óptima, no puede teñirse ni analizarse. Evite seleccionar las metafases que están cerca del núcleo, ya que los cromosomas pueden estar ocultos o bloqueados de la vista.
Busque metafases que estén redondeadas, pero asegúrese de que ningún cromosoma se haya separado de la metafase. Elija metafases redondeadas y bien aisladas. Como en la siguiente diapositiva, intente evitar informar falsos IES como ganancia de cromosomas generada por dos extensiones adicionales. Mézclelo todo, o la pérdida de cromosomas generada por cromosomas rectos.
Esperamos que este video le sea útil en sus futuros experimentos. Si tiene alguna duda, no dude en contactarnos. Disfrute y mucha suerte.
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Este artículo presenta un protocolo para preparar extensiones cromosómicas de células madre embrionarias humanas con el fin de monitorear el estado cromosómico. La cariotipificación es esencial para detectar alteraciones genéticas que puedan surgir durante el cultivo celular.
El monitoreo de la estabilidad cromosómica en células madre embrionarias humanas es fundamental para garantizar modelos preclínicos confiables y reducir la ambigüedad mecanicista en las pruebas de fármacos. El cariotipaje proporciona confianza predictiva al detectar alteraciones genéticas que podrían comprometer la fisiología celular o indicar un riesgo carcinogénico. La evaluación rutinaria apoya la toma de decisiones ajustada al riesgo en el desarrollo de terapias basadas en células madre.
El método se integra en los flujos de trabajo de biología de descubrimiento como un punto de control de calidad para líneas de hESC antes de las aplicaciones posteriores en modelado de enfermedades o cribado de compuestos.