Name: La disección de los órganos del pez cebra adultos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-03-04T16:45:00.000+00:00
Duration: 10 min 18 s
Description: Aprende la disección de órganos en pez cebra adulto para estudios de anatomía comparada y biología del desarrollo. Este protocolo detalla técnicas para extraer gónadas, corazón, hígado e intestino.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Este trabajo fue apoyado por el NIH subvención R01 HD050901 a MCM y estadounidenses beca postdoctoral Cancer Society # PF-05-041-01-DDC a TG.

<ol><li> Un pez cebra macho se diseca primero, seguido por un pez hembra. Antes de comenzar la disección, anestesiar a un pez en un 0,2% tricaína y la eutanasia que mediante la incubación en agua helada durante 15 minutos. </li><li> Comience suavemente acaricia el pescado seco en una toalla de papel y colocarlo sobre una alfombra de disección. Externamente, el pez cebra tiene una sola aleta dorsal, caudal y anal y emparejado aletas pectorales y pélvicas (Figura 1). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Peces adultos machos con aletas de la etiqueta. </li><li> Pin el pescado a la lona a través de la disección de la parte carnosa de la cola y la parte ventral de la órbita del ojo. </li><li> Cortar la piel en el vientre del pez justo por delante de la aleta anal. Cortar la piel y el músculo subyacente a lo largo del vientre de la aleta anal a la opérculo (la cubierta dura más de las branquias) (Figura 2, paso 1). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Pasos en la eliminación de la piel y el músculo de la pared del cuerpo para exponer los órganos internos. </li><li> A continuación, retire el opérculo y la aleta pectoral, incluyendo la faja pectoral (la región de espesor, del hueso en la base de la aleta) (Figura 2, paso 2). Cortar la piel y el músculo subyacente principio por encima de la ahora expuesta posteriormente enmalle a lo largo del lado de los peces y, después, a la aleta anal (Figura 2, paso 3). </li><li> Retire con cuidado la piel y el músculo subyacente desde el lado de los peces. Muchos de los órganos internos son visibles (Figura 3). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Peces adultos masculinos con la pared del cuerpo y los músculos eliminado permitiendo la visualización de los órganos internos. </li><li> Los testículos son largos, los órganos blanco, a la par que se fija a la pared dorsal del cuerpo. Quitar un testículo y colócalo en un plato de PBS. Examinar los testículos con la luz reflejada para visualizar los túbulos seminíferos (Figura 4), que contienen quistes en las diferentes fases de las células germinales en desarrollo de spermatagonia de espermátidas (Leal et al., 2009). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Disección de un testículo. Las estructuras redondeadas blancas son los túbulos seminíferos. </li><li> A continuación, retire el sistema gastrointestinal, desde la cavidad del cuerpo de los peces. El hígado puede ser identificado por su gran tamaño, la morfología lobulada, color tannish, y la vascularización extensa. La vesícula biliar, un saco verde transparente llena de líquido, y el bazo, de color rojo brillante, se encuentran dentro de las vísceras. </li><li> Separar el intestino del resto de los órganos y se extienden hacia fuera. Las regiones anterior, media y posterior del intestino se definen por la altura de los pliegues epiteliales (Wallace et al., 2005). </li><li> Coloque un pedazo de intestino en PBS y se observan los pliegues epiteliales con luz transmitida. </li><li> A continuación, examinar la vejiga natatoria. La vejiga natatoria se compone de una cámara posterior, que se conecta al esófago a través del conducto neumático y una cámara anterior, que se conecta al oído interno a través del aparato de Weber (Finney et al., 2006). </li><li> Retire y deseche la vejiga natatoria. Liberar a los peces y re-pin es la parte ventral hasta la disección del riñón, que se encuentra a lo largo de la pared dorsal del cuerpo. El riñón es una estructura transparente de color rosa asociado con la aorta dorsal y las células pigmentadas. El riñón se divide en regiones de la cabeza, cuerpo y cola (Figura 5). Diseccionar un pedazo de riñón y colocarlo en PBS. Separar el tejido del riñón para revelar los túbulos renales. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig5.jpg" alt="Figura 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 5"> Figura 5. Ubicación de la cabeza, cuerpo y cola del riñón a lo largo de la pared dorsal del cuerpo. </li><li> Diseccionar un pez hembra. Como se describió anteriormente, la eutanasia a los peces de agua fría y seque antes de sujetándola a la lona de disección. Quitar la piel de la cara de los peces como se demostró anteriormente. El ovario es una estructura bilobulada que se suspende en la cavidad del cuerpo por un mesovario vascularizado. </li><li> Extraer un lóbulo del ovario, lugar en PBS, y examinar con luz transmitida. Los ovocitos pueden ser objeto de burlas aparte utilizando agujas muy finas y por etapas (Figura 6, Selman et al., 1993). Ovocitos en estadio I es de aproximadamente 10 a 150 micras de tamaño y translúcido. Etapa II ovocitos son de 150 a 350 micras de tamaño y se define por la aparición de los gránulos corticales. Etapa III ovocitos son 350 a 750 micras de tamaño y son opacas, debido a la acumulación de yema de huevo. Ovocitos maduros etapa IV y V son translúcidos y, en general no se encuentran en los ovarios de las mujeres que recientemente han acoplado. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig6.jpg" alt="Figura 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 6"> Figura 6. Etapa en vivo I, II, III y los oocitos observados bajo unmicroscopio de disección con luz transmitida. </li><li> A continuación, analizar el corazón de los peces. El corazón se encuentra posterior y ventral de las branquias. Comience por cortar el corazón y todo el tejido circundante y colocarla en PBS. Diseccionar cuidadosamente el tejido que rodea el corazón, con cuidado de no dañar la delicada atrio. </li><li> Coloque el corazón disecado en solución de Ringer para observar el latido del corazón. Identificar el atrio, el ventrículo y bulbo arterioso (Figura 7, Hu et al., 2001). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig7.jpg" alt="Figura 7" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 7"> Figura 7. Disección del corazón adulto. </li><li> Completar la disección del cerebro mediante la eliminación de los peces. Comience por desclavar el pescado y la eliminación de la cabeza con una cuchilla de afeitar. Eliminar los tejidos blandos como sea posible de la parte ventral del cráneo con unas pinzas. Eliminar los ojos con unas tijeras pequeñas de primavera. Romper el cráneo y extraer el hueso de la parte ventral del cerebro. Ahora coloca la cabeza en un plato de PBS y quitar los huesos piel y el cráneo de la cara dorsal del cerebro. </li><li> Identificar los bulbos olfatorios, telencéfalo, habénula, techo óptico, cerebelo y la médula (Figura 8, Wullimann et al, 1996;. Schilling, 2002). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig8.jpg" alt="Figura 8" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 8"> Figura 8. Cerebro diseccionado adultos de pez cebra. Vista dorsal, anterior al inicio. </li></ol>

<ol><li>Finney, J. L., Robertson, G. N., McGee, C. A., Smith, F. M., Croll, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+Autonomic+Innervation+of+the+Swim+Bladder+in+the+Zebrafish+%28Danio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Structure and Autonomic Innervation of the Swim Bladder in the Zebrafish (Danio rerio).</a> J Comp Neurol. 495, 587-606 (2006).</li>
<li>Hu, N., Yost, H. J., Clark, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+morphology+and+blood+pressure+in+the+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Rec%22%5BJournal%5D)">Cardiac morphology and blood pressure in the adult zebrafish.</a> Anat Rec. 264, 1-12 (2001).</li>
<li>Leal, M. C., Cardoso, E. R., Nóbrega, R. H., Batlouni, S. R., Bogerd, J., França, L. R., Schulz, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+and+stereological+evaluation+of+zebrafish+%28Danio+rerio%29+spermatogenesis+with+an+emphasis+on+spermatogonial+generations%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Histological and stereological evaluation of zebrafish (Danio rerio) spermatogenesis with an emphasis on spermatogonial generations.</a> Biol Reprod. 81, 177-187 (2009).</li>
<li>Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+morphology+of+larval+and+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%3A+A+Practical+Approach+%28The+Practical+Approach+Series%29%22%5BJournal%5D)">The morphology of larval and adult zebrafish.</a> Zebrafish: A Practical Approach (The Practical Approach Series). Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. , Oxford University Press. (2002).</li>
<li>Selman, K., Wallace, R., Sarka, A., Qi, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stages+of+oocyte+development+in+the+Zebrafish%2C+Brachydanio+rerio%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Morphol%22%5BJournal%5D)">Stages of oocyte development in the Zebrafish, Brachydanio rerio.</a> J. Morphol. 218, 203-224 (1993).</li>
<li>Wallace, K. N., Akhter, S., Smith, E. M., Lorent, K., Pack, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+growth+and+differentiation+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Dev%22%5BJournal%5D)">Intestinal growth and differentiation in zebrafish.</a> Mech Dev. 122, 157-173 (2005).</li>
<li>Wullimann, M. F., Rupp, B., Reichert, H. Neuroanatomy of the zebrafish brain : a topological atlas. , Birkhäuser Verlag. (1996).</li>
</ol>

Los experimentos con animales se realizaron de acuerdo con las directrices y normas establecidas por la Universidad de Pennsylvania Cuidado de Animales institucional y el empleo.

Reactivos: 0,2% tricaína (etil-3-aminobenzoato) 200 mg polvo tricaína 97,9 ml de agua DD ~ 1 ml 1 M Tris (pH 9) Ajustar el pH a 7.0 Tampón fosfato salino (PBS) 4,0 g de NaCl 0,1 g de KCl 100 ml 0,1 M tampón PO 4, pH 7,3 150 ml dH 2 O Solución Ringer 6,7 g de NaCl 0,2 g KCl 0,2 g de CaCl2 1,2 g de Hepes 1 LH 2 O Ajustar el pH a 7.2 Equipos: Plato de disección con estera Microscopía electrónica de Ciencias Catálogo # 70540 Vannas primavera tijera Herramientas de Bellas Ciencia Catálogo # 91500-09

la disección de los órganos del pez cebra adultos

Dissection of Organs from the Adult Zebrafish

En los últimos 20 años, el pez cebra se ha convertido en un organismo modelo de gran alcance para la comprensión del desarrollo de vertebrados y la enfermedad. Aunque el análisis experimental del embrión y la larva es muy amplia y la morfología ha sido bien documentada, las descripciones de la anatomía de adultos de pez cebra y los estudios de desarrollo de las estructuras y órganos adultos, junto con técnicas para trabajar con adultos que carecen. Los órganos de la larva de experimentar cambios significativos en su estructura general, la morfología y localización anatómica en la larva de la transición para adultos. Externamente, la larva transparente desarrolla su patrón característico de rayas pigmento y adultos emparejados aletas pélvicas, mientras que internamente, los órganos de someterse a un crecimiento masivo y remodelación. Además, la gónada bipotenciales primordio desarrolla en cualquiera de los testículos o los ovarios. Este protocolo se identifican muchos de los órganos del adulto y muestra los métodos para la disección del cerebro, las gónadas, el sistema gastrointestinal, el corazón y los riñones de los adultos de pez cebra. Los órganos diseccionados se pueden utilizar para la hibridación in situ, inmunohistoquímica, la histología, la extracción de ARN, el análisis de proteínas, y otras técnicas moleculares. Este protocolo ayudará en la ampliación de estudios en el pez cebra para incluir la remodelación de los órganos de las larvas, la morfogénesis de órganos específicos para las investigaciones de adultos y otros de los sistemas de órganos adultos.

Este protocolo describe un procedimiento para identificar y disecar los órganos de los adultos de pez cebra.

La disección de los órganos del pez cebra adultos

Durante los últimos 20 años, el pez cebra se ha convertido en un organismo modelo potente para comprender el desarrollo y las enfermedades de los vertebrados. Aunque la experimentación...

En los últimos 20 años, el pez cebra se ha convertido en un organismo modelo poderoso para comprender el desarrollo y las enfermedades de los vertebrados. Aunque la morfología del embrión y la larva ha sido bien documentada, faltan descripciones del pez cebra adulto, su anatomía y las técnicas para trabajar con ejemplares adultos. El laboratorio de Mary Mullin en la Universidad de Pensilvania estudia el desarrollo de las gónadas y habitualmente disecciona ovarios y testículos de peces adultos.Este protocolo demuestra la disección de las gónadas, así como la identificación y disección de los otros sistemas orgánicos principales. Para comenzar, se anestesia y se sacrifica a un pez, que luego se sujeta con alfileres sobre una tabla de disección. Se retira la piel y el músculo subyacente del pez para exponer el corazón, el hígado, el intestino, la gónada y la vejiga natatoria.Se extraen los órganos internos de la cavidad corporal. Para su posterior examen o experimentación, Tripti Gupta del laboratorio de Mary Mullins en el departamento de biología celular y del desarrollo de la Universidad de Pensilvania identificará muchos de los órganos del pez cebra adulto y demostrará cómo diseccionarlos. Por claridad y facilidad en la disección, se extraerán del tracto gastrointestinal, los testículos y el riñón de un pez cebra macho, y luego se diseccionarán los ovarios, el corazón y el cerebro de una hembra.Para reducir la cantidad de alimento en el intestino. No alimente a los peces el día anterior a la disección. Se realizará la disección de un pez cebra macho.Primero, necesitará una bandeja de disección, tijeras de disección tipo Venice Spring, pinzas, un recipiente con PBS y un pez que haya sido anestesiado y sacrificado. Seque ligeramente el pez con una toalla de papel y colóquelo de lado. Sobre una bandeja de disección, los peces cebra tienen una aleta dorsal única y una aleta anal, así como aletas pélvicas y pectorales emparejadas.Utilice alfileres de disección para sujetar el pez sobre la tabla de disección a través de la parte carnosa de la cola y la parte ventral de la cuenca del ojo. Con las tijeras de resorte, corte la piel del vientre del pez justo anterior a la aleta anal. Corte la piel y el músculo subyacente a lo largo del vientre desde la aleta anal hasta la cubierta dura que recubre las branquias, denominada opérculo.Utilice las tijeras y las pinzas para extraer el opérculo y la aleta pectoral, incluyendo la región ósea gruesa en la base de la aleta denominada cintura pectoral. Retírelas para exponer las branquias. Corte la piel y el músculo subyacente comenzando desde encima de la branquia expuesta en dirección posterior a lo largo del costado del pez, y luego hacia abajo hasta la aleta anal.Retire cuidadosamente la piel y el músculo subyacente del costado del pez para exponer los órganos internos. Los testículos son órganos largos, blancos y pares que se encuentran unidos a la pared corporal dorsal. Retire un testículo y colóquelo en una placa con PBS a temperatura ambiente. Elimine la grasa asociada con el testículo.Examine el testículo con luz reflejada bajo un microscopio estereoscópico para visualizar los túbulos seminíferos, que contienen quistes con diversas etapas de células germinales en desarrollo, desde espermatogonias hasta espermátidas. A continuación, retire el sistema gastrointestinal de la cavidad corporal del pez; la vesícula biliar, una bolsa verde translúcida llena de líquido, y el bazo, que presenta un color rojo brillante, se encuentran dentro de las vísceras. El hígado puede identificarse por su gran tamaño, morfología lobulada, color pardusco y vascularización extensa.Separar el intestino del resto de los órganos y extenderlo. Las regiones anterior, media y posterior del intestino se definen por la altura de los pliegues epiteliales, siendo la anterior la más alta. Colocar un fragmento del intestino en PBS y observar los pliegues epiteliales bajo el microscopio utilizando luz transmitida.Ahora examine la vejiga natatoria. La vejiga natatoria consta de una cámara posterior, que se conecta al esófago mediante el conducto pneumático, y una cámara anterior, que se conecta al oído interno a través del aparato arquiano. Retire y deseche la vejiga natatoria, desclave el pez y colóquelo con el lado ventral hacia arriba para disecar el riñón.El riñón es una estructura translúcida de color rosa ubicada a lo largo de la pared corporal dorsal y asociada con la aorta dorsal y células pigmentadas. El riñón se divide en regiones cefálica, corporal y caudal. Bien, entonces está la cabeza, el cuerpo del riñón y la cola.Esta es la aorta y estas son las células pigmentadas. Diseque un trozo del riñón y colóquelo en PBS bajo el microscopio. Separe los tejidos renales con las agujas para revelar los túbulos renales.Para la disección de un pez hembra, necesitará las mismas herramientas que antes, además de algunas agujas finas, una cuchilla de afeitar y un recipiente con solución de Ringer. Para la disección del corazón, seque ligeramente el pez sacrificado y fíjelo en el tapete de disección. Como antes, utilice las mismas técnicas que anteriormente para retirar la piel del costado del pez hembra.El ovario es una estructura bilobulada que se suspende en la cavidad corporal por medio de un mesovario vascularizado. Retire un lóbulo del ovario y colóquelo en PBS. Examine el ovario con luz incidente bajo el microscopio.Las células se pueden separar utilizando agujas finas y luego asignarlas a etapas según su tamaño y apariencia. A continuación, diseque el corazón del pez. El corazón se encuentra posterior y ventral a las branquias.Comience cortando el corazón y todo el tejido circundante y colóquelo en PBS bajo el microscopio. Diseque cuidadosamente el tejido que rodea el corazón, teniendo cuidado de no dañar el atrio delicado. Coloque el corazón diseccionado en solución de Ringer y póngalo bajo el microscopio.Para observar el latido cardíaco, identifique la aurícula, el ventrículo y el bulbo arterial. Para acceder al cerebro, retire las agujas del pez y corte la cabeza con la hoja de afeitar. Retire la mayor cantidad posible de tejido blando del lado ventral del cráneo utilizando pinzas.Identifique el quiasma óptico y luego retire los ojos utilizando tijeras pequeñas de resorte. Con la pinza, rompa, abra el cráneo y retire el hueso del lado ventral del cerebro. Corte los nervios craneales con tijeras de resorte.Si es necesario, traslade la cabeza a una placa con PBS. Gire la cabeza y retire la piel y los huesos del cráneo desde el lado dorsal del cerebro bajo el microscopio, identifique los bulbos olfativos. Indique el cefalón, el tumor óptico ULA, el cerebelo y la médula oblonga.Entonces, aquí están los bulbos olfativos, el cefalón verde azulado, el ula, el túbulo óptico, el cerebelo y la médula, el corazón, el sistema gastrointestinal, las gónadas, la vejiga natatoria, el riñón y el cerebro. Se disectaron de peces cebra adultos. Estos órganos ahora pueden utilizarse para hibridación in situ, inmunohistoquímica, histología, extracción de ARN u otras técnicas moleculares.

dissection-of-organs-from-the-adult-zebrafish

Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

El riñón del pez cebra es el hogar de los renales y hematopoyéticas adultas células madre / progenitoras, y representa una oportunidad excepcional para estudiar estos tipos de células y su progenie en un organismo modelo de vertebrados. En este sentido, demostrar un procedimiento de disección detallada que permite al investigador identificar y extirpar el riñón del pez cebra adulto, que puede ser utilizado para aplicaciones tales como el aislamiento de células, los trasplantes, y los estudios...

La disección del riñón adultos de pez cebra

Un método claro y estandarizado para la disección y el aislamiento del corazón del pez cebra en varias etapas de desarrollo se describen. Técnicas de anotación y cuantificación también se discuten.

La disección del corazón en las larvas, juveniles y adultos de pez cebra, Danio rerio</em

Este video describe la técnica de aislar el intestino para evaluar la absorción intestinal de compuestos bioactivos. En esta muestra, aislaremos el intestino de un pez cebra adulto para analizar la absorción de inmunoestimulantes.

Disección del intestino del pez cebra adulto: una técnica para analizar la absorción de compuestos

Este video describe una técnica para aislar el corazón de un pez cebra en múltiples etapas de desarrollo para estudiar el desarrollo, la maduración y el envejecimiento cardíacos.

Disección del corazón: un método para observar el desarrollo cardíaco del pez cebra

Este video describe la técnica de microdisección del cerebro de un pez cebra adulto. Este método ayuda a obtener neuorosferas derivadas de todo el cerebro que se pueden estudiar más a fondo.

Disección del cerebro del pez cebra: una técnica de neurobiología de peces

Los procesos de desarrollo tales como la proliferación, el patrón, la diferenciación, y guía de axones se pueden modelar fácilmente en la médula espinal pez cebra. En este artículo se describe un procedimiento de montaje para los embriones de pez cebra, que optimiza la visualización de estos eventos.

La disección y de montaje lateral de embriones de pez cebra: Análisis para el Desarrollo de la médula espinal

El uso del pez cebra para la investigación cardiovascular se está expandiendo hacia la investigación en corazones adultos. Para estas aplicaciones, el aislamiento rápido y sencillo de los tejidos cardíacos es clave para evitar cambios post-mortem y obtener un número adecuado de muestras. Aquí, describimos un método rápido y reproducible para diseccionar corazones de pez cebra adultos.

Recuperación de adultos de pez cebra Corazones para aplicaciones de alto rendimiento

Aquí, se presenta un protocolo para el aislamiento de tejido gonadal de larvas de pez cebra, que facilitará las investigaciones de la diferenciación sexual de pez cebra y el mantenimiento.

La disección de las larvas de pez cebra de tejidos gonadales

Aquí, discutimos un protocolo de método que permita un fácil análisis de la vasculatura retiniana del pez cebra adulto tg(fli:EGFP) como una lectura rápida en entornos de patologías vasculares a largo plazo vinculados a la neoangiogénesis y cambios estructurales.

Estudiar la Diabetes a través de los ojos de un pez: Microdissection, visualización y análisis de la vasculatura de retina de pez cebra de adulto tg(fli:EGFP)

Este protocolo describe el procedimiento para eliminar el lóbulo ventral del hígado en el pez cebra adulto para permitir el estudio de la regeneración hepática.

Hepatectomía parcial en pez cebra adulto

El presente protocolo describe el aislamiento agudo de células viables del músculo liso cardíaco y vascular de peces cebra adultos, juveniles, larvales y embrionarios (Danio rerio), adecuados para estudios electrofisiológicos.

Aislamiento de células musculares lisas cardíacas y vasculares de peces cebra adultos, juveniles, larvales y embrionarios para estudios electrofisiológicos

Aprende la disección de órganos en pez cebra adulto para estudios de anatomía comparada y biología del desarrollo. Este protocolo detalla técnicas para extraer gónadas, corazón, hígado e intestino.

La disección de los órganos del pez cebra adultos

Explorar más videos