Name: Electrodo de fabricación e implantación de Aplysia californica Para grabaciones multi-canal neural y muscular en los animales intactos, libremente Comportarse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-04T17:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: Aprende a fabricar e implantar electrodos multicanal en Aplysia californica para registrar actividad neural y muscular durante la alimentación. Esta técnica permite estudiar el control neuromuscular en animales intactos y de comportamiento libre.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Agradecemos el apoyo de los NIH (NS047073 a HJC). También estamos agradecidos a Catherine Kehl por sus primeros experimentos con Kwik-Sil, que nos animó a usarlo para nuestra aplicación.

1. Fabricación de electrodos <ol><li> Para crear el electrodo, use tijeras para cortar un trozo de esmaltado 0.001 alambre de acero inoxidable de diámetro alrededor de 2 pies de largo. Coloque una pequeña bola de masilla a cada extremo del cable, doble el alambre a la mitad, y el giro de los extremos para crear un par trenzado, llamado electrodo diferencial. </li><li> Tape ambos extremos del alambre para evitar que desentrañar. Hacer cuatro electrodos diferenciales, usando un color diferente de la cinta para cada electrodo diferencial para fines de identificación (Figura 1). </li><li> Giro de dos de los electrodos diferenciales juntos, dejando dos pulgadas de torsión en un extremo y 1 pulgada en el otro extremo. Repita con el resto de par de electrodos diferenciales (fig. 1B). </li><li> Gire los dos conjuntos de dos electrodos diferenciales juntos, asegurándose de que los extremos quedan sin torsión. Levante el conjunto de electrodos y aplicar la goma de pegar de silicona en la unión de los cuatro electrodos diferenciales, dejando los extremos libres. Cuelgue y deje que el pegamento se seque por lo menos durante 4 horas (fig. 1C). </li><li> Para aislar las ramas, estaba el conjunto de electrodos hacia abajo sobre una superficie plana, muebles, un trozo de madera. Fan de los extremos y fijarlos con cinta adhesiva. Use una pequeña pieza de plástico para elevar el conjunto de electrodos justo antes de que las ramas, y seguro que con la cinta. </li><li> En un microscopio de disección, el uso de fórceps para cubrir las ramas con pegamento de silicona. Los extremos de 1 pulgada de largo será en el interior del animal, por lo que debe tener una capa muy fina de pegamento. Deje que el pegamento se seque por lo menos 3 horas. </li><li> Acortar el extremo largo de 1 pulgada de electrodo diferencial de uno a dos centímetros. En cada alambre, quite 1 cm de silicona y el esmalte. Curl un cable pelado en un gancho para la grabación. Doble el otro cable hacia arriba y lejos del gancho, lo que servirá como cable a tierra. Repita el procedimiento para las otras tres electrodos. </li><li> Seleccione uno de los cuatro electrodos en la parte 2 pulgadas. El uso de fórceps para raspar el esmalte de silicona y apagado, la exposición de 1 cm de cable desnudo de acero inoxidable en cada uno de los dos cables. Soldar un conector de oro a cada uno de los dos cables. Use un pedazo de cinta de laboratorio para asegurar el final y mantener una separación entre el suelo y los pasadores de grabación. Repita el procedimiento para las otras tres electrodos. </li><li> Coloque una bola de 1-2cm de la cola de silicona para el cable, alrededor de 1,5 pulgadas del extremo del gancho para fijar los electrodos dentro del animal. Deje secar por lo menos durante una hora (Figura 1D). <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Fabricación de electrodos de la Asamblea. (A) Electrodo diferencial único, compuesto de un alambre doblado y retorcido, con sus extremos asegurados con cinta adhesiva. (B) dos electrodos diferenciales entrelazadas, dejando un espacio sin torsión en los extremos. Cintas de diferentes colores o marcado otro debe ser utilizado para identificar los extremos. (C) Todos los electrodos diferenciales cuatro combinados en un único conjunto de electrodos que forman un solo cable, con ramas separadas de los electrodos individuales en cada extremo, marcados con distintos colores de la cinta. (D) Forma definitiva del conjunto de electrodos. A la izquierda, no se enroscan los ganchos para las grabaciones y los cables de tierra para cada electrodo diferencial. A la derecha, alfileres de oro conector han sido soldadas a los cables para la conexión al amplificador. Una bola de anclaje de silicona pegamento también se ha colocado hacia el lado izquierdo de la asamblea. </li></ol> 2. Preparación de animales para la Implantación <ol><li> Seleccione un animal sano y pesa alrededor de 350-450g. En respuesta a pequeños trozos de algas marinas, el animal debe generar las picaduras a intervalos de entre 3 a 5 segundos. La cirugía completa con la implantación de electrodos debe tomar alrededor de una hora. </li><li> Para anestesiar al animal, que se inyectan con un 30% w / v isotónica MgCl 2. Para evitar la pérdida de hemolinfa y MgCl 2, el sitio de inyección se pueden revestir de pegamento antes de retirar la aguja. <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Diagrama esquemático que muestra cómo el animal se fija para la implantación de electrodos, y la ubicación de la incisión (indicado por una barra). </li><li> Coloque el animal anestesiado en una bandeja de disección con su pie en el suelo. Frente a la cabeza de animal en, desplace el área de enmalle a la izquierda tal que el animal es parte de su lado, apoyándose de distancia. Precisar los tentáculos anterior (Figura 2). </li><li> Coloque la bandeja en el escenario de un microscopio de disección. Sostener la bandeja en un ángulo de 20 grados para elevar la cabeza y recoger la hemolinfa en la cola, lejos de la incisión. </li><li> Usando tijeras de disección, iniciar una incisión ligeramente a la derecha de la mancha ocular y su ampliación del 1 al 1,5 cm hacia delante. Utilice separadores unido a los bordes de la bandeja para mantener la incisión abierta (Figura 2, un bar cerca de la incisión nota indicando mancha ocular). </li><li> Para exponer la masa bucal, el uso de fórcepss para levantar la membrana transparente debajo de la piel y las tijeras para cortar el uso de una abertura correspondiente de la incisión principal. Meta los bordes de la membrana en los separadores. </li></ol> 3. La implantación de electrodos <ol><li> Coloque el conjunto de electrodos en un micromanipulador y moverlo sobre la incisión del animal. </li><li> El nervio rádula es de más difícil acceso, y se debe abordar en primer lugar. Hay dos opciones para acceder a los nervios radular. </li><li> La primera opción, que es preferible, es buscar en el ganglio vestibular entre BN1 y BN2. Si una rama del nervio radular es visible, use unas pinzas de punta fina doblada en forma de gancho para levantar la rama (Figura 3, el bucle de RN en ganglio marcado 1). </li><li> Si una rama del nervio radular no es accesible por encima del músculo, una segunda opción es acceder a ella a través de una pequeña incisión en I2 al lado del tejido conectivo en la base del ganglio vestibular (Figura 3, RN por debajo de los músculos marcados 2). La incisión en I2 debe pasar por dos capas del músculo I2. Sostenga el borde de la incisión del músculo con pinzas rectas y el uso de las pinzas de gancho para tirar de una rama de RN. </li><li> Mientras mantiene el nervio con la pinza de gancho, utilizar un conjunto diferente de pinzas para manipular el gancho del electrodo en el nervio. </li><li> Utilice el micromanipulador para elevar el gancho para que el nervio se levanta lejos de la masa bucal y libre de cualquier otros nervios o el tejido. No estire demasiado el nervio. </li><li> Seque el electrodo con un Kim-Wipe o succión de el exceso de líquido con una jeringa. Tensión del agua puede causar que el nervio se derrumbe sobre sí misma, o un sello de agua para formar en el nervio. En cualquier caso, el área debe estar completamente seca antes de pegamento se aplica. </li><li> Aplicar una cantidad muy pequeña de pegamento en la base del gancho está en contacto con la parte inferior del nervio. Aplique una gota de solución salina o hemolinfa Aplysia para establecer el pegamento. Cuando el pegamento no es húmedo se debe mover como conseguir unión entre el cable y el nervio se bloquea la conexión eléctrica. </li><li> Seque el gancho. Mezcla de Kwik-Sil pegamento en una bolsa de hielo. </li><li> Use la punta de un alfiler para aplicar una pequeña cantidad de pegamento Kwik-Sil, cubriendo completamente los cables expuestos del gancho, pero no el cable a tierra. </li><li> Deje que el pegamento para fijar durante unos 5 minutos, el reajuste de la cola si se aleja de las secciones del gancho. La cola se establece cuando se pega cuando ya no se tocó con el pasador (Figura 4 muestra la configuración final). </li><li> Una vez que el electrodo nervio rádula está establecido, el músculo I2 se puede acceder. En la zona entre BN1 y BN2, utilice las pinzas gancho para conectar y separar dos bandas del músculo I2 del resto de los músculos tirando suavemente de las bandas hacia arriba. Conecte el electrodo utilizando el mismo procedimiento. </li><li> Nervios bucales 2 y 3 son de fácil acceso y los electrodos están conectados con el mismo procedimiento. </li><li> Una vez que todos se coloquen los electrodos, deslice el conjunto de electrodos en el animal hasta el anclaje de silicona. </li><li> Sutura la incisión se cierra alrededor del cable del electrodo que sobresale, manteniendo el anclaje en el interior del animal. Superglue los puntos para asegurar un buen sello. </li><li> Inserte las puntas del conector de oro en el otro extremo del electrodo en un pequeño bloque de espuma de poliestireno. Devolver el animal al tanque principal en un contenedor de aislamiento celular durante la noche para la recuperación. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Un diagrama del aparato de alimentación Aplysia se conoce como la masa bucal. Se muestran los nervios vestibulares (BN1, BN2, BN3), el nervio rádula (RN) que sale de la parte inferior del ganglio vestibular, luego se sumerge por debajo del músculo, y la ubicación en el músculo I2 donde está conectado el electrodo. <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Esquema de electrodo conectado a un nervio (o músculo) y pegados en su lugar. Tenga en cuenta que la región de aislamiento del gancho curvado está en contacto directo con el nervio (o músculo), anclado en su lugar con pegamento, y aislados eléctricamente del medio líquido utilizando Kwik-Sil. Tenga en cuenta también que la punta deinsulated del electrodo de masa está expuesto al medio líquido. 4. Grabación <ol><li> Aclimatar al animal en un recipiente aireado mientras se está conectado al aparato de control durante al menos 1,5 horas. Monitorizar la señal mientras el animal está aclimatando a verificar que todos los electrodos están funcionando y que los niveles de ruido son bajos. </li><li> Utilice una cámara de video para registrar el comportamiento de alimentación mientras se utiliza el ordenador para grabar las señales de los electrodos neurales y musculares. Sincronizar las grabaciones de vídeo y el electrodo con una señal de onda cuadrada que controla un contador digital en la vista de la cámara mientras se graban simultáneamente como un canal adicional en el equipo en Axoscope. </li><li> Comportamientos de alimentación son provocadas por las técnicas descritas en Morton y Chiel 1993. </li></ol> Aunque los animales invertebrados no requieren la aprobación formal por parte de un uso de los animales y el comité institucional de atención, nos hemos asegurado de que todos los tratamientos de Aplysia minimizar el daño y sufrimiento a los animales, y que todas las técnicas quirúrgicas se realizan mientras el animal esté totalmente anestesiado. Resultados representante <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig5.jpg" alt="Figura 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 5"> Figura 5. (A) En forma simultánea las grabaciones de cuatro canales a partir de un músculo (el músculo del transportador I2), y de tres nervios vestibulares (el nervio radular, RN, nervio bucal 2, BN2, y el nervio vestibular 3, BN3) durante la respuesta a la deglución. (B) Una imagen fija de la grabación simultánea de vídeo del animal libre se comportan como se traga una tira de algas precortadas (0,5 cm de ancho), que ha estado marcada a intervalos de 0,5 cm con bandas blancas para que sus movimientos pueden ser fácilmente visualizados como el animal se alimenta.

<ol><li>Lu, H., Chestek, C. A., Shaw, K. M., Chiel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+extracellular+stimulation+of+individual+neurons+in+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neural+Eng%22%5BJournal%5D)">Selective extracellular stimulation of individual neurons in ganglia.</a> J. Neural Eng. 5, 287-309 (2008).</li>
<li>Morton, D. W., Chiel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+buccal+nerve+activity+that+distinguishes+ingestion+from+rejection+can+be+used+to+predict+behavioral+transitions+in+Aplysia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp.+Physiol.+A%22%5BJournal%5D)">In vivo buccal nerve activity that distinguishes ingestion from rejection can be used to predict behavioral transitions in Aplysia.</a> J Comp. Physiol. A. 172, 17-32 (1993).</li>
<li>Warman, E. N., Chiel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+technique+for+chronic+single+extracellular+recording+in+freely+behaving+animals+using+pipette+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">A new technique for chronic single extracellular recording in freely behaving animals using pipette electrodes.</a> J. Neurosci. Methods. 57, 161-169 (1995).</li>
<li>Ye, H., Morton, D. W., Chiel, H. J., J, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((nbsp%3BNeuromechanics+of+multifunctionality+during+rejection+in+Aplysia+californica%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">nbsp;Neuromechanics of multifunctionality during rejection in Aplysia californica.</a> J. Neurosci. 26, 10743-10755 (2006).</li>
</ol>

Una innovación clave que ha hecho de estas grabaciones de éxito es la combinación de los electrodos en un cable. Dos grabaciones de electrodos se han usado antes, pero ampliando a cuatro electrodos individuales dio lugar a la formación de adherencias quirúrgicas que a menudo impide al animal hacer los movimientos normales de alimentación. La combinación de los electrodos en un cable reduce la mayor parte de los electrodos en el interior del animal, que a su vez reduce la respuesta inmune y permite que el animal se mueva...

<table><tbody><tr><td>Alambre de acero inoxidable con recubrimiento de esmalte</td><td>California Fine Wire Company</td><td></td><td>0.001D, recubrimiento h</td></tr><tr><td>Pegamento de silicona doméstico II</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adhesivo Kwik-Sil</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Supercola Duro Qwik-Gel</td><td>Henkel Corp</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amplificador modelo 1700 de A-M Systems</td><td>A-M Systems</td><td></td><td>Ajustes del filtro: 100-1000 Hz para nervios, 10-1000 Hz para músculo I2</td></tr><tr><td>Axoscope 10.1</td><td>Molecular Devices</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pines conectoras de oro</td><td>Bulgin</td><td>SA3148/1</td><td></td></tr><tr><td>Enchufes conectoras de oro</td><td>Bulgin</td><td>SA3149/1</td><td></td></tr></tbody></table>

electrodo de fabricación e implantación de aplysia californica para grabaciones multi-canal neural y muscular en los animales intactos, libremente comportarse

Electrode Fabrication and Implantation in Aplysia californica for Multi-channel Neural and Muscular Recordings in Intact, Freely Behaving Animals

Grabación de los nervios y los músculos clave de<em&gt; Aplysia</em&gt; En el comportamiento de alimentación nos permite estudiar los patrones de control de los nervios en un animal intacto. Al mismo tiempo de grabación de múltiples nervios y los músculos nos da información precisa sobre el calendario de la actividad neuronal. Los métodos anteriores han trabajado para la grabación de dos electrodos, pero el estudio de los nervios o los músculos adicionales necesarios combinando y un promedio de las grabaciones de varios animales, lo que hacía difícil determinar los detalles finos de la oportunidad y la eliminación gradual, debido a la variabilidad de la respuesta a la respuesta, y de un animal a otro. La implantación de cuatro electrodos individuo tiene una tasa de éxito muy baja debido a la formación de adherencias que impiden que los animales de la realización de movimientos normales de alimentación. Hemos desarrollado un nuevo método de fabricación de electrodos, que reduce la mayor parte de los electrodos en el interior del animal teniendo en cuenta los movimientos de la alimentación normal. Usando una combinación de gomas para sujetar los resultados de los electrodos en un aislamiento más confiable del electrodo, que dura más tiempo, por lo que es posible grabar por periodos de hasta una semana. La técnica de fabricación que describimos podría ser ampliado para incorporar varios electrodos adicionales, y que se aplique a los animales vertebrados.

Una técnica se describe para la implantación de cuatro<em&gt; In vivo</em&gt; Electrodos para monitorear el control neuromuscular de la conducta alimenticia en<em&gt; Aplysia californica</em&gt;.

Electrodo de fabricación e implantación de Aplysia californica Para grabaciones multi-canal neural y muscular en los animales intactos, libremente Comportarse

El registro de nervios y músculos clave de Aplysia durante el comportamiento de alimentación nos permite estudiar los patrones de control neuronal en un animal intacto.

Para fabricar el conjunto de electrodos para grabaciones in vivo multicanal, se crean cuatro electrodos diferenciales y se enrollan juntos, con los electrodos diferenciales individuales separándose. En los extremos, se fija el animal anestesiado y se realiza una incisión al lado de la mancha ocular. Se localizan los nervios y músculos objetivo, y se colocan los electrodos en la gota de superpegamento en la base del gancho, y luego se aíslan con sellador rápido.Hola, soy Miranda Collins del laboratorio del Dr. Halal Thiel del departamento de biología de la Universidad Kiss Western Reserve. Hoy les mostraré un procedimiento para armar e implantar electrodos para grabaciones in vivo en SIA, California. Utilizamos este procedimiento en nuestro laboratorio para estudiar el control neuromuscular de la alimentación y de la SIA.Comencemos. Para crear el electrodo, use tijeras para cortar un trozo de alambre de acero inoxidable con recubrimiento de esmalte, de aproximadamente dos pies de longitud y 0.001 pulgadas de diámetro. Fije una pequeña bola de masilla a cada extremo del alambre.Doble el alambre por la mitad y gire los extremos para crear un par trenzado llamado electrodo diferencial.

electrode-fabrication-implantation-aplysia-californica-for-multi

Research

Investigación

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociencia

Se demuestra cómo los cambios en la concentración de calcio libre intracelular y la eficacia sináptica puede controlarse simultáneamente en una preparación de...

Seguimiento de los cambios en la concentración de calcio intracelular y la eficacia sináptica en el molusco<em&gt; Aplysia</em

Se describe una técnica para registrar extracelularmente y estimular los nervios, los músculos y las neuronas individuales...

Un<em&gt; In Vitro</em&gt; Preparación para Obtener y grabar programas de alimentación del motor con los movimientos fisiológicos en<em&gt; Aplysia californica</em

Este video muestra una técnica para implantar un conjunto de electrodos en el cerebro de un ratón. El conjunto contiene electrodos bipolares para registrar la actividad del hipocampo y un electrodo de referencia para obtener la actividad basal del cerebelo. Un ratón anestesiado se coloca en un marco estereotáxico y el conjunto de electrodos se implanta en la región del cerebro objetivo. A continuación, se permite que el animal se recupere antes de realizar el registro electrofisiológico.

Implantación de un conjunto de electrodos en el cerebro de un ratón para su registro electrofisiológico

En los animales con grandes neuronas identificadas...

Extracelularmente Identificar las neuronas motoras de un músculo en la piscina Motor<em&gt; Aplysia californica</em

La implantación de arreglos organizados de microhilos para su uso en una sola unidad los registros electrofisiológicos se presenta una serie de desafíos técnicos. Se describen los métodos para llevar a cabo esta técnica y el equipo necesario. Además, se discute el uso beneficioso de arrays microhilo organizados para grabar desde subregiones neuronales distintas con alta selectividad espacial.

Un procedimiento para la implantación de matrices Organizados de Microhilos para grabaciones de una sola unidad en Awake, Comportarse Animales

El caracol marino Aplysia californica ha sido ampliamente utilizado como modelo neurobiológico para los estudios sobre bases celulares y moleculares del comportamiento. Aquí se describe una metodología para explorar el sistema nervioso de Aplysia para los análisis electrofisiológicos y moleculares de neuronas individuales de circuitos neuronales identificados.

Aplysia Preparación De Ganglios Para Análisis Electrofisiológicos Y Moleculares De Neuronas Individuales

Este estudio presenta un método para la grabación simultánea de potenciales de campo local en el cerebro, electrocardiogramas, electromyograms y respirar las señales de una rata libremente móvil. Esta técnica, que reduce los costos experimentales y simplifica el análisis de datos, contribuye a la comprensión de las interacciones entre el cerebro y órganos periféricos.

Grabaciones simultáneas de potenciales de campo Local Cortical, Electrocardiograma, electromiograma y respirar a ritmo de una rata libremente móvil

A continuación se describe un método para la implantación de múltiples matrices de electrodos de polímeros en regiones cerebrales anatómicamente distantes para la grabación electrofisiológica crónica en ratas que se mueven libremente. La preparación y la implantación quirúrgica se describen en detalle, con énfasis en los principios de diseño para guiar la adaptación de estos métodos para su uso en otras especies.

Implantación Crónica de Múltiples Matrices de Electrodos Flexibles de Polímeros

Aquí se presenta un protocolo para la fabricación de un sistema implantable para la grabación cronológica in vivo de potenciales electromiográficos evocados y espontáneos. El sistema se aplica a la investigación de la reinnervación de los músculos laríngeos después de la lesión nerviosa.

Un sistema implantable para la electromiografía crónica in vivo

Aquí describimos un método para fabricar matrices de microelectrodos Ti3C2 MXene y utilizarlas para la grabación neuronal in vivo.

Fabricación de ti3C2 Matrizs de Microelectrodos MXene para Grabación Neuronal In Vivo

Hemos desarrollado un enfoque simplificado y rentable para la fabricación de electrodos y hemos realizado grabaciones de señales en múltiples regiones en ratones que se mueven libremente. El uso de la optogenética, junto con la electrofisiología multirregional y el registro de señales de calcio, permitió la revelación de las actividades neuronales en todas las regiones del modelo de convulsiones.

Un método integrado para crear optrodes electrofisiológicos flexibles y convenientes para el registro in vivo en múltiples regiones

Aprende a fabricar e implantar electrodos multicanal en Aplysia californica para registrar actividad neural y muscular durante la alimentación. Esta técnica permite estudiar el control neuromuscular en animales intactos y de comportamiento libre.

Electrodo de fabricación e implantación de Aplysia californica Para grabaciones multi-canal neural y muscular en los animales intactos, libremente Comportarse (Video) | JoVE Journal

Electrodo de fabricación e implantación de Aplysia californica Para grabaciones multi-canal neural y muscular en los animales intactos, libremente Comportarse

Explorar más videos