Preparación de muestras de microscopía de lámina ligera: montaje de embriones vivos de pez cebra para la obtención de imágenes a largo plazo

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- En primer lugar, prepare la agarosa añadiendo el medio E3, que suministra calcio a los embriones decorionados para fundir la agarosa. A continuación, agregue MS222 para anestesiar los embriones. Enfríe la mezcla de agarosa a 38 grados centígrados, cerca de solidificarse. Seleccione unos pocos embriones decorionados que expresen proteínas fluorescentes y transfiéralos a la mezcla de agarosa.

A continuación, inserte completamente un émbolo en un capilar de vidrio y extraiga un embrión, asegurándose de que entre de cabeza. Una vez que la agarosa se solidifique, use cinta adhesiva para mantener el capilar en posición vertical en un vaso de precipitados que contenga medio E3. El fondo capilar abierto favorece el intercambio de gases para la muestra de embrión.

Coloque el capilar en el portamuestras de un microscopio de fluorescencia de hoja de luz. El láser forma una delgada lámina de luz, lo que permite que un objetivo de detección, colocado perpendicular a la muestra, capture una imagen transversal. En el protocolo de ejemplo, montaremos embriones de pez cebra para obtener imágenes del ojo en desarrollo.

Comience preparando la agarosa. Derretir una alícuota preparada de 1 mililitro de agarosa de bajo punto de fusión al 1% en medio E3 a 70 grados centígrados. Después de unos 15 minutos, transfiera 600 microlitros de agarosa fundida a un tubo fresco de 1,5 mililitros y agregue 250 microlitros de medio E3, 50 microlitros de MS222 al 0,4% y 25 microlitros de solución de material de perlas fluorescentes en vórtice.

Coloque el tubo en un bloque calefactor a unos 39 grados centígrados, para que la agarosa se acerque a su punto de gelatina. A continuación, empuje los émbolos con punta de teflón hasta el fondo de los capilares de vidrio de 1 milímetro de diámetro interior. Prepara cinco de estos.

Ahora, vórtice brevemente la mezcla de agarosa y luego, transfiera cinco embriones con una cantidad mínima de líquido en ella. A continuación, se introduce un capilar y se aspira un embrión, con la cabeza por delante.

La cabeza debe entrar antes que la cola y no puede haber burbujas de aire. Extraiga suficiente solución para que haya aproximadamente dos centímetros de agarosa por encima del embrión y 1 centímetro de agarosa por debajo.

Extrae un embrión en cada capilar antes de continuar. Este paso requiere algo de práctica para dominarlo. Prepárese para ello utilizando embriones no valiosos.

Cuando la agarosa se solidifique completamente, almacene las muestras en medio E3 apoyando los capilares en la pared de un vaso de precipitados con plastilina, con la abertura inferior en solución. Ahora, ensamble el portamuestras. Primero, inserte dos fundas de plástico del tamaño correcto una contra la otra en el vástago.

Las aberturas de las mangas deben mirar hacia afuera. A continuación, coloque un tornillo de sujeción e inserte el capilar a través del soporte, hasta que la banda de color negro se haga visible en el otro lado. Evite tocar el émbolo.

A continuación, apriete el tornillo de sujeción. A continuación, empuja un centímetro de agarosa fuera del capilar y recórtalo. A continuación, inserte el vástago en el disco portamuestras.

Antes de cargar el disco de muestra, compruebe que la platina esté en la posición más alta del software de control. A continuación, utilice los rieles guía para deslizar el soporte y la muestra hacia el microscopio. Ahora, imagine la muestra elegida como se describe en el protocolo de texto.

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Last updated: 25 July 2026