Electrofisiología de pinza de parche de célula completa: un método para estudiar las propiedades eléctricas de las neuronas

0 vistas3:42 min • April 30th, 2023

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- Comience colocando una cámara de registro que contenga una muestra en una solución de baño, cuya composición coincida con el entorno extracelular fisiológico o el citoplasma, en una platina de microscopio. Avance la micropipeta de registro, una pipeta que contiene un electrodo de plata bañado en una solución de electrolitos, que imita las condiciones intracelulares, hacia la neurona mediante la aplicación de presión positiva, y haga contacto con la membrana celular.

Cambie suavemente de presión positiva a negativa para formar un sello hermético entre la membrana y la pipeta. Establezca un potencial de retención en el amplificador para mantener la celda a un voltaje constante. A continuación, rompa la membrana celular dentro de la micropipeta aplicando succión.

Una vez que la membrana celular se rompe, el potencial de retención provoca el flujo de iones a través de canales iónicos dependientes de voltaje, creando un potencial de membrana, que es registrado por el electrodo de registro. Registre inmediatamente el potencial de membrana. El electrodo de registro transmite la señal al amplificador de retroalimentación, que resta el potencial de membrana del potencial de retención: un osciloscopio, que presenta una visualización del potencial de membrana, y una computadora. En el siguiente protocolo, realizaremos una medición de pinza de parche en la célula de Mauthner en un embrión de pez cebra.

- Para prepararse para la sujeción del parche, comience tirando de algunas pipetas de abrazadera de parche con vidrio de borosilicato de pared delgada en un extractor horizontal. Los diámetros de la punta de la pipeta son de aproximadamente 0,2 a 0,4 micrómetros después del pulido al fuego hasta obtener un borde liso, y el cono del vástago mide aproximadamente 4 milímetros de largo.

Llene la punta de la pipeta con solución intracelular sumergiendo la punta en el líquido intracelular. A continuación, inserte una aguja de jeringa en la pipeta y expulse suavemente la solución intracelular de la jeringa para terminar de llenar la pipeta. Conecte la pipeta a la platina del cabezal del amplificador en la configuración de electrofisiología. Es importante mantener la platina de la cabeza en un ángulo de aproximadamente 45 grados con respecto al eje horizontal, ya que esto garantiza un ángulo de entrada para la pipeta adecuado para la formación de sellos de alta resistencia con la célula de Mauthner.

Justo antes de que la pipeta descienda a la solución de baño, aplique una pequeña cantidad de presión positiva a la pipeta para reducir la posibilidad de que la punta se bloquee. Continúe acercándose a la célula M con una pequeña cantidad de presión positiva en la pipeta. La presión positiva empuja suavemente la célula de un lado a otro y, cuando se coloca inmediatamente sobre la célula, forma un pequeño hoyuelo en la membrana celular.

Ahora, deje la pipeta en su lugar durante unos segundos para limpiar suavemente la superficie celular y así se pueda formar un sello fuerte entre la pipeta y la membrana. A continuación, libere la presión positiva de la pipeta para iniciar el sellado. Una pequeña cantidad de presión negativa, junto con un potencial de pipeta negativo, da como resultado la formación de sellos de giga-ohmios en unos pocos segundos.

Posteriormente, cambie el potencial de retención en el amplificador a menos 60 milivoltios. Ruptura de la membrana celular con una serie de pulsos cortos de succión. A continuación, registre inmediatamente los potenciales de membrana y minimice los artefactos de capacitancia. Compense la capacitancia de la celda y la resistencia de acceso entre un 70% y un 85%.

La resistencia de acceso debe controlarse cada 30 segundos a un minuto y, si hay un cambio del 20% o más, abortar el experimento. Una vez que el experimento haya terminado y se hayan adquirido suficientes datos, sacrifique el embrión extirpando el cerebro posterior con un par de pinzas.

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Última actualización: 1 agosto 2026