Name: Respuesta de células vivas a la estimulación mecánica estudiados por microscopía óptica integrada la Fuerza Atómica y (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-10-04T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 20 s
Description: Aprende a estudiar la respuesta celular a la estimulación mecánica utilizando microscopía óptica integrada con fuerza atómica en células vivas. Este método permite observar en tiempo real la reorganización del citoesqueleto de actina.

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Plásmido vinculina-GFP fue un regalo de Kenneth Yamada, Institutos Nacionales de Salud, Instituto Nacional de Investigación Dental y Craneofacial, Bethesda, Maryland, y la actina mRFP plásmido fue un regalo de Michael Davidson, Florida State University, Tallahassee, Florida. Este trabajo fue apoyado por el premio de su carrera NSF # 0747334 y AHA-Nacional SDG # 0835205N a Andreea Trache.

1. Panorámica del sistema de microscopio integrado El sistema de microscopio que se utiliza para estos estudios se ha descrito en detalle 1. En pocas palabras, un invertido Olympus IX-81 con microscopio TIRF adjunto (Olympus, Center Valley, PA) se combina con la CSU-22 Yokogawa cabeza de lectura (Yokogawa Electric Inc, Japón). Un microscopio de fuerza atómica Bioscope SZ (Veeco Instruments Inc, Santa Barbara, CA) está montado en la parte superior del microscopio invertido óptica, y todo el sistema se coloca en la parte superior de una tabla de grados de investigación óptica (Newport, Irvine, CA). El montaje confocal compuesta desde el escáner girar el disco, rueda de filtros externos y su cámara EMCCD (Roper Científico-Fotometría, Tucson, AZ) están rígidamente conectados con una placa base de aluminio colocado en una plataforma de silicio necesario para la amortiguación de las vibraciones. El escáner confocal se conecta con el microscopio a través de una brida con un collar de recauchutados que se puede separar de un microscopio AFM durante las mediciones, de tal manera que ninguna vibración del escáner girando el disco va a afectar a las mediciones de AFM. Un láser de argón-criptón (Spectra Physics, Mountain View, CA) se utiliza como fuente de excitación para ambos TIRF y modos de microscopía confocal, y se puede acoplar alternativamente en dos fibras ópticas que ofrecen el láser para la unión TIRF o el cabezal, respectivamente . Dos equipos de control del sistema: Slidebook software controla la formación de imágenes ópticas y software Nanoscope controla la AFM. 2. Cultivo de células Las células vivas que expresan GFP construcciones dirigidas contra las proteínas específicas se deben colocar en un plato con fondo de cristal de cultivo celular 24 horas antes de la prueba de estimulación mecánica. En el día del experimento sustituir el medio de cultivo celular con rojo fenol libre de soporte. La placa de cultivo celular se monta en la etapa de AFM con un collar magnético. 3. AFM Consejo Preparación y Microscopio Set-up La punta del AFM personalizar con una de 2 micrones biotinilado de perlas de vidrio se lavaron cinco veces con DPBS y luego se incubaron 5 minutos con avidina (1 mg / ml), se lavan nuevamente con DPBS cinco veces, y luego se incubaron 5 minutos con 1 mg / ml biotinilado fibronectina. La punta se lavaron cinco veces más en el extremo 2, montado en el escáner AFM, y luego la falda protectora de silicona se coloca alrededor de la titular. Ajuste el microscopio para ver vídeo para alinear la punta del AFM en el centro del campo de visión. Alinear la palanca óptica colocando el rayo láser en el extremo de la viga, y luego cambiar el objetivo a un objetivo de gran aumento adecuado de imágenes de células individuales. La constante del resorte de la punta tiene que ser determinada antes de comenzar el experimento. Este parámetro se mide utilizando el método de ajustar las características térmicas disponibles en el software Nanoscope. Interruptor de la cámara de vídeo a la cámara EMCCD para permitir la formación de imágenes de fluorescencia. A continuación, seleccione una celda y poner la punta del AFM en contacto con la celda en cuestión. Después de un tiempo de 20 minutos de espera, que es necesaria para una fuerte adhesión focal para formar en el punto de AFM de contacto con la superficie de la célula, el procedimiento de estimulación mecánica se inicia. 4. La estimulación mecánica de las células vivas TIRF 3-4 imagen será el método de elección para la visualización y cuantificación de las adhesiones focales, y girando el disco de imagen confocal 5 será utilizado para la visualización del citoesqueleto de actina a través del cuerpo celular. La AFM 6 se utilizará en el modo de imagen de contacto con el líquido. Una imagen TIRF o confocal de la célula se adquirió antes de iniciar el procedimiento de estimulación mecánica. La estimulación mecánica será inducida por la sonda de AFM funcionalizada que se mueve hacia arriba en pasos discretos cada 3-5 minutos durante un período de tiempo (1 a 1,5 horas). La célula reactiva de respuesta se grabará continuamente en software Nanoscope como una serie de imágenes de altura, cada línea de la imagen que representa una unidad de tiempo de 1 seg. Mientras que la adquisición de los datos de AFM, el operador controla en todo momento el z-posición de la punta del AFM para determinar el momento adecuado para la atracción de la próxima. Después de cada estimulación mecánica es posible adquirir una imagen TIRF o confocal de la celda en Slidebook software, mientras continua la adquisición de datos AFM. Las imágenes ópticas pueden ser procesados ​​off-line para crear películas que muestran la reorganización del citoesqueleto de actina y las adhesiones focales. Además, cada imagen puede ser procesada para determinar cuantitativamente área de la celda, la zona de proteínas específicas, y analizar la morfología de las células en general. Al final del experimento se retira la punta del AFM de la célula y la sensibilidad de la punta del AFM se medirá en el software Nanoscope. El experimento es muy sensible al ruido! Cualquier conversación o un microscopio de tocar durante la experiment debe ser evitado. Para minimizar el ruido en las mediciones de AFM, el confocal girar el disco debe ser disociado del microscopio. El tiempo de espera para formar una fuerte adhesión focal entre la superficie de la célula y la punta del AFM puede variar dependiendo del tipo de células utilizadas y el revestimiento de la matriz en la punta. 5. Resultados representante <img src="/files/ftp_upload/2072/2072fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Mismas células del músculo liso vascular (CMLV) transfectadas con actina-mRFP y vinculina GFP-fue fotografiada por: (A) AFM en la superficie celular apical (B) TIRF en la superficie de células basales, y (C) girando el disco de microscopía confocal en todo el cuerpo de la célula. La imagen confocal se muestra como la proyección máxima de una pila de 3-D. Solapamientos entre las buenas y AFM TIRF o girar imágenes de disco confocal se muestran en (D) y (E), respectivamente. Tamaño de la imagen es de 64 x 50 micras. <img src="/files/ftp_upload/2072/2072fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. A las CMLV transfectadas con actina-mRFP fue estimulado mecánicamente por la AFM y la imagen haciendo girar el disco microscopía confocal Las flechas indican las fibras de actina que:. (A) polimerizar / espesar, (b) despolimerizar / desaparecer, o (c) paquete en conjunto debido a la reestructuración de la actina. Las líneas blancas discontinuas representan la punta del AFM encima de la celda. La imagen a tamaño 91 x 91 micras.

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Adherencias citoesqueleto 07.10 y focal 11-16 son estructuras dinámicas que reúnen, se dispersan y vuelta como las células migran o responder a la fuerza mecánica 17. Tienen funciones importantes en la regulación del crecimiento celular, la supervivencia, y la expresión génica. Conocer su distribución específica y la dinámica proporciona una mejor comprensión de cómo se comunican las células con la matriz y entre ellos. Este sistema nuevo microscopio es ampli...

<table><tbody><tr><td>Punta de AFM</td><td>Novascan Technologies, Inc.</td><td></td><td>Bola de borosilicato de 2 micrones, 0,01 N/m, superficie con biotina</td></tr><tr><td>Avidina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9275</td><td>1 mg/mL en DPBS</td></tr><tr><td>Fibronectina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4759</td><td>1 mg/mL</td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Invitrogen</td><td>21600-051</td><td></td></tr><tr><td>Kit de transfección Amaxa para células musculares lisas</td><td>Lonza Inc.</td><td>VPI-1004</td><td></td></tr><tr><td>Placas MatTek con fondo de vidrio</td><td>MatTek Corp.</td><td>P60G-1.5-30-F</td><td>Placas Falcon estériles de 60 mm con cubreobjetos de vidrio no. 1.5 en el fondo</td></tr></tbody></table>

respuesta de células vivas a la estimulación mecánica estudiados por microscopía óptica integrada la fuerza atómica y

Live Cell Response to Mechanical Stimulation Studied by Integrated Optical and Atomic Force Microscopy

Para entender el mecanismo por el cual las células vivas sentido las fuerzas mecánicas, y cómo responden y se adaptan a su medio ambiente, una nueva tecnología capaz de investigar el comportamiento de las células a nivel subcelular con alta resolución espacial y temporal se ha desarrollado. Por lo tanto, un microscopio de fuerza atómica (AFM) se integró con la reflexión total interna de fluorescencia (TIRF) microscopía y el disco de giro rápido (FSD) microscopía confocal. El sistema integrado es ampliamente aplicable a través de una amplia gama de estudios moleculares dinámicos en cualquier célula viva adherente, permitiendo una imagen óptica directa de las respuestas celulares a la estimulación mecánica en tiempo real. Reorganización significativa de los filamentos de actina y adhesiones focales se demostró debido a la estimulación mecánica local en la superficie celular apical que los cambios inducidos en la estructura celular en todo el cuerpo celular. Estas técnicas innovadoras que proporcionan nueva información para la comprensión de la reestructuración de células vivas y dinámicas, en respuesta a una fuerza mecánica. Un protocolo detallado y un conjunto de datos representativos que muestran la respuesta de células vivas a la estimulación mecánica se presentan.

Este documento tiene como objetivo instruir al lector en la operación de una fuerza integrada atómica microscopio óptico de imagen para la estimulación mecánica de las células vivas en la cultura. Un protocolo de paso a paso se presenta. Un conjunto representativo de datos que muestra la respuesta de células vivas a la estimulación mecánica se presenta.

Respuesta de células vivas a la estimulación mecánica estudiados por microscopía óptica integrada la Fuerza Atómica y

Para comprender el mecanismo mediante el cual las células vivas detectan las fuerzas mecánicas, y cómo responden y se adaptan a su entorno, se requiere una nueva tecnología capaz de...

El estudio de la respuesta celular en tiempo real a la estimulación mecánica se lleva a cabo primero cultivando células que expresan proteínas de fusión GFP en placas con fondo de vidrio durante 24 horas. El segundo paso consiste en recubrir la punta de microscopio de fuerza atómica (AFM) con fibronectina biotinilada. Luego, la punta de AFM funcionalizada se pone en contacto con la superficie celular para permitir la formación de una adhesión focal fuerte alrededor de la punta de AFM, lo que permite la manipulación directa del citoesqueleto de actina mediante un enlace entre la matriz, las integrinas y la actina, entre la punta recubierta de fibronectina y la célula.El paso final consiste en estimular mecánicamente la célula viva mediante un movimiento ascendente controlado de la punta de microscopía de fuerza atómica (AFM), de modo que la fuerza vertical se aplique en el punto de contacto con la célula sin romper la adhesión focal fuerte. En última instancia, los resultados muestran que las células responden a la estimulación mecánica reforzando su adhesión al sustrato e induciendo la reorganización del citoesqueleto de actina, tal como se registra mediante imágenes ópticas de flu

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Biología

Mecánica estimulación inducida por calcio Propagación de Ondas en monocapas de células: el ejemplo de las especies bovina células endoteliales corneales

Este documento demuestra un protocolo para caracterizar las propiedades mecánicas de las células vivas por medio de microindentación utilizando un Microscopio de Fuerza Atómica (AFM).

Medición de las propiedades mecánicas de las células vivas mediante microscopía de fuerza atómica

Se desarrolló un novedoso protocolo de imagen utilizando un actuador mecánico accionado por motor personalizado para permitir la medición de las respuestas en tiempo real a la tensión mecánica en células vivas. Relevante para la mecanobiología, el sistema puede aplicar deformaciones de hasta el 20% al tiempo que permite obtener imágenes casi en tiempo real con microscopía confocal o de fuerza atómica.

Imágenes de células vivas durante el estiramiento mecánico

Aquí describimos los métodos para evaluar la respuesta celular al estímulo mecánico agudo. En el análisis de microscopía, examinamos localización de biosensores marcada con fluorescencia Tras estimulación breve con esquileo del flujo. También probamos la activación de diversas proteínas de interés en respuesta a la estimulación mecánica aguda bioquímicamente.

Evaluación de Dictyostelium discoideum respuesta a estimulación mecánica aguda

Nuevas herramientas para la investigación de la mecanobiología se necesitan entender cómo mecánico estrés activa vías bioquímicas y produce respuestas biológicas. Aquí, nos muestra un nuevo método de estimulación mecánica selectiva de animales inmovilizados con una trampa de microfluidos que permite proyección de imagen de alta resolución de las respuestas celulares.

Usando un dispositivo de microfluidos para la estimulación mecánica y alta resolución de imagen de C. elegans

Presentamos un protocolo para funcionalizar los voladizos del microscopio de fuerza atómica (AFM) con una sola célula T y partícula de cuentas para estudios inmunológicos. Se muestran los procedimientos para sondear la unión de células T de un solo par por AFM y para monitorear la respuesta celular en tiempo real de los macrófagos a una sola partícula sólida por AFM con imágenes de fluorescencia.

Funcionalización de voladizos de microscopio de fuerza atómica con células de una t o de una sola partícula para espectroscopia de fuerza de una sola célula inmunológica

Las fuerzas mecánicas son importantes para controlar la migración celular. Este protocolo demuestra el uso de hidrogeles elásticos que se pueden deformar utilizando una micropipeta de vidrio y un micromanipulador para estimular las células con un gradiente de rigidez local para provocar cambios en la estructura celular y la migración.

Ensayo Desafiador durotaxis de una sola célula para evaluar el control mecánico del movimiento celular y los eventos de señalización relacionados

Aquí se presenta el protocolo de la técnica Conpokal, que combina la microscopía de fuerza confocal y atómica en una sola plataforma de instrumento. Conpokal proporciona la misma célula, misma región, cerca de imágenes confocales simultáneas y caracterización mecánica de muestras biológicas vivas.

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Aquí, presentamos un protocolo para investigar las propiedades mecánicas intracelulares de células embrionarias aisladas de pez cebra en confinamiento tridimensional con medición directa de la fuerza mediante una trampa óptica.

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Aprende a estudiar la respuesta celular a la estimulación mecánica utilizando microscopía óptica integrada con fuerza atómica en células vivas. Este método permite observar en tiempo real la reorganización del citoesqueleto de actina.

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