30 de enero de 2011
El ensayo describe un método rápido para medir la formación de biopelículas a principios de bacterias y hongos. Este método utiliza una placa de microtitulación como sustrato para la formación de biopelículas microbianas, y el biofilm se visualiza utilizando la cepa de cristal violeta. El ensayo ofrece ya sea un ensayo cualitativo o cuantitativo de la formación de biofilm temprano.
El objetivo general de este procedimiento es establecer y estudiar biopelículas en una placa de microtitulación. Esto se logra primero agregando cultivo bacteriano a una placa de 96 pocillos. A continuación, el cultivo se incuba a la temperatura y tiempo adecuados, dependiendo del microbio, para teñir la biopelícula.
Se añade violeta de cristal a cada pocillo con bacterias, y luego se lavan las bacterias. Finalmente, se fotografían los pocillos y se cuantifican las bacterias. En última instancia, se pueden obtener resultados que muestran la acumulación y formación de biopelículas a lo largo del tiempo mediante la medición del violeta de cristal.
La principal ventaja de este método es que permite a los investigadores evaluar rápidamente la formación de biopelículas en organismos bacterianos y fúngicos. También puede configurarse para realizar cribados genéticos de alto rendimiento o para identificar compuestos terapéuticos novedosos que inhiban la formación de biopelículas. Prepare un cultivo nocturno de cinco mililitros de la cepa silvestre de Pseudomonas, Aerogen o de una cepa mutante.
En medio LB, diluya 10 microlitros de cultivo en un mililitro de medio mínimo M 63 fresco, suplementado con magnesio, sulfato, glucosa y ácidos cassino. A continuación, usando una pipeta, transfiera 100 microlitros del cultivo diluido a pozos separados de una placa redonda de fondo de 96 pozos. Incube la placa a 37 grados Celsius durante cuatro a 24 horas para permitir el crecimiento de biopelículas.
Una vez que se hayan formado los biofilms, retire la placa del incubador y deseche los sobrenadantes del cultivo invirtiendo la placa y agitando para eliminar el líquido. Luego sumerja suavemente la placa en un recipiente pequeño con agua para eliminar cualquier célula no unida o componentes del medio que puedan causar tinción de fondo. Agite para eliminar el agua, seque la placa con un paño absorbente y repita el lavado.
Una vez que la placa esté limpia, agregue 125 microlitros por pocillo una solución de violeta de cristal al 0,1 %. Para teñir las células, incube la placa a temperatura ambiente durante 10 a 15 minutos.
Luego, lave la placa tres o cuatro veces como se demostró anteriormente. Secue vigorosamente la placa sobre una pila de toallas de papel para eliminar el exceso de líquido después del último lavado, coloque la placa boca abajo y déjela secar en esa posición durante algunas horas. Una vez que la placa esté seca, se pueden tomar fotografías de los pocillos con una cámara digital para evaluar la calidad de los biofilms.
Como se muestra aquí, las bacterias móviles como Pseudomonas aerogen a la izquierda y Pseudomonas fluorescence a la derecha tienden a formar biopelículas en la ubicación de la interfase aire-líquido durante el crecimiento de la biopelícula. En contraste, las bacterias Staphylococcus ora, que son no móviles, forman biopelículas en el fondo de los pocillos. Con el fin de cuantificar las biopelículas, primero agregue 125 microlitros de ácido acético al 30% a cada pocillo, incluyendo un pocillo en blanco que contenga solo ácido acético, e incube la placa a temperatura ambiente durante 10 a 15 minutos para permitir la solubilización del violeta de cristal retenido por las biopelículas.
A continuación, transfiera 125 microlitros de tinción solubilizada desde cada pocillo a una nueva placa microtituladora de 96 pocillos con fondo plano. Mediante un lector de placas, cuantifique la absorbancia de cada pocillo a una longitud de onda de 550 nanómetros. La concentración de violeta de cristal en cada pocillo es proporcional al número de células en el biofilm.
Este gráfico muestra una cuantificación de la formación y acumulación de biopelículas por Pseudomonas fluorescence a lo largo del tiempo durante la incubación a 37 grados Celsius. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo realizar un ensayo de biopelícula en placa de 96 pocillos, utilizado junto con otros métodos como la microscopía. Este ensayo puede contribuir significativamente a nuestra comprensión de la formación de biopelículas.
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Este ensayo describe un método rápido para medir la formación temprana de biopelículas en bacterias y hongos utilizando una placa de microtitulación. La biopelícula se visualiza mediante tinción con violeta de cristal, lo que permite un análisis tanto cualitativo como cuantitativo.
El ensayo de formación de biopelículas en placa de microtitulación permite una evaluación rápida y de alto rendimiento del desarrollo temprano de biopelículas, apoyando la validación de dianas en el descubrimiento de agentes antimicrobianos. Al cuantificar la acumulación de biopelícula mediante tinción con violeta de cristal, el método proporciona datos cuantitativos reproducibles que ayudan a reducir los riesgos asociados con candidatos terapéuticos dirigidos a la adhesión microbiana y la persistencia. Este enfoque escalable es aplicable en sistemas bacterianos y fúngicos, facilitando la selección en etapas iniciales de compuestos que modulan la biopelícula.
El ensayo se integra en el continuo de descubrimiento desde la identificación del blanco hasta la optimización del fármaco inicial, particularmente para programas antiinfecciosos dirigidos a la resistencia mediada por biopelículas.