Name: El establecimiento de embriones de ratón con células madre neurales Cultura mediante el ensayo de neuroesfera (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-11T20:10:00.000+00:00
Duration: 11 min 54 s
Description: Aprenda a aislar y expandir células madre neurales de embriones de ratón E14 mediante el ensayo de neuroesfera. Este método permite establecer cultivos viables para investigación en neurociencia y biología del desarrollo.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Este trabajo fue apoyado por fondos de la Fundación Overstreet.

1. Configuración básica antes de proceder a la disección: <ol><li> Volumen apropiado de medio completo NSC se prepara mezclando NeuroCult NSC medio basal y NeuroCult Suplementos NSC proliferación en una proporción de 9:1, respectivamente. </li><li> El medio es calentado en un baño de agua a 37 ° C. </li><li> Frío HEPES buffer medio esencial mínimo (HEM), con alta concentración de antibióticos (10%) se prepara para la disección y el propósito de lavado. Por otra parte, NSC medio basal con la suplementación de los antibióticos también pueden ser utilizados para este propósito. </li><li> 25-30 ml de HEM resfriado que contienen antibióticos se distribuye en tubos de 50 ml estériles para la recolección de los embriones. </li><li> Varias placas de Petri de plástico de 10 cm se necesitan para mantener los embriones y el cerebro durante la disección y también para mantener los tejidos disecados. </li><li> Los instrumentos quirúrgicos, necesarios para la toma de embriones (tijeras grandes, pequeñas tijeras con punta, pinzas grandes, pequeñas pinzas curvas) o para la disección del cerebro embrionario (pequeñas pinzas, pinzas finas curvas, ángulo de 45 ° pinzas finas y pequeñas tijeras) se esterilizan con esterilizador de cuentas de vidrio a 250 ° C o de otros métodos disponibles autoclave. </li><li> Microscopio de disección se limpia con alcohol al 70% y establecer dentro de una campana de flujo laminar o PC2. </li></ol> 2. La recolección E14 cerebro de ratón y Micro Disección: <ol><li> Una vez acoplado del ratón embarazadas, se anestesia el día 14 de gestación de acuerdo a su protocolo institucional de los animales aprobados. </li><li> Dislocación cervical se realiza para asegurarse de que el animal no sufre dolor y la angustia. </li><li> El ratón anestesiado se coloca en la espalda a un pañuelo de papel absorbente, y el abdomen se enjuaga con etanol al 70% para esterilizar la zona. </li><li> La piel sobre el abdomen se sujeta con una pinza grande, y luego la piel y la fascia se corta con unas tijeras grandes para exponer la cavidad abdominal y los cuernos uterinos. </li><li> El útero se eliminan con pequeñas pinzas y tijeras y se transfieren a un tubo que contiene Erlenmeyer de 50 ml HEM frío. </li><li> Los tejidos uterinos son transferidos a la campana y luego se enjuaga una o dos veces con un volumen suficiente de agua dulce fría HEM estéril para eliminar posibles contaminantes como la sangre y el cabello. </li><li> Los tejidos del útero se transfieren a una placa de Petri de 10 cm que contiene HEM frío. </li><li> Los cuernos uterinos se abren usando unas pequeñas pinzas y tijeras curvas y los embriones se transfieren a un plato de 10cm nueva, que contiene HEM frío. </li><li> Las cabezas de los embriones están separados a nivel de la médula espinal cervical y trasladado a otra placa de Petri que contiene HEM frío. </li><li> La placa de Petri se transfiere en un microscopio de disección para extraer el cerebro del cráneo. </li><li> Los jefes se llevan a cabo con unas pinzas finas curvas de la parte caudal fin de la cara dorsal de la cabeza estén mirando hacia arriba. Utilizando micro-tijeras, en primer lugar un corte horizontal se realiza por encima de los ojos y luego continuó en la línea media de la frente hacia la parte posterior de la cabeza. Asegúrese de cortar la piel y el cráneo y no dañar el cerebro subyacente. </li><li> El cerebro es extraído del cráneo presionando los bordes de la sección de corte en un movimiento hacia atrás usando las pinzas curvas. Este procedimiento se continúa hasta que todos los cerebros se retiran de los cráneos. </li><li> El cerebro se mantiene constante con las pinzas curvas para que el lado dorsal es hacia arriba y luego utilizando micro tijeras se realiza un corte en la corteza de cada hemisferio se extiende desde el bulbo olfatorio a la parte posterior del hemisferio para exponer las eminencias ganglionares. </li><li> Usando las pinzas curvas en una mano y la pinza en ángulo de 45 ° en el otro, las solapas de corte de corteza se extienden y las eminencias ganglionares son diseccionados. </li><li> El tejido disecado se coloca en una placa de Petri estéril de 10 cm, y este procedimiento se repite hasta que todos los cerebros han sido micro-disección. </li><li> Trozos de tejido se recogen con 1 mL de medio NSC en una punta de pipeta ml y se transfiere a un tubo de centrífuga de 15 ml. </li><li> El tejido se disocia completamente pero con suavidad al presionar la punta de la pipeta a la parte inferior del tubo y pipetear la suspensión arriba y abajo. De esta manera los grupos se dividen en células individuales. Pipeteo se lleva a cabo 3-4 veces por lo que una suspensión lechosa como se consigue. Luego, la suspensión se deja reposar durante 1-2 minutos, así como grupos no disociada precipitados. </li><li> Casi toda la suspensión celular se transfirió a otro tubo y luego otro de 1 ml de medio NSC se añade a los agregados restantes y disociado a la celda individual como se describe. </li><li> El contenido de los tubos se agrupan y se centrifuga durante 5 minutos a temperatura ambiente, a 700rpm (110g). </li><li> El sobrenadante se aspira a correr por la actual pastilla, y las células se resuspenden en 1 ml de medio completo NSC. </li><li> El medio es ligeramente pipeta arriba y abajo paratener una suspensión homogénea de células individuales. </li><li> 10 l de la suspensión celular se mezcla con 90 l de azul tripán para llevar a cabo un recuento de células. </li><li> Finalmente, las células son colocadas en la densidad de 2x10 5 células / ml en medio completo suplementado con NSC 20ng / ml de factor de crecimiento epidérmico (EGF). 5 ml de medio se utiliza para la T25, T75 de 20 ml y 40 ml para T175 frascos. </li><li> Neuroesferas se forman en 5-7 días cuando se incuba a 37 ° C en una incubadora humidificada con 5% de CO 2. En 6-7 días, las esferas deben medir entre 150-200 micras y estará listo para la subcultura (pasaje). </li></ol> 3. Pases y Ampliación de NSCs embrionarias: <ol><li> Cuando las neuroesferas están listos para la subcultura (150-200 micras de diámetro), el medio de esferas de suspensión se retira de los frascos, colocado en un tubo estéril del tamaño adecuado del cultivo de tejidos, y se centrifuga a 700 rpm (110 g) durante 5 minutos a a temperatura ambiente. </li><li> El sobrenadante se descarta y las esferas se resuspenden en 1 ml de 0,05% de tripsina-EDTA. </li><li> La suspensión celular se incuba en un baño de agua a 37 ° C durante 2-3 minutos, luego un volumen igual de inhibidor de tripsina de soja se utiliza para detener la actividad de la tripsina. </li><li> La suspensión celular es una pipeta suavemente hacia arriba y hacia abajo para asegurarse de que la tripsina se ha eliminado por completo. </li><li> La suspensión celular se centrifuga a 700 rpm (110 g) durante 5 min. Luego, se retira el sobrenadante y las células se resuspenden en 1 ml de medio completo NSC. </li><li> 10 l de la suspensión celular se mezcla con 90 l de azul tripán para llevar a cabo un recuento de células. </li><li> Las células se sembraron a una concentración de 5x10 4 células / ml en medio completo suplementado con NSC 20ng / mL de EGF en un frasco de cultivo de tejido del tamaño adecuado. 5 ml de medio se utiliza para la T25, T75 de 20 ml y 40 ml para T175 frascos. </li><li> Neuroesferas secundaria se forman en 5-7 días cuando se incuba a 37 ° C en una incubadora humidificada con 5% de CO 2. </li></ol> 4. Los resultados representativos: En primaria embrionarias cultura NSC, la mayoría de las células se convertirá en hipertrófica y se unen a los platos de cultivo de tejidos en placas. Mientras que la mayoría de las células mueren o se diferencian, después de 2-3 días, las células proliferantes que pequeños grupos de células que se desprenden del sustrato (Figura 1). Formación de grandes agregados esferoidales en las primeras 48 horas de la cultura no debe ser confundido con esferas primarias. La formación de agregados depende principalmente de la cantidad de escombros y no disociada grupos de tejidos en la cultura. Neuroesferas verdadera fase son brillantes y más esférico a medida que aumenta el tamaño (Figura 2). Microspikes pequeña aparece en la superficie exterior de las esferas viable y saludable (Figura 3). Después de 5-7 días, las esferas deben ser redondas, pero no compactada, y debe medir entre 150 y 200 micras de diámetro. Si neuroesferas se les permite crecer demasiado grande (después de 90-10 días de cultivo), que podrían formar agregados o ser de color oscuro debido a la muerte celular en el centro de las esferas (ver video). Neuroesferas grandes con el tiempo podría empezar a diferenciar in situ (fijación al sustrato y la migración hacia la periferia). También es difícil disociar neuroesferas grandes y subcultura de ellos. <img src="/files/ftp_upload/2457/2457fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Primaria E14 cultura NSC 3 días después de la siembra. Las flechas indican los grupos de la proliferación de comités directivos. Original de la ampliación; 20x <img src="/files/ftp_upload/2457/2457fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. Primaria E14 cultura NSC siete días después de la siembra. Original de la ampliación; 10 veces <img src="/files/ftp_upload/2457/2457fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Paso un E14 neuroesferas cinco días después de la siembra. Tenga en cuenta los picos de micro-(flechas) en la periferia de las esferas. Original de ampliación; 20x

<ol><li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+neurons+and+astrocytes+from+isolated+cells+of+the+adult+mammalian+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system.</a> Science. 255, 1707-1710 (1992).</li>
<li>Morshead, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cells+in+the+adult+mammalian+forebrain%3A+a+relatively+quiescent+subpopulation+of+subependymal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Neural stem cells in the adult mammalian forebrain: a relatively quiescent subpopulation of subependymal cells.</a> Neuron. 13, 1071-1082 (1994).</li>
<li>Craig, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+growth+factor+expansion+of+endogenous+subependymal+neural+precursor+cell+populations+in+the+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">In vivo growth factor expansion of endogenous subependymal neural precursor cell populations in the adult mouse brain.</a> J Neurosci. 16, 2649-2658 (1996).</li>
<li>Golmohammadi, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+analysis+of+the+frequency+and+distribution+of+stem+and+progenitor+cells+in+the+adult+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Comparative analysis of the frequency and distribution of stem and progenitor cells in the adult mouse brain.</a> Stem Cells. 26, 979-987 (2008).</li>
<li>Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., BA, R. eynolds <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+Expansion+of+the+Adult+Mouse+Neural+Stem+Cells+Using+the+Neurosphere+Assay%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay.</a> J Vis Exp. , (2010).</li>
<li>Reynolds, B. A., Rietze, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+stem+cells+and+neurospheres--re-evaluating+the+relationship%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Neural stem cells and neurospheres--re-evaluating the relationship.</a> Nat Methods. 2, 333-336 (2005).</li>
<li>Louis, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enumeration+of+neural+stem+and+progenitor+cells+in+the+neural+colony-forming+cell+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Enumeration of neural stem and progenitor cells in the neural colony-forming cell assay.</a> Stem Cells. 26, 988-996 (2008).</li>
</ol>

El ensayo neuroesfera es el método de elección para el aislamiento y la expansión de las células madre neurales 1-5 debido a su sencillez y reproducibilidad. Este ensayo es una herramienta invaluable para generación a gran escala de células precursoras indiferenciadas del SNC, que podrían ser utilizados para los estudios in vitro e in vivo. Cabe destacar que neuroesferas podrían ser generados por la bona fide las células madre neuronales y progenitores más restringido. Por lo tanto,...

* Para hacer HEM, mezcla 110L paquete de MEM and160ml de HEPES 1M y obtener un volumen de 8,75 L con agua destilada. Ajuste el pH final de 7,4 y almacenar a 4 ° C.

el establecimiento de embriones de ratón con células madre neurales cultura mediante el ensayo de neuroesfera

Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay

En los mamíferos, las células madre actúa como una fuente de células indiferenciadas para mantener génesis y renovación celular en diferentes tejidos y órganos durante el ciclo de vida del animal. Que potencialmente pueden reemplazar las células que se pierden en el proceso de envejecimiento o en el proceso de lesiones y enfermedades. La existencia de células madre neurales (NSC) fue descrita por primera vez por Reynolds y Weiss (1992) en los mamíferos adultos del sistema nervioso central (SNC) utilizando un nuevo sistema de suero libre de la cultura, el ensayo neuroesfera (NSA). El uso de este ensayo, también es posible aislar y expandir NSCs de diferentes regiones del sistema nervioso central embrionario. Estos in vitro NSCs ampliado son multipotentes y pueden dar lugar a los tres principales tipos de células del sistema nervioso central. Mientras que la NSA parece relativamente simple de realizar, la atención a los procedimientos demostrado aquí se requiere a fin de lograr resultados confiables y consistentes. Este video demuestra prácticamente la NSA para generar y ampliar NSCs a partir del día 14 embrionario del ratón tejido cerebral y ofrece detalles técnicos por lo que uno puede lograr culturas neuroesfera reproducible. El procedimiento incluye la recolección de embriones de ratón E14, microdisección del cerebro para recoger las eminencias ganglionares, la disociación de los tejidos recolectados en el medio de NSC para obtener una suspensión de células individuales, y, finalmente, placas células en cultivo NSA. Después de 5-7 días en la cultura, las neuroesferas primarios resultantes se pasan a ampliar aún más el número de la NSCs para futuros experimentos.

Este protocolo de vídeo se muestra la aplicación de la prueba neuroesfera para el aislamiento y la expansión de las células madre neurales de las eminencias ganglionares del día embrionario 14 de cerebro de ratón.

El establecimiento de embriones de ratón con células madre neurales Cultura mediante el ensayo de neuroesfera

En los mamíferos, las células madre actúan como una fuente de células indiferenciadas para mantener la génesis y la renovación celular en diferentes tejidos y órganos durante la vida...

El objetivo de este protocolo en video es aislar y expandir células madre neurales del cerebro de ratón embrionario utilizando el ensayo de neuroesferas. El procedimiento incluye la obtención de embriones de ratón E14, seguido de la microdisección cerebral para extraer las eminencias ganglionares, la disociación del tejido recolectado para obtener una suspensión de células individuales y, finalmente, el cultivo de las células en forma de neuroesferas. Hola, soy Hassan Ali del laboratorio del Dr. Brent Frennels en el Instituto del Cerebro Mite de la Universidad de Florida.Hoy voy a mostrarles cómo establecer un cultivo de neuroesferas a partir del cerebro de ratón embrionario utilizando el ensayo de neuroesferas. Utilizamos habitualmente este ensayo en nuestro laboratorio para aislar y expandir células madre neurales. Bien, comencemos.Anestesiar un ratón hembra preñado en el momento adecuado. En el día 14 de gestación, realizar una dislocación cervical y lavar el abdomen con etanol al 70 %. Agarrar la piel de la zona abdominal con pinzas grandes y luego cortar la piel y la fascia subyacente con tijeras grandes.Para exponer la cavidad abdominal y los cuernos uterinos, retire los cuernos uterinos que contienen los embriones y transfiéralos a un tubo cónico de 50 ml que contenga him frío. Después de transferir los tejidos uterinos a la cabina de flujo laminar clase II, retire el him del tubo de 50 ml y enjuague los tejidos con un volumen suficiente de him frío fresco para eliminar contaminantes como sangre y pelo; realice de dos a tres lavados de esta manera. Transfiera los tejidos uterinos a una placa de Petri de 10 centímetros que contenga him frío.Abrir los cuernos uterinos con pinzas curvas pequeñas y tijeras, y transferir los embriones a un nuevo recipiente que contenga hem frío. Repetir este procedimiento hasta que se hayan recolectado todos los embriones. A continuación, colocar los embriones bajo el microscopio estereoscópico.Separar las cabezas de los embriones a nivel de la médula espinal cervical y transferirlas a otra placa de Petri que contenga hem frío. Sostener la cabeza con pinzas curvas finas utilizando tijeras microquirúrgicas. Primero, realizar un corte horizontal por encima de la nariz y luego continuar cortando en la línea media desde la frente hacia la parte posterior de la cabeza.Asegúrese de cortar a través de la piel y el cráneo sin dañar el cerebro subyacente. Retire el cerebro del cráneo empujando los bordes de la sección cortada en movimiento hacia atrás utilizando la pinza curva. Continúe este procedimiento hasta que todos los cerebros hayan sido extraídos de los cráneos.Sujete el cerebro firmemente utilizando la pinza curva de manera que el lado dorsal quede orientado hacia arriba, y luego, con tijeras microquirúrgicas, corte a través de la corteza de cada hemisferio desde los bulbos olfatorios hasta la parte posterior del hemisferio. Para exponer las eminencias ganglionares, manteniendo el cerebro en su lugar, disecte toda la eminencia ganglionar con pinzas en ángulo de 45 grados y transfiérala a otra placa de Petri. La eminencia ganglionar se muestra claramente aquí con sus partes medial y lateral.Alternativamente, puede diseccionar las eminencias ganglionares eliminando los tejidos circundantes utilizando fórceps finos. También puede cortar toda la eminencia en una mitad medial y otra lateral, si está interesado en cultivar células de cualquiera de estas regiones.Repita este procedimiento hasta que todos los cerebros hayan sido microdiseccionados. Utilice un mililitro de medio de células madre neural para recoger los fragmentos de tejido y transfiéralos a un tubo cónico de 15 mililitros. Deje que los agregados de tejido sedimenten en el tubo de 15 mililitros para no dejar ningún tejido atrás.Retire algo del medio sobrenadante y lave la base de la placa de Petri para transferir cualquier tejido adicional al tubo de 15 ml. Coloque la punta de la pipeta contra el fondo del tubo. Pipetee la suspensión hacia arriba y hacia abajo de tres a cuatro veces para desagregar el tejido y obtener una suspensión de células individuales.Luego, deje reposar la suspensión durante un minuto para que los agregados no asociados sedimenten; transfiera casi toda la suspensión celular a otro tubo de 15 ml. A continuación, agregue un mililitro de medio de células madre neurales a los agregados restantes y disocie estos hasta obtener células individuales. Aspire el contenido de los tubos.Luego, centrifugue la suspensión a 700 RPM o 110 G durante cinco minutos. Retire el sobrenadante y resuspenda las células en un mililitro de medio completo para células madre neurales. Tome 10 microlitros de la suspensión celular y mezcle bien con 90 microlitros de azul de trian. Luego, tome 10 microlitros de esta suspensión y transfiéralos a un hemocitómetro. Realice un recuento celular. Transfiera un total de 20 ml de medio completo para células madre neurales a un tubo cónico de 50 ml para sembrar un frasco T 80.Luego, mezcle la suspensión celular y agregue una cantidad adecuada de células para obtener una densidad total de 200.000 células por mililitro o 4 millones de células por matraz T 80. Añada EGF a una concentración final de 20 nanogramos por mililitro. Mezcle las células que están en medio completo para células madre neurales con el factor de crecimiento y transfiera la suspensión celular a matraces T 80.Etiquete el matraz y observe las células al microscopio para asegurarse de que tiene una suspensión de células individuales sin agregados de tejido. Transfiera el matraz a un incubador a 37 grados Celsius con 5 %CO₂ durante cinco a siete días. Después de cinco a siete días, evalúe el matraz al microscopio.Para este momento, ya se habrán formado neuroesferas y deberían tener entre 150 y 200 micrones de diámetro, por lo que están listas para ser subcultivadas. Recolecte el contenido del frasco en un tubo estéril de cultivo de tejidos de tamaño adecuado, centrifugue el tubo y deseche el sobrenadante. Resuspenda las esferas en un mililitro medio de tripsina precalentada y coloque el tubo en un baño de agua a 37 grados durante dos minutos.Luego, agregue un volumen igual de inhibidor de tripsina y mezcle bien pero suavemente para detener la actividad de la tripsina. Vuelva a centrifugar y retire el sobrenadante. A continuación, re suspenda las células en un mililitro de medio completo para células madre neurales y realice un conteo celular como se mencionó anteriormente. Con el fin de sembrar un frasco T175, transfiera un total de 40 ml de medio completo para células madre neurales a un tubo cónico de 50 ml.Luego, mezcle las células y agregue una cantidad adecuada de células para obtener una densidad total de 50.000 células por M o 2 millones de células por matraz T175. A continuación, agregue EGF a una concentración final de 20 nanogramos por mililitro. Mezcle las células que se encuentran en medio completo para células madre neurales con el factor de crecimiento y transfiera la suspensión celular a un matraz T175.Etiquete el matraz y transfiéralo a un incubador durante cinco a siete días. Este es un ejemplo de cultivo primario de células madre neurales E 14. Tres días después de la siembra, las flechas muestran agrupaciones de células madre neurales en proliferación.También puede observar células que están adheridas al sustrato y que se han diferenciado. Este es un ejemplo de un cultivo primario de células madre neurales E 14 siete días después del sembrado. Como puede ver, hay esferas de diversos tamaños.También hay células que están diferenciadas. La cantidad de restos celulares es mucho menor que en los cultivos de neuroesferas primarias de adultos. Además, las esferas no están compactas y presentan microespículas en la periferia, lo que indica que las esferas son saludables y viables.La esfera no debe permitirse que crezca demasiado, ya que podría oscurecerse debido a la muerte celular en el centro. Las esferas grandes podrían también adherirse al sustrato y diferenciarse. Este es un ejemplo de neuroesferas del paso uno de E 14, cinco días después del siembra.Aquí nuevamente, puede observar las microespículas en la periferia de las esferas. Acabamos de mostrarle cómo cultivar neuroesferas a partir de eminencias ganglionares de ratón E14 siguiendo los mismos procedimientos descritos aquí. También puede cultivar neuroesferas a partir de otras regiones del cerebro, como la corteza y el mesencéfalo.Gracias por ver el video y mucha suerte con sus cultivos de neuroesferas.

establishing-embryonic-mouse-neural-stem-cell-culture-using

Research

Investigación

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociencia

Este protocolo de vídeo se muestra el método de ensayo neuroesfera para generar y expandir las células madre neurales de la región periventricular del ratón adulto, y proporciona una visión técnica para asegurarse de que uno puede lograr culturas neuroesfera reproducible.

El aislamiento y la expansión de las células troncales nerviosas de ratones adultos mediante el ensayo de neuroesfera

Este protocolo de vídeo se muestra cómo se discrimina y enumerar bona fide las células madre neurales en una población mixta de células precursoras neurales con el neuronales formadoras de colonias de células de ensayo.

Neural formadoras de colonias ensayo de células: un ensayo para discriminar Bona Fide células troncales nerviosas de células progenitoras neurales

Este protocolo de vídeo demuestra un método novedoso para la generación y la posterior purificación de las células progenitoras neuronales de una fuente renovable de células madre neurales (NSC) en base a su físico (granularidad tamaño e interna) y las propiedades fluorescentes utilizando la tecnología de citometría de flujo.

El ensayo neuroblasto: un ensayo para la generación y enriquecimiento de las células progenitoras neuronales de la diferenciación de la progenie de células madre neurales Usando citometría de flujo

El video muestra el proceso de aislamiento y cultivo de células madre neurales de la zona subcallosa del cerebro del ratón. Implica la disección de tejidos, la disociación enzimática y el cultivo con factores de diferenciación para que se conviertan en células neuronales maduras.

Aislamiento y cultivo de células madre neurales adultas de la zona subcallosa del ratón

Este video muestra un protocolo detallado para aislar las paredes del ventrículo lateral del cerebro de ratón adulto y realizar la disociación enzimática del tejido para obtener células individuales. A continuación, estas células se someten a condiciones de cultivo específicas que potencian selectivamente la proliferación de células madre neurales y promueven su diferenciación en cocultivos de oligodendrocitos y astrocitos.

Obtención de un cultivo mixto de oligodendrocitos y astrocitos a partir de células madre neurales de ratón adulto

Aquí se describe un protocolo detallado para la generación simultánea de cultivos de células precursoras neurales, ya sea como monocapas o neuroesferas adherentes, de la zona subventricular y giro dentado de ratones adultos individuales.

Un ratón, dos culturas: Aislamiento y cultivo de adultos Neural las células madre de las dos zonas neurogénicos de ratones individuales

Las células madre neurales (NSC) se refieren a células que pueden auto-renovarse y diferenciarse en los tres linajes neuronales. A continuación, se describe un protocolo para determinar la frecuencia NSC en una población celular dada usando neurosphere formación y diferenciación en condiciones clonales.

Enumeración de células madre neurales Usando ensayos clonales

Aquí, demostramos el funcionamiento de un modelo de lesión mínima de la médula espinal de un ratón adulto que repuestos el nicho central canal vivienda endógeno las células madre neurales (NSC). Mostramos cómo se puede utilizar el ensayo desarrolló para cuantificar la activación y migración de NSCs definitivos y primitivo después de lesión.

Un ensayo desarrolló para evaluar la activación de células neuronales endógenos en un modelo murino de lesión medular mínima

Aquí, presentamos una nueva técnica microquirúrgica para el aislamiento de las células madre neurales de la eminencia gangliónica E13 ratón embrión.

Aislamiento y cultivo de las células madre neurales embrionarias de ratón

En este artículo, describimos, en detalle, un protocolo para la generación de cultivos de la neurosfera a partir de células madre neurales de ratón postnatal derivadas de los principales nichos neurogénicos del ratón. Las neuroesferas se utilizan para identificar las células madre neurales del tejido cerebral permitiendo la estimación de los números de células precursoras. Además, estas estructuras 3D se pueden placar en condiciones diferenciativas, dando lugar a neuronas, oligodendrocitos y...

Aislamiento y expansión de las neuroesferas de los nichos neurogénicos de ratón (P1-3)

Aquí, describimos un sistema de nucleofección diseñado para mejorar la eficiencia de la entrega de genes en células madre neurales expandidas (NSC) aisladas de la zona subventricular murina adulta. Los hallazgos demuestran que este método mejora significativamente la perturbación génica en las NSC, superando la efectividad de los protocolos tradicionales de transfección y mejorando la tasa de supervivencia celular.

Aislamiento, expansión y nucleofección de células madre neurales de la zona subventricular murina adulta

Aprenda a aislar y expandir células madre neurales de embriones de ratón E14 mediante el ensayo de neuroesfera. Este método permite establecer cultivos viables para investigación en neurociencia y biología del desarrollo.

El establecimiento de embriones de ratón con células madre neurales Cultura mediante el ensayo de neuroesfera

Explorar más videos