30 de julio de 2007
En este informe, proponemos una nueva aplicación de la luz de curado de resinas dentales base de montaje de los electrodos o sondas de microdiálisis en experimentos crónicos. Este material permite contacto directo con el cráneo.
En experimentos crónicos de electrofisiología o microdiálisis, se ha utilizado ampliamente la resina dental autopolimerizable como base de montaje para electrodos o sondas de microdiálisis. Dado que estos acrílicos no se adhieren a la superficie ósea, se han empleado tornillos como anclajes. Sin embargo, en animales pequeños experimentales, como FIEs o ratones, el cráneo es muy frágil y no puede sostener con éxito los anclajes.
A veces, estos tornillos de tobillo causan infección e inflamación del tejido. En este informe, proponemos una nueva aplicación de la resina dental de curado inmediato como base elevada para su montaje. Este material permite la unión directa al cráneo.
Por lo tanto, no se requieren tornillos de anclaje y el campo quirúrgico puede reducirse considerablemente. El peso total de una sonda, una cánula guía, un gabinete y una base de montaje era inferior a un gramo. Experiencias previas muestran que el efecto de unión se mantiene durante más de dos meses.
Esta técnica también puede utilizarse con otros animales de experimentación como ratones, peces, etc. Se grabaron en video dos implementaciones en dos barras. En esta demostración en video, se seleccionaron y utilizaron las mejores tomas en cada paso del protocolo.
Estos están separados estereotácticamente y la cámara de recuperación controlada por verano. Estos son cien instrumentos para cirugía. PR principal a la izquierda y microproblema.
Sus accesorios a la derecha. Si no hay disponible un programa principal, se puede usar en su lugar una espátula micro. Este es un conjunto de resina dental de curado derecho.
El cebador AP y un agente de unión se guardaron en estos frascos de medicamento. Elegimos este producto porque es un sistema autoreactivo y de curado dual. Si elige alternativas, modifique el procedimiento detallado según las instrucciones del producto; el instrumento con forma de pistola en el lado izquierdo es una unidad de curado con luz visible.
Puede ensamblar una unidad de luz LED artesanal como se muestra a la derecha. Consulte la documentación para obtener más detalles. A continuación, se indujo anestesia quirúrgica, se eliminó más tejido de la zona quirúrgica y se fijó la cabeza al marco estereotáxico.
Antes de la inserción de las EVA, se aplicó DI en las puntas de las EVA para prevenir el dolor. Se fijó la cabeza del animal al marco y se ajustó adecuadamente el ángulo de la cabeza. Se desinfectó el área quirúrgica con yodo, y se colocó una micropipeta de vidrio en el portaelectrodos.
Esta micropipeta se utilizó para crear un punto de referencia en un experimento defectuoso. El punto Lambda Y se usó como punto de referencia. Se realizó una pequeña incisión en la piel para exponer el punto de referencia.
Marque el lugar con una micropipeta de vidrio llenada con un colorante. Corte la piel para exponer la superficie craneal y limpie la superficie del hueso con un hisopo de algodón para eliminar sangre y humedad. Se requiere una superficie verde y seca para lograr una unión resistente.
Después de marcar la posición objetivo, se realizó una craneotomía pequeña con fórceps fino. También se pueden utilizar microfórceps o fórceps para hueso para realizar la craneotomía. Luego, se retiró el microtubo grueso de un soporte y se fijó una cánula o electrodo al soporte.
La punta de la cánula guía se alineó con el punto de referencia y luego se movió cuidadosamente hasta el punto objetivo. Se realizó la incisión más pequeña posible en la sustancia gris mediante una inyección con aguja de calibre 30. La cánula guía se desplazó a la posición objetivo.
La segunda evaluación de la superficie ósea fue Supp aplicada. Este cebador consiste en los componentes rígidos A y B. Se colocó una gota de cada componente rígido sobre un recipiente y se mezclaron con un pincel. Se aplicó el cebador mediante hisopado en la zona de contacto. La superficie de la cánula guía también se hisopó.
Se proporcionó un suave flujo de aire para extender y secar el cebador, se cambió el pincel y se aplicó un agente de unión en la zona. Este agente de unión es sensible a la luz, por lo que debe cubrirse durante el procedimiento. También se pasó un hisopo por la superficie de la cánula guía.
Se proporcionó aire suave y se eliminó la luz azul visible para acelerar la reacción química del agente de unión. Se debe utilizar semilla transparente de Coral Naranja para proteger los ojos del operador. No se deben dar a los ojos de los animales una corrección directa si es necesario.
Se utiliza un orificio de aluminio para proteger los ojos de los animales. Se aplicó una pequeña cantidad de resina compuesta sobre la superficie craneal y la cánula guía mediante un tapón liso. Luego, se eliminó la luz azul visible para curar la resina durante el montaje incremental.
Se aplicó un agente de unión antes de cada montaje. El área quirúrgica se mantuvo en posición correcta continuamente debido a la grabación en video. Sin embargo, es mejor evitar una fijación fuerte porque podría acortar el período de tiempo en el que los materiales son capaces.
El montaje incremental y la corrección son recomendables para asegurar la reacción completa del régimen. Puede reformar la forma hasta que sea visible. Se administraron antibióticos o se aplicó menta en el área quirúrgica para prevenir infecciones.
Ahora que la cirugía ha finalizado, el adaptador estéreo se soltó del portaelectrodos. Se retiró el adaptador estéreo. En su lugar, se insertó una varilla DAMing y se liberó al animal del marco estereotáxico.
Finalmente, el animal fue trasladado a la cámara de control de verano para la recuperación de la anestesia. Fue el día posterior a la cirugía. En comparación con la aplicación de la técnica convencional de curado automático, la técnica introducida presenta varias ventajas importantes.
Primero, se une directamente al hueso. El acrílico autorretráctil puede fijarse al hueso mediante alambre, pero no se adhiere al hueso. En contraste, el acrílico fotopolimerizable puede unirse directamente al hueso.
Además, se adhiere a algunos materiales, incluyendo plásticos y metales, si se utiliza un imprimador metálico con él. Esta capacidad de unión a materiales variables permite una amplia gama de aplicaciones. En segundo lugar, es fácil de manipular; el tiempo de procesamiento de las resinas convencionales tiene una ventana relativamente corta.
En pocos minutos tiene una alta fluidez y no es fácil de manipular rápidamente. Sin embargo, una vez que comienza la reacción química, esta se acelera por el calor exotérmico. El calor y la resina se endurecen en poco tiempo.
Las ventanas de tiempo de procesamiento para la resina de curado correcto son significativamente más amplias y ajustables. Básicamente, las resinas permanecen constantemente desde el inicio hasta el momento en que están listas. La tercera reacción curada no genera calor.
La reacción de curado de la resina autopolimerizable es exotérmica. Cuando la base de montaje es gruesa, este calor se acumula y causa daño. La reacción del tejido a la resina fotopolimerizable no genera calor y el material es biocompatible.
El costo de los materiales y del equipo especializado, como la unidad de luz, puede ser un problema. En el documento complementario presentamos una unidad de luz LED casera que no tiene un costo elevado. Consulte el documento rápido para obtener más detalles.
Esta técnica es aplicable a la implementación de electrodos o microsondas en otros animales experimentales, como peces, ratones, conejos, gatos y monos.
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Este informe presenta una nueva aplicación de resinas dentales fotoactivables para montar de forma segura electrodos o sondas de microdiálisis en experimentos crónicos. El material propuesto permite la unión directa al cráneo, abordando las limitaciones de los métodos tradicionales.
La unión directa de electrodos o sondas de microdiálisis mediante resina adhesiva dental curada con luz aborda un desafío crítico en estudios neurofisiológicos crónicos que involucran modelos animales pequeños con cráneos frágiles. Este enfoque elimina la necesidad de tornillos de anclaje, reduce la complejidad quirúrgica y minimiza el riesgo de inflamación tisular. El método mejora la continuidad y la fiabilidad experimental en las líneas de evaluación preclínica en neurociencia y dispositivos.
Esta técnica de montaje se integra en el continuo que va desde el descubrimiento temprano hasta la validación preclínica de dispositivos y biomarcadores, particularmente en la investigación de neurociencia y neurofarmacología.