Name: En vivo de imágenes de la translocación de PKC en células Sf9 y en las neuronas sensoriales Aplysia (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-06T11:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 54 s
Description: Aprende a visualizar la translocación de PKC en células Sf9 y neuronas sensoriales de Aplysia mediante microscopía confocal. Este método permite estudiar la dinámica de la señalización celular en tiempo real.

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Este trabajo fue apoyado por los Institutos Canadienses de Investigación en Salud (CIHR) Otorgar a Wayne S. Sossin. Carole A. Farah es el beneficiario de una beca postdoctoral del Fonds de la Recherche en Santé du Québec (FRSQ) y una beca de Conrad Harrington. Los autores desean agradecer a Joanna Bugía, Hastings y Margaret Labban Margaret para recibir ayuda con la filmación del video y la piscina Madeline Richmond para ayudar con la descripción gráfica.

1. Preparación y mantenimiento de cultivos celulares en monocapa Sf9 <ol><li> Sf9 cultivo celular y el mantenimiento se lleva a cabo en una campana de cultivo de tejidos. </li><li> Sf9 células derivan de células de Spodoptera frugiperda ovario (Sf21 células) y se pueden comprar en las células congeladas en la gracia de los medios de Invitrogen. </li><li> Lugar 8 ml de medio de insectos de Grace, complementada (1X), a los cuales el 30% de suero fetal bovino (FBS) se ha añadido en un 75 cm 2 frasco de cultivo celular con el cuello inclinado. </li><li> Descongelar el tubo congelado de células Sf9 rápidamente en un baño de agua 37 ° C moviendo el tubo de ida y vuelta (1-2 minutos). </li><li> La transferencia de células Sf9 a los 75 cm 2 frasco de cultivo celular y la placa de roca suavemente con la mano para distribuir uniformemente las células. </li><li> Incubar 1-2 horas a 27 ° C hasta que las células se han unido. </li><li> Quitar medio viejo y reemplazarlo con 10 ml de medio de insectos freshGrace con FBS al 30%. </li><li> Se incuba a 27 ° C hasta que las células son confluentes. </li><li> Para mantener cultivos en monocapa, eliminar viejo medio del matraz confluente de células Sf9 y añadir 5 ml de medio de insectos de Grace con 10% de SFB. </li><li> Golpee ligeramente en el lado del frasco varias veces para separar las células Sf9. </li><li> Usando una pipeta de 10 ml y pipeta una, una pipeta de los medios arriba y hacia abajo una vez suavemente, pulverización pared frasco mientras pipeteo hacia abajo. Transferencia de las células a un tubo de 15 ml estéril poliestireno. </li><li> Añadir 2 ml de suspensión celular Sf9 a 8 ml de medio de insectos de Grace con FBS al 10% (dilución 1:5 para mantener el crecimiento en fase logarítmica) en los nuevos 75 cm 2 frasco de cultivo celular y la placa de roca suavemente con la mano. </li><li> Se incuba a 27 ° C hasta que las células son confluentes. </li></ol> 2. Expresión de la PKC marcado con fluorescencia en células Sf9 <ol><li> Para vivir de imágenes de experimento, la cultura Sf9 células en 35 mm MatTek cultura del vidrio disheswith inferior una superficie de vidrio de 14 mm y un espesor cubreobjetos de 0,16 a 0,19 mm. </li><li> PKC etiquetados con proteínas fluorescentes se expresan en células Sf9 con Cellfectin transfección II recomendación siguiente reactivo del fabricante con las modificaciones que se detallan a continuación. </li><li> Día 1: Antes de recubrimiento de las células, el tratamiento de cada plato con medio MatTek insectos de Grace con FBS al 10% por lo menos durante 30 minutos. </li><li> Contador de células Sf9 desde el paso 11 (arriba) con un hemocitómetro. </li><li> Placa de 0,05 x 10 6 células de cada cubreobjetos MatTek en un volumen total de 150 mL. Permiten a las células para conectar durante 30 minutos a temperatura ambiente. </li><li> Añadir 2 ml de Grace suplementado con FBS al 10% para cada plato 1 mL a la vez poco a poco para evitar desprendimiento de las células. </li><li> Se incuba a 27 ° C durante la noche. </li><li> A partir de ahora, utilice las recomendaciones del fabricante para la transfección de células Sf9 con el ADN del plásmido. </li><li> Día 2: transfectar células Sf9 con PKC marcado con fluorescencia utilizando Cellfectin reactivo de transfección II. A menudo hemos co-expresados ​​en este sistema PKC etiquetados con aumento de proteína verde fluorescente (EGFP) y monomérico proteína fluorescente roja (mRFP) (los detalles de la construcción del plásmido se han descrito previamente 2,5). Expresión de una proteína fluorescente en un momento en los rendimientos de alrededor del 70-80% que expresan las células 72 horas después de la transfección. Co-expresión de dos proteínas fluorescentes disminuye la eficiencia de transfección de alrededor del 30% co-expresión de las células. Cuando se co-expresando EGFP de etiquetado de la PKC y mRFP etiquetados con PKC, use 2 veces más ADN plásmido para la proteína mRFP-etiquetados para la expresión óptima de proteínas. </li><li> Tocar en vivo de imágenes de 48-72 horas después de la transfección (para la expresión óptima de proteínas, esperar 72 horas). </li></ol> 3. Expresión de la PKC marcado con fluorescencia en las neuronas sensoriales Aplysia <ol><li> Preparación de los cultivos de células neuronales Aplysia ha sido descrito en un artículo de vídeo por Zhao y cuatro colegas. </li><li> PKC etiquetados con proteínas fluorescentes se expresan en las neuronas sensoriales Aplysia mediante el procedimiento de microinyección se detalla a continuación. </li><li> Prepare una solución de reserva del 1% Fast Green (FCF) en agua destilada, se filtra con una jeringa y un filtro de jeringa de 28 mm (0,20 m). Alícuota y almacenar a -20 ° C. </li><li> Microinyección de las neuronas sensoriales se pueden realizar en el día 1 o 2 días después de aislar a las neuronas, pero nos encontramos con que dos días de espera permite que la adherencia celular mejor que el cubreobjetos. </li><li> El día 2, después del aislamiento de las neuronas sensoriales, descongelar una alícuota de Fast Green y el filtro de nuevo con una jeringa y un filtro de jeringa de 28 mm (0,20 m). </li><li> Prepare una solución de ADN plásmido en agua destilada que contiene 0,5% Fast Green. Las concentraciones de ADN del plásmido de hasta 0,4 mg / l se puede utilizar, pero no se recomienda ir por encima de estos valores. </li><li> Filtrar el ADN del plásmido / Fast Green solución con una jeringa de 1 mL y un filtro de jeringa de 4 mm (0,20 m). </li><li> Centrifugar el ADN del plásmido / Fast Green solución a 16.110 xg durante 15 minutos usando un micrófonorocentrifuge. </li><li> Preparar electrodos fuerte para la microinyección de las neuronas con un extractor de microelectrodos (Sutter Flaming / Brown Micropipeta Puller, modelo P-97). El uso de un filamento de caja, tirar de microelectrodos de vidrio con 1 mm de diámetro exterior de 0,75 mm de diámetro interior y 100 mm de longitud con paredes delgadas capilares de vidrio con un filamento en el interior (World Precision Instruments TW100F-4). Para obtener más información acerca de tirar electrodos microinyección por favor refiérase a libros de cocina Sutter electrodo. </li><li> Llene cada electrodo con 2 l de ADN de plásmido / Verde solución rápida utilizando microloader punta de la pipeta (eppendorf CA32950-050). </li><li> La transferencia de la parte inferior de vidrio MatTek plato de cultivo que contienen cultivos Aplysia neuronal a la estación de microinyección. </li><li> La estación de microinyección consiste en lo siguiente: una de fabricación casera etapa de vidrio grande para sostener las placas de cultivo en una mesa de aislamiento de vibración (vibración cinética de estaciones de trabajo de aislamiento), equipo de música de alcance con iluminación halógena externa, un micromanipulador (Sutter Huxley Micromanipulador tipo de pared que permite el posicionamiento gruesas y ultra fino en los tres ejes), el titular de microelectrodos conectados a una bomba neumática (Instrumentos del Mundo de precisión neumática PV820 Pico-bomba). La entrada de la presión de la bomba neumática está conectada a un tanque de nitrógeno comprimido. </li><li> Inserte un microelectrodo en el soporte de microelectrodos. </li><li> Viendo bajo un microscopio estereoscópico, inserte la punta de la micropipeta en el núcleo de la célula. </li><li> Entregar pulsos cortos de presión de nitrógeno (10 a 100 ms de duración, 20 lb / in 2) hasta que el núcleo se convierte de manera uniforme verde. </li><li> Se incuban las células durante 4 horas a temperatura ambiente y mantenga a 4 ° C hasta su uso. Para la translocación de PKC óptima, presentación en vivo de imágenes de experimento 20 a 24 horas post-inyección. </li></ol> 4. Visualización de la translocación de PKC en células Sf9 vida y en las neuronas sensoriales Aplysia <ol><li> Para las imágenes, se utiliza un microscopio confocal Zeiss LSM510 invertido con un Axiovert 200. </li><li> Imagen del protocolo es el mismo para las células Sf9 y de las neuronas sensoriales Aplysia excepción de los siguientes: Sf9 células son imágenes con un objetivo de aceite de inmersión x63 mientras que las neuronas sensoriales Aplysia son imágenes con un objetivo de inmersión en aceite de x40. Sf9 células son expuestas en una cámara de temperatura controlada mantenida a 26-27 º C mientras que las neuronas sensoriales Aplysia son expuestas a temperatura ambiente mantiene alrededor de 18-20 º C. </li><li> Nosotros usamos un 30 mW láser de argón (excitación a 488 nm) con la potencia del láser 50% de la PKC imagen etiquetados con la proteína EGFP y un láser de HeNe (excitación a 543nm) para PKC imagen etiquetados con proteínas mRFP. El argón y láser de HeNe líneas se atenúan y el 4% y el 50% de transmisión de salida, respectivamente, antes de la imagen y el agujero se ajusta a uno. </li><li> Es importante contar con la placa de cultivo estabilizado en el escenario de imágenes y para evitar el movimiento o vibración. </li><li> Retire 1 ml de medio de cultivo en el plato suavemente con una pipeta de 10 mL dejando un volumen total de ml en el plato. </li><li> Tomar fotos en la sección central de las células donde se puede ver el núcleo. </li><li> Establecer una serie de tiempo de 10-20 imágenes confocal de tomar una foto cada 30 segundos. </li><li> Iniciar la serie de tiempo. </li><li> Después de dos fotografías se toman (después del punto de tiempo de 30 segundos), agregar 1 ml de la droga (2X concentración) con suavidad gota a gota en la parte superior de las células con una pipeta P1000. El fármaco se añade de forma continua durante unos 30 segundos. </li><li> Algunos fármacos inducen un desplazamiento rápido que puede ser visible inmediatamente después del tratamiento de drogas siguientes (en el punto de tiempo de 60 segundos), mientras que otras inducen un desplazamiento lento, que está a sólo unos 50-10 óptima del tratamiento (Película 1 y Película 2). </li><li> Si el medicamento tiene que ser lavado, el uso de 2 x 10 ml pipetas para hacer el lavado, pipetear el tampón de lavado suavemente con una pipeta en un lado del plato y la pipeta hasta los medios de comunicación en el otro lado. </li><li> Si el lavado ha sido eficaz y si el efecto de la droga es reversible, PKC vuelve al citosol dentro de 30-60 segundos. </li><li> Guarde la película como un archivo de LSM. </li><li> Uso de imágenes NIH J software para abrir los archivos de LSM y cuantificar las imágenes pre y post tratamiento de drogas. La cuantificación se ha descrito en otra parte 1. </li></ol>

<ol><li>Farah, C. A., Nagakura, I., Weatherill, D., Fan, X. &amp, Sossin, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiological+role+for+phosphatidic+acid+in+the+translocation+of+the+novel+protein+kinase+C+Apl+II+in+Aplysia+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Physiological role for phosphatidic acid in the translocation of the novel protein kinase C Apl II in Aplysia neurons.</a> Mol Cell Biol. 28, 4719-4733 (2008).</li>
<li>Zhao, Y., Leal, K., Abi-Farah, C., Martin, K. C., Sossin, W. S. &amp, Klein, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((M.Isoform+specificity+of+PKC+translocation+in+living+Aplysia+sensory+neurons+and+a+role+for+Ca2%2B-dependent+PKC+APL+I+in+the+induction+of+intermediate-term+facilitation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">M.Isoform specificity of PKC translocation in living Aplysia sensory neurons and a role for Ca2+-dependent PKC APL I in the induction of intermediate-term facilitation.</a> J Neurosci. 26, 8847-8856 (2006).</li>
<li>Farah, C. A., Weatherill, D., Dunn, T. W. &amp, Sossin, W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PKC+differentially+translocates+during+spaced+and+massed+training+in+Aplysia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">PKC differentially translocates during spaced and massed training in Aplysia.</a> J Neurosci. 29, 10281-10286 (2009).</li>
<li>Zhao, Y., Wang, D. O., Martin, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+Aplysia+sensory-motor+neuronal+cell+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparation of Aplysia sensory-motor neuronal cell cultures.</a> J Vis Exp. , (2009).</li>
<li>Manseau, F., Fan, X., Hueftlein, T., Sossin, W. S., Castellucci, V. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ca2%2B-independent+PKC+Apl+II+mediates+the+serotonin+induced+facilitation+at+depressed+synapses+in+Aplysia%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Ca2+-independent PKC Apl II mediates the serotonin induced facilitation at depressed synapses in Aplysia.</a> J. Neuroscience. 21, 1247-1256 (2001).</li>
</ol>

Hemos descrito una técnica de translocación de PKC imagen marcado con fluorescencia en tiempo real en células Sf9 y en las neuronas sensoriales Aplysia. Sf9 proporcionar un sistema simple a la translocación de PKC imagen desde el cultivo y la transfección de ellos es bastante sencillo. Por el contrario, la microinyección de las neuronas sensoriales Aplysia toma algún tiempo para dominar, hasta unos pocos meses. Dificultades relacionadas con esta técnica son la obstrucción de los electrodos. Filtrado de...

<table><tbody><tr><td>Células Sf9 congeladas</td><td>&lt;em&gt;Spodoptera frugiperda&lt;/em&gt; células ováricas</td><td>Invitrogen</td><td>B825-01</td><td></td></tr><tr><td>Gracia&amp;rsquo;Medio para insectos suplementado (1X), líquido</td><td>Reactivo</td><td>GIBCO, por Life Technologies</td><td>11605-094</td><td>Utilizar para cultivar células Sf9</td></tr><tr><td>Corning 75 cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; frasco de cultivo celular con cuello inclinado</td><td>Herramienta</td><td>Corning</td><td>430720</td><td>Utilizar para cultivar células Sf9</td></tr><tr><td>Suero bovino fetal</td><td>Reactivo</td><td>CanSera</td><td>CS-C08-500</td><td>Suplemento Grace&amp;rsquo;s medio con FBS antes de usarlo</td></tr><tr><td>Jeringa</td><td>Herramienta</td><td>BD Biosciences</td><td>309604</td><td>Usar para filtrar la solución de verde rápido</td></tr><tr><td>Jeringa</td><td>Herramienta</td><td>BD Biosciences</td><td>309602</td><td>Usar para filtrar la solución de ADN plasmídico / Azul de metileno</td></tr><tr><td>Filtrar</td><td>Herramienta</td><td>Corning</td><td>431229</td><td>Usar para filtrar la solución de verde rápido</td></tr><tr><td>Filtrar</td><td>Herramienta</td><td>Corning</td><td>431212</td><td>Usar para filtrar la solución de ADN plasmídico / azul de metilo</td></tr><tr><td>Plato de Vidrio con Fondo Transparente</td><td>Herramienta</td><td>MatTek Corp.</td><td>P35G-1.5-14-C</td><td>Utilizar para cultivar células Sf9 antes de la transfección y el análisis por imágenes</td></tr><tr><td>Reactivo Cellfectin II</td><td>Reactivo</td><td>Invitrogen</td><td>10362-100</td><td>Utilizado para expresar PKC marcadas con fluorescencia en células Sf9</td></tr><tr><td>Fast Green FCF</td><td>Reactivo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F-7252</td><td>Utilizar para visualizar la microinyección de solución de ADN plasmidial en &lt;em&gt;Aplysia&lt;/em&gt; neuronas sensoriales</td></tr><tr><td>Capilares de vidrio de pared delgada</td><td>Herramienta</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>TW100F-4</td><td>Utilice para hacer micr&amp;#8211;electrodos para microinyección</td></tr><tr><td>Punta de pipeta Microloader</td><td>Herramienta</td><td>Eppendorf</td><td>CA32950-050</td><td>Autoclavar antes de usar para llenar el micropipeta&amp;#8211;Electrodos para microinyección</td></tr><tr><td>PV820 PicoBomba Neumática </td><td>Herramienta</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>SYS-PV820</td><td>Parte de la estación de microinyección</td></tr><tr><td>Micr&amp;#8211;soporte para electrodo</td><td>Herramienta</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>MPH6S</td><td>Utilice para sostener el micrómetro&amp;#8211;electrodo </td></tr><tr><td>Micromanipulador</td><td>Herramienta</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>MP-85</td><td>Utilice para posicionar el micrómetro&amp;#8211;electrodo en los tres ejes</td></tr></tbody></table>

en vivo de imágenes de la translocación de pkc en células sf9 y en las neuronas sensoriales aplysia

Live-imaging of PKC Translocation in Sf9 Cells and in Aplysia Sensory Neurons

La proteína quinasa C (PKC) son serina treonina cinasas que juegan un papel central en la regulación de una amplia variedad de procesos celulares, tales como el crecimiento celular y el aprendizaje y la memoria. Hay cuatro familias conocidas de las isoformas de PKC en los vertebrados: PKC clásicas (α, βI, βII y γ), el tipo de novela que PKC (ε y η), la novela de tipo II PKC (δ y θ), y PKC atípicas (ζ y ι ). La PKC clásicas son activados por Ca 2 + y diacylclycerol (DAG), mientras que las PKC nuevas son activadas por DAG, pero son Ca 2 +-independiente. Las PKC atípicas son activados por Ca 2 + ni ni DAG. En Aplysia californica, nuestro sistema modelo para estudiar la formación de la memoria, hay tres isoformas específicas del sistema nervioso PKC uno de cada clase principal, a saber, la PKC convencionales APL I, el tipo de novela que PKC Apl II y de la PKC atípicas APL III. PKC son lípido quinasas activadas y por lo tanto la activación de la PKC clásicas y nuevas en respuesta a señales extracelulares con frecuencia se ha correlacionado con translocación de PKC desde el citoplasma a la membrana plasmática. Por lo tanto, la visualización de la translocación de la PKC en tiempo real en células vivas se ha convertido en una herramienta invaluable para dilucidar las vías de transducción de señales que conducen a la activación de la PKC. Por ejemplo, esta técnica ha permitido que nos permite establecer que las diferentes isoformas de PKC trasladar bajo diferentes condiciones de mediar en distintos tipos de plasticidad sináptica y que la serotonina (5-HT) activación de la PKC Apl II requiere la producción de los DAG y ácido fosfatídico (PA) para translocación 01/02. Es importante destacar que la capacidad de visualizar la misma neurona en repetidas ocasiones nos ha permitido, por ejemplo, para medir la desensibilización de la respuesta de la PKC en exquisito detalle 3. En este vídeo, que muestran cada paso de la preparación de Sf9 cultivos celulares, cultivos de neuronas sensoriales Aplysia se han descrito en otro artículo de vídeo 4, expresando PKC marcado con fluorescencia en células Sf9 y en las neuronas sensoriales Aplysia y en vivo de imágenes de la translocación de PKC en respuesta a activadores diferentes utilizando microscopía de barrido láser.

En este vídeo, se demuestra la visualización de la translocación de la PKC en células vivas mediante PKC marcado con fluorescencia.

En vivo de imágenes de la translocación de PKC en células Sf9 y en las neuronas sensoriales Aplysia

Las proteínas quinasas C (PKC) son serina-treonina quinasas que desempeñan un papel central en la regulación de una amplia variedad de procesos celulares, tales como el crecimiento celular y...

El objetivo de este procedimiento es visualizar la translocación de PKC marcada con fluorescencia en células vivas. Esto se logra primero preparando cultivos de células SF nine o cultivos de neuronas sensoriales de un Plegia California. El segundo paso consiste en expresar PKCs marcadas con fluorescencia en las células.El paso final consiste en obtener imágenes de la translocación de PKC en respuesta a diferentes activadores utilizando microscopía de barrido láser. En última instancia, se pueden obtener resultados que muestren la regulación diferencial de las distintas isoformas de PKC por mensajeros secundarios como el diacilglicerol, mediante el seguimiento de la translocación de PKC en tiempo real utilizando células vivas. Hola, me llamo Carol Ferra.Soy investigador asociado en el laboratorio del Dr. Wayne Sawn en el Instituto Neurológico de Montreal. Hoy demostraré el registro en vivo de la translocación de PKC en neuronas sensoriales de Aplysia. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la plasticidad sináptica, como cómo se activan las diferentes isoformas de PKC durante la formación de la memoria.Para preparar cultivos monocapa de células SF nueve en una campana de cultivo de tejidos, añada ocho mililitros de medio insecto de Grace con 30 % de suero bovino fetal a un frasco de cultivo celular de 75 centímetros cuadrados; luego, descongele rápidamente el tubo congelado de células SF nueve en un baño de agua a 37 grados Celsius moviendo el tubo de un lado a otro durante aproximadamente uno a dos minutos. A continuación, transfiera las células SF nueve al frasco de cultivo celular y mueva suavemente el frasco con la mano para distribuir las células de manera uniforme. Incube las células durante una a dos horas a 27 grados Celsius hasta que se adhieran.Luego, retire el medio antiguo del matraz y sustitúyalo por otros 10 mililitros de medio insecto Grace fresco con 30% de FBS; incube las células a 27 grados Celsius hasta que alcancen confluencia. Para mantener cultivos de monocapa, retire el medio antiguo del matraz confluyente de las células SF nueve y agregue cinco mililitros de medio insecto Grace con 10% de FBS; golpee suavemente el costado del matraz varias veces para desprender las células SF nueve. Luego, utilizando una pipeta de 10 mililitros, aspire y expulse suavemente el medio varias veces.Una vez rociado en la pared del matraz durante la pipetación hacia abajo, transfiera las células a un tubo estéril de poliestireno de 15 mililitros. Añada dos mililitros de suspensión de células SF9 a ocho mililitros de medio para insectos de Grace con 10% de FBS en el nuevo matraz de cultivo celular de 75 centímetros cuadrados con una proporción de dilución de uno a cinco. Para mantener el crecimiento en fase logarítmica, agite suavemente el matraz manualmente.A continuación, incubar nuevamente las células a 27 grados Celsius hasta que estén confluentes. Tras la incubación, las células SF9 están listas para usar en la expresión de PKC marcadas con fluorescencia, tal como se describe en el procedimiento escrito anterior a la expresión de PKC marcadas con fluorescencia. Los cultivos de células neuronales plejiales se preparan en placas de cultivo con fondo de vidrio Matech, como se ha descrito previamente. Dos días después del aislamiento de las neuronas sensoriales, filtrar una porción previamente preparada de verde rápido utilizando una jeringa y un filtro para jeringa de 20 milímetros con un tamaño de poro de 0,2 micrones.Prepare una solución de ADN plasmídico que codifique E-G-F-P-P KC API dos en agua destilada que contenga 0,5 % de verde rápido, con una concentración no superior a 0,4 microgramos por microlitro. Filtre la solución de ADN plasmídico con verde rápido utilizando una jeringa de un mililitro y un filtro de jeringa de cuatro milímetros con un tamaño de poro de 0,2 micrones. Luego, centrifugue la solución de ADN plasmídico con verde rápido a 16.110 Gs durante 15 minutos utilizando una microcentrífuga.A continuación, prepare electrodos afilados para la microinyección de neuronas utilizando un tirador de microelectrodos. Tire de microelectrodos de vidrio usando capilares de vidrio de pared delgada con filamentos en su interior. Llene cada electrodo con dos microlitros de solución de ADN plasmídico con verde rápido.Utilizando una punta de pipeta de carga micro, se realiza la microinyección en la estación de microinyección. La estación de microinyección consiste en una plataforma de vidrio grande hecha en casa para sostener las placas de cultivo sobre una mesa de aislamiento de vibraciones. Un estereoscopio con iluminación halógena externa, un micromanipulador y un portaelectrodos micro conectado a una bomba neumática.La entrada de presión de la bomba neumática está conectada a un tanque de nitrógeno comprimido. Transfiera el platillo de cultivo con fondo de vidrio matech que contiene los cultivos de neuronas plegia a la estación de microinyección e inserte un microelectrodo en el soporte de microelectrodos. Observe las neuronas bajo un microscopio estereoscópico e inserte la punta de la micropipeta en el núcleo celular.Aplique pulsos cortos de presión de nitrógeno de 10 a 100 milisegundos de duración y 20 libras por pulgada cuadrada hasta que el núcleo se vuelva uniformemente verde. Incube las células durante cuatro horas a temperatura ambiente y manténgalas a cuatro grados Celsius hasta su uso en un microscopio confocal invertido Zeiss LSM five 10 con un axia avert. 200 se utiliza para la obtención de imágenes tanto de células SF nine como de neuronas sensoriales plegia.En este video se demuestra la obtención de imágenes de neuronas sensoriales de plegia. Los detalles para la obtención de imágenes de células SF nueve se encuentran en el protocolo escrito. Utilice un láser de argón de 30 milivatios con una salida de láser del 50 % para obtener imágenes de PKC marcada con la proteína EGFP.A continuación, atenúe la línea láser de Argonne a una salida de transmisión del 4%. Luego, ajuste el diafragma a uno, estabilice la placa de cultivo en la platina de imagen y evite movimientos o vibraciones. Retire cuidadosamente un mililitro de medio de cultivo de la placa utilizando una pipeta de 10 mililitros y deje un volumen total de un mililitro.En el cultivo, localice la sección media de las células donde se puede observar el núcleo. Establezca una serie temporal de 10 a 20 imágenes confocales con intervalos de tiempo de 30 segundos.Inicie la película y, después de que se tome la segunda imagen, induzca la translocación agregando suavemente un mililitro de fármaco a dos veces la concentración. Añada el fármaco gota a gota encima de las células de forma continua durante aproximadamente 30 segundos. Aquí se utiliza serotonina para inducir una translocación rápida, que puede ser visible inmediatamente tras el tratamiento con el fármaco.Algunos fármacos inducen una translocación lenta, que solo es óptima entre cinco y diez minutos después del tratamiento; retire el fármaco con dos pipetas de 10 mililitros, agregando suavemente el tampón de lavado con una pipeta en un lado de la placa e impulsando el medio hacia arriba desde el otro lado. Si el lavado es efectivo y el efecto del fármaco es reversible, la PKC volverá al citosol en 30 a 60 segundos. Guarde la película como un archivo LSM que se muestra.A continuación se muestran los resultados representativos de la imagen en vivo de la translocación de PKC en neuronas sensoriales de plegia. Se expresó E-G-F-P-P KC APL dos en una neurona sensorial y se registró una serie de 10 imágenes confocales a intervalos de tiempo de 30 segundos. En este ejemplo, se agregó serotonina al recipiente tras 30 segundos de registro.En este ejemplo, se muestra la imagen en vivo de la translocación de PKC en células SF nine. E-G-F-P-P KC APL uno y M-R-F-P-P KC APL dos se expresaron conjuntamente en células SF nine y se registró una serie de 10 imágenes confocales a intervalos de tiempo de 30 segundos. Uno dos DIOCTYL SN glicerol.Se añadió un análogo permeable a la célula del glicerol DYL al recipiente después de 30 segundos de grabación. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo expresar pkcs marcadas con fluorescencia en neuronas sensoriales de aplysia y de cómo obtener imágenes de la translocación de PKC en células vivas.

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Elegans de Caenorhabditis (C. elegans) es un buen modelo para estudiar el transporte axonal e intracelular. Aquí describo un protocolo para el análisis del transporte axonal e intraflagelar en C. elegansy grabación en vivo .

Inmovilización de Caenorhabditis elegans para analizar el transporte intracelular en las neuronas

Se presenta un procedimiento para visualizar las actividades de proteína quinasa A en ratones que se fijan en la cabeza y se comportan. Un reportero mejorado de actividad de A-quinasa, tAKAR, se expresa en las neuronas corticales y se hace accesible para la toma de imágenes a través de una ventana craneal. La microscopía por imágenes de por vida de fluorescencia de dos fotones se utiliza para visualizar las actividades de PKA in vivo durante la locomoción forzada.

Visualización de la proteína quinasa Una actividad en ratones de trabajo fijos en la cabeza utilizando la microscopía de imágenes de por vida con fluorescencia de dos fotones in Vivo

Este protocolo presenta un método para obtener imágenes de la actividad de la población neuronal con resolución de una sola célula en especies de invertebrados no transgénicos utilizando colorantes sensibles al voltaje de absorbancia y una matriz de fotodiodos. Este enfoque permite un flujo de trabajo rápido, en el que las imágenes y el análisis se pueden realizar en el transcurso de un solo día.

Imágenes ópticas basadas en fotodiodos para registrar dinámicas de red con resolución de una sola neurona en invertebrados no transgénicos

Este protocolo describe las aplicaciones de la inmovilización de muestras utilizando coágulos de Fibrin, limitando la deriva y permitiendo la adición y lavado de reactivos durante las imágenes en vivo. Las muestras se transfieren a una gota de Fibrinógeno que contiene medio de cultivo en la superficie de un deslizamiento de cubierta, después de lo cual la polimerización se induce añadiendo trombina.

Aplicaciones de inmovilización de tejidos de Drosophila con coágulos de fibrina para imágenes vivas

Se describen dos métodos relacionados para visualizar los eventos subcelulares necesarios para la transmisión sináptica. Estos protocolos permiten el monitoreo en tiempo real de la dinámica de la afluencia de calcio presináptico y la fusión de la membrana de vesícula sináptica utilizando imágenes de células vivas de neuronas cultivadas in vitro .

Medición fluorescente en tiempo real de las funciones sinápticas en modelos de esclerosis lateral amiotrófica

Este documento presenta un protocolo detallado sobre cómo utilizar un sistema integrado multifuncional y programable por el usuario que permite la obtención automática de imágenes multicanal y el análisis mecanobiológico para dilucidar la mecanosensibilidad de la proteína asociada al Sí (YAP).

Interrogatorio de mecanobiología totalmente óptica de proteína asociada a sí en cáncer humano y células normales utilizando un sistema multifuncional

Aquí, demostramos cómo combinar la transfección de neuronas primarias de roedores del hipocampo con imágenes confocales de células vivas para analizar los efectos patológicos inducidos por proteínas en el transporte axonal e identificar las vías mecanicistas que median estos efectos.

Uso de imágenes de células vivas para medir los efectos de las proteínas patológicas en el transporte axonal en las neuronas primarias del hipocampo

Aprende a visualizar la translocación de PKC en células Sf9 y neuronas sensoriales de Aplysia mediante microscopía confocal. Este método permite estudiar la dinámica de la señalización celular en tiempo real.

En vivo de imágenes de la translocación de PKC en células Sf9 y en las neuronas sensoriales Aplysia

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