19 de abril de 2011
Un método simple y eficiente para transformar Physcomitrella pantens Protoplastos se describe. Este método es una adaptación de los protocolos para Physocmitrella Protonemal protoplastos y Arabidopsis Mesófilo de transformación de protoplastos 1.
El objetivo general de este procedimiento es transformar los Protoplastos SCO MTre. Esto se logra digiriendo primero las plantas con Drizly. A continuación, los protoplastos se lavan con manitol para eliminar el drizly y luego se incuban con ADN y peg.
Finalmente, los protoplastos transformados se esparcen en placas y se incuban. En última instancia, se pueden obtener resultados. Que muestran protoplastos transformados que expresan proteínas marcadas con fluorescencia a través de microscopía de fluorescencia La demostración del procedimiento estará a cargo de Y lu, un postdoc de mi laboratorio.
La principal ventaja de esta técnica es que es efectiva y genera constantemente protoplastos que expresan la proteína de interés: Para aislar musgo, los protoplastos comienzan agregando nueve mililitros de manitol al 8% en una placa de Petri con una espátula Coloque musgo de cinco a siete días de edad de dos a tres PP NH cuatro placas en el manitol. Consulte el protocolo escrito adjunto para esta y otras recetas de reactivos. A continuación, agregue tres mililitros de 2%drizly e incube a temperatura ambiente agitando suavemente durante una hora.
Filtrar la mezcla a través de una malla de 100 micras para obtener una suspensión verde homogénea. A continuación, centrifugar el filtrado a 250 g durante cinco minutos. Deseche el sobrenadante muy suavemente.
Resuspender los protoplastos en 500 microlitros de manitol al 8%. A continuación, añada 9,5 mililitros adicionales de manitol al 8%. Asegúrese de que los protoplastos estén completamente suspendidos.
Realice los pasos de lavado dos veces más girando la solución nuevamente a 250 G durante cinco minutos. Desechando el sobrenadante y resus suspendiendo los protoplastos. Primero en 500 microlitros.
A continuación, 9,5 mililitros de manitol al 8% utilizando un hemocímetro. Cuente el número de protoplastos en 10 microlitros de la suspensión para transformar el ADN en los protoplastos aislados. Primero, gire la mezcla de protoplastos a 250 G durante cinco minutos.
Retire el sobrenadante, vuelva a suspender los protoplastos a 1,6 millones por mililitro en solución de MMG. Incubar la suspensión a temperatura ambiente durante 20 minutos. A continuación, añada 600 microlitros de la solución de Protoplasts en un tubo de cultivo que contenga 60 microgramos de ADN. Sacudir.
Agregue suavemente 700 microlitros de solución de calcio PEG y agite. Incube la muestra a temperatura ambiente durante 30 minutos durante este período de espera. Cubra las placas PRMB con celofán.
A continuación, diluir la suspensión con tres mililitros de W five solution girar a 250 G durante cinco minutos. Para retirar el PEG se resuspende, los protoplastos en dos mililitros de placa PRMT un mililitro por placa PRMB cubierta con celofán. Mantenga las placas a 25 grados centígrados en una cámara de crecimiento.
Finalmente, cuatro días después de la transformación, mueva el celofán a placas de selección frescas. Esta figura muestra un ejemplo de plantas de 18 días de edad regeneradas a partir de protoplastos, transformadas con 15 microgramos de plasma súper enrollado, ADN, que llevan un casete de resistencia a la higromicina. Aquí, 30 microgramos del mismo plásmido súper enrollado, el ADN, se transformaron en protoplastos.
En esta muestra se transformaron 60 microgramos de ADN a cuadros. Y finalmente, estas plantas se regeneraron a partir de protoplastos que se transformaron con 120 microgramos del mismo ADN plasmático súper enrollado que lleva el casete de resistencia a la higromicina. La eficiencia de la transformación no se ve afectada por concentraciones de ADN de hasta 60 microgramos.
Sin embargo, las concentraciones más altas de ADN son perjudiciales para este procedimiento. Los datos indican que este método ofrece resultados consistentes en una amplia gama de cantidades de ADN una vez por semestre. Esta técnica se puede realizar en tres horas si se realiza correctamente.
Siguiendo este procedimiento, se pueden realizar métodos adicionales como el ARNi transitorio y los knockouts de genes para responder preguntas adicionales sobre la función de los genes.
Este artículo describe un método sencillo y eficiente para transformar protoplastos de Physcomitrella patens. La técnica se adapta de protocolos existentes para la transformación de protoplastos y tiene como objetivo producir resultados exitosos de forma consistente.
La transformación mediada por PEG de protoplastos de Physcomitrella patens permite una entrega eficiente y reproducible de genes, favoreciendo la genómica funcional de alto rendimiento en sistemas vegetales. Esta capacidad es fundamental para equipos de descubrimiento temprano que buscan investigar la función génica, validar dianas y acelerar la elucidación de vías en un modelo genéticamente manejable. La escalabilidad del método y su potencial de estandarización lo convierten en una herramienta valiosa para cribados genéticos a escala de cartera y para la reducción de riesgos mecanicistas.
Este protocolo de transformación se enmarca dentro del continuo de descubrimiento inicial hasta la identificación del candidato principal, permitiendo la manipulación genética, la validación de dianas y el desarrollo de ensayos en modelos vegetales.