Name: Un protocolo optimizado para cría Fopius arisanus, Un parasitoide de moscas de fruta tefrítidas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min
Description: Aprende a criar Fopius arisanus, un parasitoide que controla moscas de fruta tefrítidas en etapa de huevo. Este protocolo optimizado facilita programas de control biológico sostenible en regiones tropicales.

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Damos las gracias a Keith Shigeteni de asistencia en el insectario y Sostrom Natasha ayuda con gráficos de computadora. Este trabajo fue financiado por el USDA-ARS. Opiniones, resultados, conclusiones o recomendaciones expresadas en esta publicación son las de los autores y no reflejan necesariamente la opinión de la USDA. USDA es un proveedor con igualdad de oportunidades.

1. Prepare los huevos de acogida mosca de la fruta de parasitación <ol><li> Prepare un sustrato para los huevos de mosca de la fruta para ser parasitados por la preparación de agar (alternativamente, Gelcarin GP812, FMC biopolímero, Ewing NJ, una opción más rentable) los platos llenos, 10 cm de longitud por cada lado y 1,5 cm de profundidad. Preparar agar en una concentración de 9 gramos por litro de agua. </li><li> Llenar los platos hasta el borde de agar líquido (aproximadamente 70 ml), y dejar que se enfríe y solidifique (al menos 45 minutos). </li><li> Una vez que los bloques de agar son sólidos, aplicar una sola capa de papel de seda (una sola capa de tejido por lotes "preferencia" Georgia Pacific), que cubre la parte superior de cada bloque. El tejido se adhieren fácilmente a la agar debido a la humedad superficial. </li><li> Aplicar un volumen de 0,5 ml huevos mosca de la fruta en suspensión en el agua a la superficie del tejido cubierto de los bloques de agar. En nuestro insectario, esto es equivalente a alrededor de 6000 huevos de Bactrocera dorsalis (12.000 huevos por ml). </li><li> Utilice un trapo de 2,5 cm de ancho pincel mojado en agua para difundir los huevos mosca de la fruta de manera uniforme sobre la superficie del tejido. </li><li> Coloque los huevos mosca de la fruta en la pantalla inferior de las jaulas de los parasitoides para permitir la oviposición. Toque en la parte inferior de la pantalla inferior para eliminar los parásitos muertos que puedan obstruir los huevos. Lo mejor es que la pantalla inferior no toca los huevos. </li><li> Permitir que los parásitos ponen huevos durante la noche y al día siguiente, aproximadamente 21 horas. Este tiempo es suficiente para un alto porcentaje de los huevos para ser parasitados. La exposición ya superparasitization riesgos. </li></ol> 2. La eclosión y la pupación de frutos hospederos parasitados moscas <ol><li> Prepare la crianza de contenedores mediante la colocación de 3 a 3,5 bloques de agar preparado de huevos parasitados por cada 1,25 litros de la dieta de mosca de la fruta con 19 huevos hacia arriba. </li><li> Coloque el recipiente de la dieta con los huevos en una subida sobre una capa de 1,5 cm de profundidad de la vermiculita de grado fino o arena lavada en un recipiente grande la fase de pupa. Cubra el recipiente con una tapa de la fase de pupa y la cinta de los bordes de la cinta adhesiva con. La vermiculita se puede reutilizar después de haber examinado (ver más abajo). </li><li> Asegúrese de que haya suficiente espacio entre la parte superior del contenedor y la tapa de la dieta de la fase de pupa de contenedores para las larvas de mosca de la fruta a arrastrarse hacia fuera y 'pop' 20 en el vemiculite a continuación. </li><li> Mueva los contenedores pupación a una habitación a 27 º C y 80% de humedad relativa (HR) durante una semana. Contenedores de tapa con un paño oscuro para los primeros cuatro días después quitar la ropa para los días restantes. </li><li> Retire la dieta larval después de una semana, una vez que las larvas han aparecido y entró en la vermiculita para la pupación. Si hay larvas en la vermiculita, que puedan pupar durante la noche. </li><li> Tamizar la pupa de la vermiculita. Comience con un tamiz grueso (aproximadamente 3 mm) a continuación, utilizar un tamiz a mano para eliminar cualquier resto de grupos de vermiculita. </li></ol> 3. Clasificación y selección <ol><li> Pupa contiene F. arisanus puede ser parcialmente separados de moscas de la fruta no parasitados por tamaño. Recoger pupa entre 1,65 y 2,26 mm de diámetro, ya que se verá enriquecido por las moscas parasitadas. 12 pupas que son más pequeños contienen en su mayoría parasitoides inferior, más pupa contienen principalmente moscas. Tenga en cuenta también que para el pupas parasitadas el porcentaje de mujeres se correlaciona positivamente con el tamaño 12. </li><li> Una variedad de métodos pueden ser empleados para clasificar por tamaño de las pupas. Vamos a describir un método mecánico utiliza un clasificador de tamaño personalizado 21. </li><li> Colocar las pupas en el embudo en la parte superior de un alimentador de vibración que poco a poco se alimenta el clasificador de tamaño. </li><li> Alimentar a las pupas en el clasificador de tamaño, que consiste en un par de barras de balanceo ligeramente divergentes en un ángulo de 30 °. La caída de las pupas de forma individual por tamaño en una serie de ranuras que desembocan en diez contenedores separados a través de un embudo. </li><li> Recoger las pupas de las copas en el rango de tamaño de 1,65 a 2,26 mm y colocarlos en una jaula de emergencia durante 7 días más hasta que la mayoría de las moscas han surgido de las pupas parasitadas. </li><li> A continuación, utilice un ventilador para separar pupas vacías de los insectos que todavía contiene. </li></ol> 4. F. arisanus aparición y el mantenimiento <ol><li> Para mantener la colonia de F. arisanus utilizar una jaula de parasitoides de fijación con un frente de cristal desmontable, de aproximadamente 25 cm de longitud por cada lado. La jaula tiene 1mm 2 de detección en la parte superior y dos de los lados. La parte trasera de la caja está cubierta de una lámina de goma con un agujero de 9 cm de acceso. El fondo de la jaula tiene un corte en el interior cubierto con 1-2mm 2 pantalla lo suficientemente grande como para permitir la colocación de dos bloques de agar con huevos de mosca de la fruta para la oviposición del parasitoide. </li><li> Las jaulas también deben tener la celebración de una porción de color a lo largo del cuarto inferior de la fachada de cristal para minimizar la luz que puede crear el hacinamiento parasitoide en la parte frontal de la jaula, lo que resulta en una elevada mortalidad. </li><li> Colocar aproximadamente 11 g de estos selecciónTed pupas en recipientes de plástico de aproximadamente 9 cm de diámetro. Esto debería producir alrededor de 600 a 700 parásitos por jaula. Selección de tamaño debe dar lugar a cerca de 60% de mujeres. </li><li> Coloque las tapas de los contenedores seleccionados. Las tapas deben estar cubiertas con 2 mm 2 de detección, lo que permitirá adultos de F. arsianus dejar los recipientes en emergencia pero, contendrá ninguna mosca de la fruta restante. </li><li> Mantener a los parásitos a los 24 ° C y 45% HR con una ventilación 12:12 fotoperíodo y buenos. Si se observa una elevada mortalidad, en movimiento de las jaulas al aire libre durante unas horas al día o aumentar la ventilación puede reducir. Los parásitos deben estar dispuestos a poner huevos en una semana más y debe ser productivo durante dos semanas más. </li><li> Racha sin diluir la miel girar la parte superior de las jaulas al menos tres veces por semana o cuando la miel está disponible en seco. Aplicar la miel girar en vetas angostas con un dedo. Tenga en cuenta que si las rayas son demasiado pesados ​​que la miel por goteo en la jaula, y si también la luz de la miel se seca rápidamente y requieren la reaplicación frecuente. </li><li> Coloque los bloques de agar (10 cm x 10 cm x 4 cm) en la parte superior de las jaulas para proporcionar humedad a los parásitos. Estos deben cambiarse dos veces por semana. </li></ol> 5. Los resultados representativos: Presentamos aquí los resultados de los procedimientos de control de calidad realizado en la F. USDA-ARS arisanus operación de cría en Hilo, Hawaii entre el 5 y 22 de junio de 2010. La cría en el lugar de Hilo, en la escala descrita en este artículo de vídeo y el protocolo se inició en agosto de 2009, y los problemas iniciales y los ajustes con la nueva ubicación había sido en su mayoría resueltas en enero. Por lo tanto, estos datos son representativos de los resultados de otros investigadores puedan obtener a partir de su colonia si se sigue el protocolo como se describe y que los insectos experiencia de la crianza en general. Durante este periodo se mantiene una pequeña colonia de F. arisanus: 4 jaulas parasitoide celebración producido por semana, lo que equivale a cerca de 3600 F. arisanus. Una comprobación inicial de las tasas de parasitación enriquecido se realizó tomando una muestra de 2 g de pupas en el rango de tamaño de 1,65 a 2,26 mm (enriquecido) antes de una semana adicional de desarrollo en una jaula de retención (es decir, inmediatamente después de la dieta larval fue removido y el pupas tamizada y ordenados tamaño. Nos referimos a estos como "pupas temprano"). Durante los tres primeros meses de 2010 los parásitos proporción media en la muestra enriquecida fue de 0,46 (SD = 0,18). Durante el trimestre, después de esta media fue de 0,58 (SD = 0,08), lo que refleja la estabilización de los procedimientos de la colonia y la crianza en la nueva ubicación. Tenga en cuenta que las pupas que no se enriqueció con éxito parasitados son los que no producen emergentes y las que producen las moscas. Después de una semana más en la eliminación de la jaula celebración de pupas vacías otra muestra fue tomada dos gramos ('pupas tarde "). Moscas de la fruta representa menos del 1% de esta segunda muestra. El bajo porcentaje de moscas de la fruta se debe en parte a la aparición anterior de moscas en comparación con los parásitos, por lo que la mayoría de las moscas se mantuvo en el recipiente que contiene. Finalmente, la Figura 1 se presenta la producción en masa de pupa, de enero a junio de 2010. Los rendimientos se miden a partir de pupas enriquecido en el rango de tamaños de interés, 1,65-2,26 mm. La gran masa de 'pupas temprana "a principios del año indica una alta proporción de pupas de moscas de la fruta y que no ha salido en ese momento, mientras que los ajustes se están realizando para la nueva instalación. <img src="/files/ftp_upload/2901/2901fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Producción de uranio enriquecido (diámetro 1,65 pupa-2.26mm) precoz (inmediatamente después de la selección de tamaño) y "tardío" (después de la celebración de una semana y la eliminación de carcasas vacías) pupas en la colonia del ARS-USDA F. ariasnus en Hilo, Hawai , 1-06 2010

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No tenemos ningún conflicto de interés al informe.

En este artículo de vídeo protocolo y el acompañamiento que hemos descrito y demostrado un protocolo optimizado para la cría de F. ariasnus, un parasitoide de moscas de la fruta tefrítidas, en un entorno de laboratorio. Este protocolo ha sido perfeccionado a lo largo de los años para reducir al mínimo la cantidad de equipos de trabajo especializados y necesarios para mantener una colonia. Tomamos nota de que una bien establecida, colonia productiva y estable de las moscas de la fruta de acogida es necesaria para cualquier intento de parasitoides de cría. En nuestro insectario usamos Bactrocera dorsalis como una mosca de la fruta de acogida, pero otras especies han demostrado ser los anfitriones competentes y 14-17. Varios aspectos de la F. mantenimiento arisanus colonia quedan por explorar. Estos incluyen la tasa de adaptación de esta especie de laboratorio 10, los mecanismos de aprendizaje de 22 y los cambios genéticos que pueden producirse con la adaptación y los mecanismos que pueden estar implicados en la plasticidad volar anfitrión de la fruta. En los últimos diez años ha habido múltiples ejemplos de la propagación de moscas Dacine en todo el mundo, en particular los del género Bactrocera: B. dorsalis en la Polinesia Francesa, B. carambolae en partes de América del Sur, B. invadens en África y B. zonata en África del Norte y del Mediterráneo. 3,23,18 Prueba de la efectividad de los agentes de control biológico, tales como F. arisanus contra otras especies de Bactrocera debe ser una alta prioridad, y tenemos la esperanza de que la aplicación de los métodos descritos en este protocolo y el video que acompaña el artículo, se acelerará la investigación sobre F. arisanus en una amplia variedad de ubicaciones 24. Finalmente, la investigación más con este método como punto de partida también puede proporcionar información importante para la colonización de los parasitoides de huevos novela 25,1

un protocolo optimizado para cría fopius arisanus, un parasitoide de moscas de fruta tefrítidas

An Optimized Protocol for Rearing Fopius arisanus, a Parasitoid of Tephritid Fruit Flies

Fopius arisanus (Sonan) es un parasitoide importante de moscas de la fruta tefrítidas al menos por dos razones. En primer lugar, es el uno de los tres parasitoides opiine sabe que infectan el huésped durante la etapa de huevo 1. En segundo lugar, tiene una amplia gama de posibles anfitriones mosca de la fruta. Quizás debido a su historia de vida, F. arisanus ha sido utilizado con éxito para el control biológico de moscas de la fruta en varias regiones tropicales 2-4. Uno de los impedimentos para el uso de ancho de F. arisanus para el control de mosca de la fruta es que es difícil establecer una colonia de laboratorio estable 5-9. A pesar de esta dificultad, en la década de 1990 los investigadores del USDA ha desarrollado un método confiable para mantener las poblaciones de laboratorio de F. arisanus 10-12. Existe un interés significativo en F. arisanus biología 13,14, especialmente en cuanto a su capacidad de colonizar una amplia variedad de huéspedes tefrítidas 14-17; interés es especialmente impulsada por la alarmante propagación de las plagas de mosca de la fruta Bactrocera a nuevos continentes en la última década 18. Nuevas investigaciones sobre F. arisanus y despliegues adicionales de esta especie como un agente de control biológico se beneficiarán de las optimizaciones y mejoras de métodos de cría. En este protocolo y en el artículo asociado de vídeo que describen un método optimizado para la cría de F. arisanus basa en un enfoque descrito previamente 12. El método que se describe aquí permite la crianza de F. arisanus en pequeña escala, sin el uso de la fruta, utilizando los materiales disponibles en las regiones tropicales de todo el mundo y con los requisitos de mano de obra relativamente bajos manual.

Fopius arisanus es un parasitoide de huevos de larvas de moscas de la fruta tefrítidas que se utiliza con éxito en el control biológico de estas plagas tropicales importantes. Se describe aquí un protocolo optimizado para la cría de F. arisanus a pequeña escala, utilizando materiales fácilmente disponibles.

Un protocolo optimizado para cría Fopius arisanus, Un parasitoide de moscas de fruta tefrítidas

*Fopius arisanus* (Sonan) es un parasitoide importante de las moscas de la fruta tefrítidas por al menos dos razones. En primer lugar, es uno de los tres únicos opiíneos...

FOIA Aus es un agente importante de control biológico en Hawái porque ataca a las moscas de la fruta rayadas, que son plagas económicas graves en todo el trópico y especialmente aquí en Hawái. La ventaja de FOIA Aus es que ataca la etapa de huevo del insecto plaga, controlando así al insecto en una etapa temprana. En los siguientes clips, podrá observar primeros planos de cómo criamos FOIA Aus en un entorno de laboratorio.Y al final de este programa, verá algunas discusiones sobre cómo este parasitoide en particular se ha utilizado en un programa exitoso de liberación en la Polinesia Francesa. Comenzaremos nuestro protocolo con parásitos adultos que están listos para ovipositar en huevos de una mosca de la fruta huésped. El primer paso consiste en preparar los huevos de la mosca de la fruta para presentarlos al parásito.A continuación, se permite que las larvas de mosca de la fruta eclosionen, se desarrollen y se transformen en pupas. Una vez que las moscas de la fruta alcanzan la etapa de pupa, se clasifican por tamaño para enriquecer la población de parásitos. Finalmente, los parásitos emergen y se mantienen hasta su maduración.Luego se encuentran y están nuevamente listos para ingresar al OSI en un nuevo lote de fruta. Huevos de mosca. Esto completa el ciclo.Prepare un sustrato para la fruta. Huevos de mosca mediante la elaboración de bloques de auger de aproximadamente 10 centímetros por lado. El auger se prepara a una concentración de nueve gramos de polvo de auger por litro de agua.Utilizando una superficie nivelada, llene los recipientes hasta el borde con el medio de auger líquido y déjelo solidificar durante al menos 45 minutos. Una vez que los bloques de auger estén sólidos, coloque una sola capa de papel de tissue cubriendo la parte superior de cada bloque. El papel debe adherirse fácilmente al auger debido a la humedad superficial.Una segunda vez enrollando. Aplique los huevos de mosca de la fruta sobre la superficie cubierta con tejido de los bloques helicoidales. Un volumen de 0,5 mililitros de huevos de mosca de la fruta en suspensión produce aproximadamente 6.000 huevos por bloque.Se utiliza un pincel de 2,5 centímetros de ancho, mojado en agua, para distribuir uniformemente los huevos de mosca de la fruta sobre la superficie del tejido. Ahora se colocan los huevos de mosca de la fruta debajo de la pantalla inferior de las jaulas de parásitos para permitir la oviposición por parte de los parásitos; golpear suavemente el reverso de la pantalla elimina los parásitos muertos, que podrían obstruir la fruta. Los huevos de mosca permiten que los parásitos realicen la oviposición durante la noche.Aproximadamente 21 horas son suficientes para que un alto porcentaje de los huevos de mosca de la fruta sean parasitados. Una exposición más prolongada conlleva el riesgo de superparasitismo. Los componentes principales necesarios para criar los huevos después de la exposición a parásitos son la dieta larval de mosca de la fruta, los recipientes para la dieta larval y los recipientes para la pupación.Coloque de tres a tres y medio bloques preparados de sacabocados con huevos parasitados sobre un litro y cuarto de fruta. Dieta para larvas de mosca. Coloque el recipiente con la dieta y los huevos sobre un elevador y un recipiente de pupación encima de una capa de vermiculita de grano fino o arena lavada de un centímetro y medio de profundidad.Cubra los bordes del recipiente de pupación con cinta adhesiva. Asegúrese de que haya suficiente espacio entre la parte superior del recipiente de alimento y la tapa del recipiente de pupación para que las larvas puedan salir y caer en la vermiculita que se encuentra debajo. Coloque los recipientes de pupación en una habitación a 27 grados centígrados y 80 % de humedad relativa durante una semana.Cubra los recipientes con un paño pesado durante los primeros cuatro días después de una semana. Abra los recipientes de pupación y retire la dieta larval. Utilizamos Bre Dorsals como mosca de la fruta huésped para criar foia Airis.Otras especies de los géneros Asfa y sitis también son huéspedes potenciales. Si hay larvas no emergidas en la vermiculita, déjelas pupar durante la noche en un tamiz. Recolecte las pupas de la vermiculita comenzando con un tamiz grueso y un recipiente grande.A continuación, utilice un tamiz manual para eliminar cualquier grumo restante de vermiculita Eria que contenga opia. Los Ais se pueden separar parcialmente de las moscas de la fruta no parasitadas mediante. Así, basándose en investigaciones previas, recolectamos únicamente las aria con un diámetro entre 1,65 y 2,26 milímetros er, que son más pequeñas y contienen principalmente parasitoides de tamaño reducido.Las áreas más grandes contienen principalmente moscas. Puede emplearse una variedad de métodos para clasificar por tamaño las pupas. Describiremos un método mecánico que utiliza un clasificador de tamaño personalizado para las aristas parasitadas recolectadas.El porcentaje de hembras aumenta con el tamaño. Coloque el puy en el embudo en la parte superior del clasificador mecánico por tamaño. Un alimentador vibratorio los mueve hacia la parte superior de un par de barras rodantes ligeramente divergentes con un ángulo de 30 grados. Las aria caen individualmente en una serie de ranuras que desembocan a través de embudos en 10 recipientes separados.Coloque pupas en el rango de tamaño de 1,65 milímetros a 2,26 milímetros en una jaula de emergencia durante siete días más hasta que la mayoría de las moscas hayan emergido de las pupas parasitadas. A continuación, use un ventilador para separar las pupas vacías de aquellas que aún contienen parasitoides vivos. Para mantener la colonia de Opia Aus, utilice una jaula de contención para parásitos con un frente de vidrio extraíble, de aproximadamente 25 centímetros de largo por lado.La jaula tiene una malla de un milímetro cuadrado en la parte superior y en dos de los lados. La parte trasera de la jaula está cubierta con una lámina de goma que tiene un orificio de nueve centímetros para el acceso. La base de la jaula tiene una abertura recortada, cubierta en el interior con una malla de uno a dos milímetros cuadrados.Lo suficientemente grande como para permitir la colocación de dos bloques de tornillo con fruta y huevos de mosca para que el parásito se sitúe encima. Las jaulas de contención también deben tener una sección tintada a lo largo del cuarto inferior del frente de vidrio para minimizar el apiñamiento del parásito a lo largo del frente de la jaula. Coloque aproximadamente 11 gramos del aria seleccionado en recipientes de plástico, de aproximadamente nueve centímetros de diámetro.Esto debería producir aproximadamente de 600 a 700 parásitos por jaula. La selección por tamaño debería dar como resultado alrededor de 60% hembras. Coloque las tapas con malla en los recipientes. Las tapas deben estar cubiertas con una malla de dos milímetros cuadrados, lo que permitirá que los adultos emergidos abandonen los recipientes, pero retendrá cualquier mosca de la fruta restante.Mantenga los parásitos a 24 grados centígrados y aproximadamente 45 % de humedad relativa, con un fotoperiodo de 12:12 y buena ventilación. Aplique miel hilada a lo largo de la parte superior de las jaulas al menos tres veces por semana, o siempre que la miel disponible esté seca. Aplique la miel hilada en estrías estrechas utilizando la yema del dedo. Tenga en cuenta que si las estrías son demasiado gruesas, la miel goteará dentro de la jaula; si son demasiado finas, la miel se secará rápidamente y requerirá aplicaciones frecuentes. Coloque bloques de tornillo sinfín, de 10 centímetros cuadrados y cuatro centímetros de profundidad, en la parte superior de las jaulas para proporcionar humedad a los parásitos.Estos bloques deben cambiarse dos veces por semana. En 2001, recibimos una pequeña subvención inicial para ver si podíamos introducir controles biológicos en la Polinesia Francesa para ayudar a aliviar la situación, ya que en ese momento la mosca de la fruta oriental estaba causando una infestación increíble de todas las frutas tropicales. El laboratorio aquí en Hawái, nosotros, hicimos 10 envíos.Entonces, cada uno de estos envíos solía ascender a cerca de cien mil Opia air sayings, aunque en realidad eran bastantes más, pero enviábamos el equipo de protección personal contra la mosca de la fruta oriental con el parasitoide en su interior, y luego los hacíamos emerger. Así que establecimos un pequeño laboratorio en Tahití, donde recibíamos estos ejemplares y luego hacíamos emerger el FOIA Air Sanus. De este modo, durante un período de aproximadamente un año, liberamos cerca de un millón de FOIA Aans.En general, este es el más exitoso fuera de Hawái. Cuando FOIA Aus se liberó inicialmente en Hawái, fue el mejor ejemplo de control biológico de moscas de la fruta en todo el Pacífico. Durante los últimos 10 años, ha habido una expansión tremenda del complejo Bactrocera Dorsals alrededor del mundo.Entonces, Bactrocera Carbo se ha extendido a América del Sur, Surinam, y actualmente está presente en el norte de Brasil. Luego, ha habido otra especie llamada Bacter Inance, que se ha propagado por toda África y está causando todo tipo de estragos. Y también se ha producido la propagación de bacter papaya.Este éxito abre ahora oportunidades para liberar estos FOIA Aus en América del Sur, África y otras partes de Asia.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

Se presenta un método para la cría de Drosophila melanogaster en condiciones axénicas y gnotobióticos. Volar embriones se dechorionated en hipoclorito de sodio, de manera aséptica a la dieta estéril, y se ha criado en contenedores cerrados. La inoculación de la dieta y los embriones con bacterias conduce a asociaciones gnotobióticos, y la presencia bacteriana se confirmó mediante siembra de todo el cuerpo homogeneizados de Drosophila.

La cría de la mosca de la fruta<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Bajo axénicos y Condiciones gnotobióticos

Aquí presentamos un protocolo basado en el sistema de cebo del gusano de la harina (Tenebrio molitor) que se utilizó para aislar y seleccionar hongos entomopatógenos (EPF) a partir de muestras de suelo. Se utiliza una fórmula efectiva de número de conidios (ECN) para seleccionar EPF altamente tolerante al estrés en función de las características fisiológicas para el control microbiano de plagas en el campo.

Aislamiento y selección de hongos entomopatógenos a partir de muestras de suelo y evaluación de la virulencia fúngica contra plagas de insectos

Ganaspis brasiliensis, un parasitoide larvario de Drosophila suzukii (una plaga mundial de cultivos frutales invasores), ha sido aprobado o se considera para su introducción en Europa y los Estados Unidos para el control biológico de esta plaga. Este artículo proporciona protocolos para la cría a pequeña y gran escala de este parasitoide.

Métodos para la cría del parasitoide Ganaspis brasiliensis, un prometedor agente de control biológico para la Drosophila suzukii invasora

El aumento de la detección de moscas de la fruta tephritid inmaduras en el campo puede desencadenar esfuerzos oportunos para eliminar las poblaciones de estas plagas destructivas. La detección de larvas de estadio tardío es más rápida y precisa cuando se tritura la fruta huésped en una bolsa y se pasa la pulpa a través de una serie de tamices que el corte manual y la inspección visual.

Tamizado de la pulpa de la fruta para detectar moscas de la fruta Tephritid inmaduras en el campo

En este trabajo se presenta un protocolo para la obtención de hongos entomopatógenos a partir de un barrenador forestal de la madera y una forma sustitutiva de evaluar sus actividades entomopatógenas utilizando un insecto modelo de coleóptero. Este método es eficiente y conveniente para explorar recursos fúngicos entomopatógenos de plagas de insectos perforadores de madera en bosques naturales.

Aislamiento, identificación conductual y evaluación de la patogenicidad de hongos entomopatógenos de un barrenador forestal

Este artículo describe el mantenimiento en laboratorio (incluyendo el apareamiento y la alimentación) de la mosca díptera inferior Bradysia (Sciara) coprophila.

Mantenimiento de laboratorio de la mosca díptera inferior Bradysia (Sciara) coprophila: un nuevo/viejo organismo modelo emergente

El objetivo de este protocolo es facilitar el análisis funcional de las interacciones parasitoide-huésped en Asobara japonica y Drosophila melanogaster. mediante métodos de cría optimizados, un ensayo de infección de oviposición única y knockdown génico mediado por ARNi.

Protocolos para la cría eficiente y el análisis funcional de la avispa endoparasitoide Asobara japonica y su hospedadora Drosophila melanogaster

El estudio de la agresión en Drosophila (mosca de la fruta)

Este video muestra las técnicas generales utilizadas para criar Anopheles gambiae en el laboratorio. Los métodos para el cuidado de los mosquitos de laboratorio se ha demostrado en todas las etapas del ciclo de vida del organismo a partir de larvas a pupas a los adultos se alimentan de sangre.

Protocolo para la cría de los mosquitos (A. gambiae)

Un método rápido para el análisis de compuestos volátiles de las frutas se describe. Los compuestos volátiles presentes en el espacio de cabeza de un homogeneizado de la muestra se separaron rápidamente y se detecta con cromatografía de gases ultra-rápida (GC) acoplado con una onda acústica de superficie (SAW) del sensor. Un procedimiento para el manejo y análisis de datos también se discute.

Frutas volátil análisis mediante una nariz electrónica

Aprende a criar Fopius arisanus, un parasitoide que controla moscas de fruta tefrítidas en etapa de huevo. Este protocolo optimizado facilita programas de control biológico sostenible en regiones tropicales.

Un protocolo optimizado para cría Fopius arisanus, Un parasitoide de moscas de fruta tefrítidas

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