Criopreservación basada en vitrificación: una técnica de enfriamiento ultrarrápido para preservar muestras biológicas a temperaturas muy bajas para su almacenamiento a largo plazo

0 vistas4:24 min • April 30th, 2023

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La vitrificación, una técnica de criopreservación ultrarrápida, permite enfriar y almacenar células y tejidos vivos a temperaturas extremadamente bajas durante períodos muy largos.

Para vitrificar un tejido tumoral recién extraído, primero, tome el tejido en una placa de cultivo. Extirpe cualquier región necrótica, región que contenga grasa o coágulos de sangre del tumor. Lave el pañuelo para eliminar cualquier rastro de sangre.

Corta el tejido en rodajas del grosor adecuado. Ahora, transfiera las rodajas a un tubo que contenga una solución de vitrificación que constituya DMSO, o dimetilsulfóxido, y sacarosa. Estos componentes actúan como crioprotectores para proteger las células contra el daño por congelación.

Incubar a baja temperatura. El DMSO, un crioprotector que penetra en las células, se difunde a través de la membrana celular y reemplaza el agua en las células para evitar la formación de cristales de hielo intracelulares. Al mismo tiempo, la sacarosa, un crioprotector no permeable, actúa extracelularmente facilitando la deshidratación celular y reduciendo la formación de cristales de hielo intracelulares para mitigar el riesgo de muerte celular.

Coloque las rodajas de tumor equilibradas en un soporte para tejidos. A continuación, transfiera este conjunto a nitrógeno líquido para congelar a menos 196 grados Celsius. Este rápido enfriamiento da como resultado una vitrificación de muestras que solidifica el tejido en un estado vítreo y amorfo, mientras que la alta concentración de crioprotectores evita la formación de cristales de hielo y el daño celular.

El tejido vitrificado permanece en un estado de actividad metabólica suspendida.

Después de sacrificar a los ratones, use fórceps y tijeras estériles para aislar lentamente el tumor de los ratones. Lave los tejidos tumorales en DPBS y en un plato de 10 centímetros. Use fórceps y tijeras para diseccionar y eliminar áreas necróticas, tejido graso, coágulos de sangre y tejido conectivo.

A continuación, use un molde para cortar los tejidos tumorales a un grosor máximo de 1 milímetro. Lave las rodajas de tumor con DPBS en un plato de 10 centímetros. Para comenzar el proceso de vitrificación, use fórceps para transferir las rodajas al tubo V1 e incube a 4 grados centígrados durante 4 minutos. Enrolle e invierta el tubo brevemente e incube a 4 grados centígrados durante otros 4 minutos.

A continuación, vierta la solución V1 y las rodajas en un plato de 10 centímetros y use fórceps para transferir las rodajas al tubo V2. Incubar a 4 grados centígrados durante 4 minutos. Enrolle e invierta el tubo brevemente e incube a 4 grados centígrados durante otros 4 minutos. Después de esto, vierta la solución V2 y las rodajas en un plato de 10 centímetros.

Transfiera las rodajas al tubo V3 e incube a 4 grados centígrados durante 5 minutos. Enrolle e invierta el tubo brevemente e incube a 4 grados centígrados durante otros 5 minutos.

Asegúrese de que todas las rodajas se hundan hasta el fondo del tubo. Si quedan varias rodajas flotando, enrolle e invierta el tubo brevemente e incube a 4 grados centígrados hasta que todas las rodajas se hundan por completo. Luego, vierta la solución V3 y las rodajas en un plato de 10 centímetros. Corte los soportes de tejido a la longitud adecuada y colóquelos sobre una gasa estéril. Transfiera las rodajas a los soportes. Envuelva los soportes con una gasa.

Con unas pinzas, coloque los soportes en nitrógeno líquido y déjelos incubar durante 5 minutos. Después de esto, etiquete los viales criogénicos con la información del tejido. Transfiera los soportes con rodajas de tejido a los viales, que se almacenarán en nitrógeno líquido.

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Última actualización: 22 agosto 2026