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La microscopía multifotónica permite la captura de imágenes tridimensionales de alta resolución de la vasculatura marcada con fluorescencia dentro del tejido vivo. Comience con un ratón anestesiado en posición supina.
Inyecte con cuidado una suspensión de fluoróforo conjugado con dextrano en su vena caudal. Las moléculas inyectadas fluyen a través de la circulación y llegan a órganos como el hígado. El tinte fluorescente etiqueta el suero vascular, lo que ayuda a la visualización de los vasos sanguíneos, mientras que el dextrano de alto peso molecular adjunto evita su fuga de la vasculatura.
Prepara el área abdominal del ratón. Transfiéralo a la base del marco de imágenes del órgano equipado con un anillo de succión que contiene lentes de imágenes conectado a una bomba de vacío. Haga una incisión a lo largo de su borde esternal inferior para exponer el hígado.
Guiando el anillo de succión hacia el hígado, aplique vacío o presión negativa que facilite la adsorción del hígado al cristalino en el anillo de succión. Este paso reduce los artefactos de movimiento durante la obtención de imágenes. Transfiera el marco de imágenes que contiene el ratón a la platina del microscopio de barrido láser multifotónico.
Cubra el cristalino con solución salina que actúa como medio de inmersión para obtener imágenes de alta resolución. Durante la obtención de imágenes, los fotones enfocados de longitud de onda larga y baja energía permiten una penetración más profunda en el tejido y excitan los fluoróforos en los vasos sanguíneos en el punto focal, lo que provoca la emisión y detección de señales fluorescentes.
Una serie de escaneos de las secciones ópticas seleccionadas a diferentes profundidades recrea una imagen tridimensional completa de los vasos sanguíneos dentro del tejido.
Después de confirmar una falta de reflejo de enderezamiento en un ratón macho C57BL / 6 anestesiado de 8 semanas de edad, limpie la cola del ratón con alcohol al 75% y use una jeringa de 1 microlitro equipada con una aguja de calibre 30 para inyectar 10 miligramos por mililitro de isotiocianato-dextrano de rodamina B recién preparado en 100 microlitros de isotiocianato-dextrano de rodamina B en la vena caudal de la cola.
Cuando se haya administrado toda la solución, use un hisopo de algodón para aplicar presión en el sitio de punción y use una gasa humedecida con agua estéril para remojar el pelaje abdominal. Use una navaja de afeitar para afeitar el abdomen, haciendo movimientos en la dirección del pelaje, y coloque el ratón sobre una almohadilla térmica desinfectada con alcohol a 37 grados Celsius.
Para fijar el hígado del ratón con un marco de imágenes de órganos del cuerpo, primero, coloque una ventosa limpia de 5 milímetros de diámetro en una posición fija y limpie la almohadilla térmica y la ventosa con alcohol al 75%. Conecte la ventosa a la manguera de la bomba de vacío y encienda la bomba.
En una mesa esterilizada con alcohol al 75%, use tijeras quirúrgicas para cortar 2 centímetros de piel del borde esternal inferior del ratón y exponer el hígado. Coloque el mouse y la almohadilla térmica en la base del soporte del marco del cuerpo y ajuste el accesorio de imágenes del órgano para que la ventosa pueda sostener el hígado. Luego, use una presión negativa de 30 a 35 kilopascales para la succión para que el hígado se adhiera a la copa.
Para configurar el microscopio de escaneo láser multifotónico, encienda el microscopio y seleccione el objetivo de 60x. Fije el marco y el mouse debajo del objetivo y agregue una gota de solución salina normal a la taza lo suficientemente grande como para cubrir la lente. Ajuste el objetivo para que la lente toque la solución salina normal y encienda el software láser.