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Preparación de un modelo de conejo consciente para video-EEG-ECG-oximetría-capnografía simultánea...
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Encyclopedia of Experiments Biology
Prepping Conscious Rabbit Model for Simultaneous Video-EEG-ECG-Oximetry-Capnography for Experimental Interventions: A Procedure to Implant EEE-ECG Electrodes and Attach Respiratory Probes in Rabbit Model

Preparación de un modelo de conejo consciente para video-EEG-ECG-oximetría-capnografía simultánea para intervenciones experimentales: un procedimiento para implantar electrodos de EEE-ECG y conectar sondas respiratorias en un modelo de conejo

Protocol
2,960 Views
04:27 min
July 8, 2025
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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Comience con un modelo de conejo en posición supina. Asegure electrodos de electrocardiografía o ECG codificados por colores en el tejido subcutáneo, de manera adecuada desde las extremidades anteriores y posteriores para una medición precisa de la actividad eléctrica del corazón. El electrodo de tierra minimiza el ruido que interfiere con las señales de ECG.

Sujete al conejo en una cámara del tamaño adecuado para facilitar las grabaciones en su estado consciente. Inserte electrodos de electroencefalografía o EEG en el tejido subcutáneo en las posiciones designadas desde los cuatro cuadrantes de la cabeza, reduciendo los artefactos musculares durante la medición de la actividad eléctrica del cerebro. El electrodo de tierra elimina los ruidos eléctricos de las señales de EEG.

Coloca un oxímetro de pulso en la oreja del conejo sobre la vena marginal de la oreja. Asegure una máscara de capnografía sobre su boca y nariz. Conecte la máscara de capnografía y el oxímetro al monitor de signos vitales para evaluar la concentración de dióxido de carbono y el nivel de saturación de oxígeno, respectivamente, en el animal.

Coloque la cámara de video para que esté dentro de la vista de la cámara. Conecte los electrodos de EEG y ECG al amplificador de bioseñales, que a su vez está conectado al sistema de adquisición de datos.

Usando un software adecuado, realice la grabación de video-ECG-EEG para correlacionar la actividad motora con las mediciones de actividad eléctrica del cerebro. Inicie las grabaciones de referencia hasta que las señales se estabilicen. El conejo preparado está listo para el experimento previsto.

Para la implantación de los electrodos de ECG, asegure un conejo en posición supina con la cabeza en las rodillas del investigador y más abajo que el resto de su cuerpo. Con un segundo investigador extendiendo el pelaje para exponer la piel subyacente, inserte subdérmicamente electrodos doblados en ángulo de 35 grados en cada axila. Coloque los cables en el pecho, posterior a las extremidades anteriores derecha e izquierda, y en el abdomen, anterior a la extremidad posterior izquierda. Luego, coloque un electrodo de alfileres de tierra anterior a la extremidad trasera derecha en el abdomen.

Cuando todos los cables de ECG se hayan colocado correctamente, asegure al conejo en un dispositivo de sujeción del tamaño adecuado, con las extremidades traseras debajo del animal. Usando un enfoque de ángulo de 45 grados, inserte electrodos rectos subdérmicos en el cuero cabelludo.

Coloque un cable de EEG en las regiones anterior derecha, anterior izquierda, occipital derecha y occipital izquierda de la cabeza, y coloque un cable de referencia central en el punto central entre los otros cuatro cables. Pasa los cables entre las orejas y átalos sin apretar al sujetador detrás de la cabeza.

Para monitorear la respiración durante el experimento, conecte un oxímetro de pulso a un oído sobre la vena marginal del oído y asegure suavemente una máscara facial con un tubo de capnografía sobre la boca y la nariz del animal. Luego, conecte el otro extremo del tubo al monitor de signos vitales.

Para grabar un ECG de EEG de video, abra un programa de software de EEG apropiado disponible en el mercado y ajuste el video de modo que todos los conejos puedan observarse dentro del campo de visión. Realice un registro de referencia para el animal durante un mínimo de 10 a 20 minutos o hasta que la frecuencia cardíaca se estabilice a 200 a 250 latidos por minuto durante al menos cinco minutos. Establezca el filtro de baja frecuencia en 1 hercio y el filtro de alta frecuencia en 59 hercios.

Agregue notas bloqueadas en tiempo real para indicar el momento de las intervenciones, los eventos neurocardíacos y los artefactos motores o del investigador.

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