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Las algas son organismos fotosintéticos acuáticos que producen una variedad de lípidos, de los cuales los lípidos neutros son esenciales para la producción de biodiesel.
Para detectar y cuantificar lípidos neutros, mezcle un volumen óptimo de suspensión de algas y etanol en un pocillo de placa de microtitulación negra. La pared celular y la membrana de las algas, que evitan que penetren la mayoría de las manchas, se vuelven permeables cuando se exponen al etanol. A continuación, combine el etanol con un colorante fluorescente soluble en lípidos: rojo Nilo. Agregue esta mezcla al pozo que contiene algas.
Coloque la placa de microtitulación en un espectrofotómetro. Establezca un programa que asegure la incubación con agitación intermitente para facilitar la interacción entre el tinte y las algas.
Como el rojo Nilo es hidrofóbico, no puede atravesar fácilmente el citoplasma. Los disolventes como el etanol, cuando se combinan con el rojo del Nilo, movilizan el tinte y lo ayudan a llegar a los cuerpos lipídicos dispersos en el citoplasma. El rojo Nilo penetra entonces en los cuerpos lipídicos y se solubiliza allí, tiñendo así los lípidos.
Las células deficientes en lípidos aparecen como anillos fluorescentes con cuerpos oscuros, mientras que las células ricas en lípidos muestran un brillo rojo anaranjado brillante donde se acumulan los cuerpos lipídicos.
Después de teñir las células, expóngalas a una longitud de onda que excite al máximo los lípidos neutros. Registre la fluorescencia resultante y correlaciónela con una curva de calibración para cuantificar los lípidos neutros en las muestras de prueba.
Para la cuantificación fluorométrica, preparar todas las muestras de algas a la misma concentración de biomasa y de la misma manera que los patrones utilizados en la medición. Para ello, suspenda las muestras presecadas en la cantidad adecuada de tampón de fosfato. Si es necesario, use un homogeneizador para facilitar la resuspensión de las células de algas secas.
Para cada muestra, mezcle 80 microlitros de una solución de etanol preparada al 30%, 10 microlitros de una solución preparada de Nile Red y 10 microlitros de suspensión de algas, en un solo pocillo de una placa de 96 pocillos. Para tener en cuenta adecuadamente la variabilidad de la medición de fluorescencia, realice cinco réplicas de cada muestra. A continuación, ejecute una curva de calibración de dos puntos con estándares preparados previamente, para tener en cuenta las variaciones diarias en el instrumento y la preparación.
Para realizar las mediciones de fluorescencia en un espectrofotómetro lector de placas de múltiples pocillos, configure los parámetros para agitar a 1.200 rpm y orbitar 3 milímetros durante 30 segundos, seguido de incubación a 40 grados Celsius durante 10 minutos. Otra agitación a 1.200 rpm, y órbita de 3 milímetros durante 30 segundos, y para registrar fluorescencia, con excitación a 530 nanómetros y emisión a 604 nanómetros. Luego, comience la carrera. Como paso final, convierta las mediciones de fluorescencia al contenido de aceite utilizando los resultados de los estándares internos.