$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Para la tinción negativa de virus envueltos, comience con la suspensión viral deseada. Incube los virus con glutaraldehído, un fijador químico. Tras la penetración, el glutaraldehído reticula las proteínas virales y los ácidos nucleicos, inactivando los virus y preservando la morfología, lo que facilita el manejo seguro de los virus. Transfiera esta mezcla a un plato de varios pocillos.
Conecte rejillas de microscopía electrónica de transmisión, TEM, que contienen cápsulas a una pipeta a través de un acoplador. Con la pipeta, aspire la mezcla fijadora de virus en la cápsula. Incube el conjunto de pipetas para que los virus se adsorban en las superficies de la rejilla.
Retire la mezcla. Lave la cápsula, eliminando los virus y fijadores no adherentes. Pipetea una solución de acetato de uranilo, un tinte a base de metales pesados, en la cápsula. Incubar para permitir que la mancha entre en contacto con los virus.
Los iones de uranilo se unen a glicoproteínas de membrana y fosfolípidos específicos en las superficies virales. Los iones pueden penetrar en los virus y unirse a las proteínas de la nucleocápside que encierran el genoma. Esta unión induce la agregación y deposición de iones de metales pesados alrededor del virus y estructuras virales específicas.
Separa la cápsula. Retire el exceso de mancha de las rejillas y seque al aire.
Durante las imágenes TEM, los haces de electrones de alta energía atraviesan el virus, lo que hace que las regiones teñidas de electrones densos en electrones del virus dispersen más electrones. Sin embargo, la baja densidad general de electrones del virus permite que los electrones atraviesen. El sistema de imágenes procesa estos electrones dispersos de manera diferente, produciendo una imagen de alto contraste.
Los virus teñidos negativamente aparecen más claros con nucleocápside oscura contra un borde oscuro, lo que facilita la visualización de la ultraestructura.
Para comenzar, mezcle la suspensión del virus con un volumen igual de glutaraldehído al 4% para lograr una concentración final de glutaraldehído al 2%. Usando fijador, inactive el virus durante al menos 24 horas. Descontamine el tubo y transfiéralo a la instalación BSL2-EM.
Después de esto, adjunte una captura cargada a la cuadrícula a una pipeta. Aspira la mezcla en la cápsula. Coloque la pipeta de lado con las rejillas orientadas horizontalmente durante 10 minutos.
A continuación, coge la pipeta y expulsa la mezcla de virus a un contenedor de residuos. Aspire 40 microlitros de agua desionizada en la cápsula y luego deseche el agua en un contenedor de desechos. Repita este lavado tres veces.
Después de esto, aspire 40 microlitros de 1% de UA o 1% de PTA en la cápsula durante 30 segundos. Retire la cápsula de la pipeta. Con papel de filtro, seque las rejillas con un secado, luego deje que las rejillas se sequen al aire.