Tinción de depósitos de amiloide: una técnica para visualizar fibrillas de amiloide utilizando un colorante a base de oligotiofeno para la obtención de imágenes de fluorescencia en secciones de tejido

0 vistas3:38 min • July 8th, 2025

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La deposición de agregados de proteínas mal plegados: los amiloides en el espacio tisular extracelular son características de diversas enfermedades proteopáticas. Estos amiloides están compuestos por láminas beta que se alinean perpendicularmente al eje fibrilar, formando repeticiones cruzadas de láminas beta.

Para detectar los depósitos de amiloide con tinción de ácido heptámero-formil tiofeno acético, o hFTAA, tome una sección de tejido fijada en formol e incluida en parafina que contenga depósitos de amiloide.

Trate las secciones con xileno para desparafinar el tejido y mejorar la accesibilidad a la tinción en los pasos posteriores. Agregue unas gotas de la solución de tinción de hFTAA sobre la sección de tejido e incube para permitir que el tinte penetre en el tejido.

El hFTAA contiene siete unidades de tiofeno conjugadas que contienen azufre y grupos carboxilo terminales unidos a la columna vertebral de tiofeno. Estas características proporcionan flexibilidad al tinte libre. Durante la incubación, los grupos carboxilo finales del colorante se unen a los residuos de aminoácidos cargados positivamente que recubren el surco hidrofóbico de la lámina beta a través de interacciones electrostáticas.

En consecuencia, se produce un cambio conformacional que reduce la flexibilidad estructural del colorante hFTAA unido. Esto mejora el rendimiento cuántico de fluorescencia del colorante unido, la proporción relativa de fotones absorbidos frente a emitidos. Este proceso ayuda a mejorar la visualización de los amiloides.

Observe el portaobjetos bajo un microscopio de fluorescencia. La presencia de manchas de fluorescencia amarillo-roja indica la presencia de amiloides en secciones de tejido.

Prepare la solución de oligotiofeno conjugado luminiscente resuspendiendo hFTAA liofilizado en hidróxido de sodio de dos milimolares para preparar una solución madre de 1 mg/ml. Transfiera la solución madre a un vial de vidrio y guárdela a cuatro grados centígrados.

Si se utilizan secciones fijadas en formol e incluidas en parafina, desparafinar en xileno durante la noche. El día de la tinción, sumerja las secciones en baños consecutivos de etanol al 99%, etanol al 70%, dH2O y PBS, durante 10 minutos, cada vez. Luego, deje que las secciones de tejido se sequen en condiciones ambientales.

Mientras el tejido se seca, prepare una solución de trabajo de hFTAA diluyendo el caldo 1:10,000 en PBS. Cuando el tejido esté seco, agregue gotas de la solución de trabajo hFTAA a cada sección de tejido para cubrirlo. Incubar durante 30 minutos a temperatura ambiente.

Enjuague la solución de tinción con 500 microlitros de PBS y luego sumerja el portaobjetos en el baño de PBS durante 10 minutos.

Después de dejar que la sección se seque en condiciones ambientales, móntelo con un medio de montaje de fluorescencia. Deje que el medio de montaje se asiente durante la noche.

La detección de amiloide se puede realizar directamente después del montaje, o incluso sin montaje. Sin embargo, si el objetivo del experimento es recopilar información espectral de alta calidad, se prefiere la incubación nocturna.

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Última actualización: 22 agosto 2026