Tinción TTC de cortes de tejido cerebral de rata: un procedimiento de tinción para diferenciar el tejido viable y necrótico en cortes de tejido después de una lesión por isquemia-reperfusión

0 vistas3:40 min • July 8th, 2025

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Durante la isquemia cerebral, el flujo sanguíneo alterado al cerebro reduce el suministro de oxígeno y nutrientes al tejido, causando daño cerebral. Después de una isquemia breve, a medida que se restablece el flujo sanguíneo al cerebro, la reperfusión con un mayor suministro de oxígeno da como resultado una sobreproducción de especies de iones reactivos, lo que lleva a un daño tisular oxidativo, conocido como lesión por isquemia-reperfusión.

Para evaluar el daño cerebral después de una lesión por isquemia-reperfusión en un modelo de rata, primero se recolecta el cerebro de rata. Enjuague en un tampón frío para eliminar los desechos y la sangre. Seccionar el cerebro para obtener cortes coronales del grosor deseado. Transfiera con cuidado las rodajas a una bandeja que contenga tampón, con las superficies anteriores hacia arriba, para su posterior tinción.

Agregue una solución de cloruro de trifenil tetrazolio tibio, TTC, un tinte redox soluble en agua, sobre las rodajas de cerebro. Incube en condiciones de oscuridad, ya que TTC es sensible a la luz. TTC ingresa a las células dentro de la sección de tejido.

En las células vivas, la enzima succinato deshidrogenasa mitocondrial activa en presencia de cofactores reduce la TTC, incolora cuando se oxida, en formazán rojo insoluble en agua, tiñendo las células viables de rojo rojo intenso. Sin embargo, las células necróticas carecen de actividad deshidrogenasa; por lo tanto, TTC permanece en forma oxidada, tiñendo las células de blanco.

Después de la incubación, transfiera los cortes de cerebro a una bandeja de imágenes. Separe los hemisferios en el plano sagital. Imagina los cortes de cerebro.

El tejido sano aparece rojo, mientras que el tejido dañado aparece blanco, diferenciando el tejido necrótico del tejido viable y permitiendo estimar la extensión del daño tisular.

Después de extraer el cerebro, incluido el tronco encefálico, del cráneo, coloque el cerebro, con su lado ventral hacia arriba, en la matriz cerebral. Dependiendo del peso de los animales, elija el tamaño correcto de la matriz de acero inoxidable del cerebro. Usando cuchillas, restrinja las partes frontal y caudal del cerebro. Luego, coloque las cuchillas parcialmente en los canales entre la primera y la última cuchilla.

Cuando todas las cuchillas estén insertadas y dispuestas en paralelo, presione todas las cuchillas hacia abajo con la palma al mismo tiempo para cortar el cerebro en cortes coronales de 2 milímetros. Luego, sujete las cuchillas firmemente a lo largo de los lados con dos dedos y retírelas junto con el cerebro cortado de la matriz. Coloque las rodajas de cerebro una por una en una bandeja, asegurándose de que la superficie anterior de cada rebanada esté siempre hacia arriba.

A continuación, vierta una solución tibia de cloruro de trifenil tetrazolio al 1% y PBS en las rodajas de cerebro e incube durante 8 minutos a 37 grados centígrados en la oscuridad. Después de la incubación, transfiera las rodajas de cerebro a una bandeja de plástico azul para capturar imágenes. Organice los cortes de cerebro en orden secuencial desde la parte frontal a la caudal y use un bisturí para separar los hemisferios en el plano sagital.

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Última actualización: 15 agosto 2026