Name: Un método general para la evaluación de incubación de sacarosa en ratas Deseo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-11-04T12:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 44 s
Description: Aprende a evaluar la incubación del deseo de sacarosa en ratas mediante autoadministración y abstinencia forzada. Este método permite estudiar los mecanismos de recaída en adicciones y analizar respuestas a señales ambientales asociadas.

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La producción de este manuscrito y de vídeo fue apoyada por el Instituto Nacional sobre Abuso de Drogas / Institutos Nacionales de Salud de subvención R15 DA016285-02, la Western Washington University Actividades de Investigación Biomédica en Neurociencia Iniciativa, y la Western Washington University.

1. Temas de animales <ol><li> Mujer ratas Long-Evans son 3 meses de edad en el inicio de un estudio. Las ratas son Simonsen derivados (Gilroy, California, EE.UU.), criado en la Western Washington University vivero y son alojados individualmente en una de 12 horas atrás ciclo día / noche (las luces apagadas en 0700) con Purina Mills Inc. Mazuri Pellets de roedores (Gray Summit , MO, EE.UU.) y agua ad libitum disponibles. </li><li> Todo el entrenamiento y la prueba se lleva a cabo entre 0900-1300 con las cohortes de las ratas siempre entrenado y probado, al mismo tiempo todos los días. </li><li> Las ratas se pesaron todos los lunes, miércoles y viernes durante la duración del estudio. </li><li> Inmediatamente antes de la fase de entrenamiento, las ratas se ven privados de agua durante aproximadamente 20 h para fomentar la auto-administración de sacarosa en el primer día de entrenamiento. </li></ol> 2. Procedimientos de comportamiento Todos los procedimientos de conducta operante el uso estándar de las cámaras de condicionamiento operante (Med Associates Inc., St. Albans, VT, EE.UU.) con una bomba de infusión (Razel Scientific Instruments, St. Albans, VT, EE.UU.), ubicado en la parte superior de cada cámara de condicionamiento operante. Cámaras de condicionamiento operante están encerrados en armarios que atenúan el sonido con los ventiladores (Western Washington University, EE.UU.). Todas las condiciones experimentales y de recolección de datos son controlados por Med IV para PC software (Med Associates Inc., St. Albans, VT, EE.UU.). Cámaras de condicionamiento operante (30 x 20 x 24 cm) contienen dos palancas (una fija y retráctil uno), un generador de tonos, una luz blanca de estímulo por encima de la palanca retráctil, y una luz roja en la casa de la pared de enfrente. La bomba de infusión proporciona la sacarosa en un recipiente de recompensa a la derecha de la palanca activa. Las palancas son de 10 cm desde el suelo de rejilla. Cuatro fotorayos infrarrojos atraviesan cada cámara. Los largueros delanteros son cada 10,5 cm de las paredes laterales y la parte vigas de cada una de 6 cm de las paredes laterales. Cada haz es de 4,5 cm por encima del piso de barras de acero inoxidable. Las vigas de unavolver a configurar para contar el número de roturas completas. El número total de interrupciones del haz se registran durante las pruebas de capacitación y el deseo. Con la excepción de la restricción de agua antes de la primera sesión de entrenamiento, las ratas son libitum de alimentos y agua a ambos en jaulas en casa y en las cámaras de condicionamiento operante. Cámaras se encuentran en una sala de ensayos dedicados que, como en el vivero, se encuentra en un ciclo de luz de marcha atrás. Las ratas son transportados en jaulas en casa entre las habitaciones en un carro que está cubierto con una tela bloqueo de la luz. Al final de cada sesión, las ratas son devueltos a las jaulas de casa. Hay tres fases en el experimento típico: La formación, la abstinencia forzada, y pruebas. La prueba es el deseo el que la sesión se evalúa. Evaluamos el deseo en dos procedimientos de ensayo general, según el estudio. Estos dos procedimientos se describen en las secciones 2.3.1 y 2.3.2. <ol><li> Formación <ol><li> En el experimento típico, las ratas pasan 2 h / día10 días consecutivos en las cámaras de condicionamiento operante en el que se permite a la prensa retráctil (activo) de palanca para la entrega de 0,2 ml de solución de sacarosa al 10% en el receptáculo a la derecha de la palanca. </li><li> Esta respuesta también se activa un estímulo complejo que consta de un tono (2 kHz, 15 dB sobre el ruido ambiental) y la luz blanca. El estímulo compuesto tiene una duración de 5 s, y es seguido por un tiempo de 40 s a cabo, durante el cual presiona la palanca de activos se registran pero no tienen ninguna consecuencia programada. </li><li> Una respuesta en las personas inactivas (estacionario) la palanca no tiene ninguna consecuencia programada, pero las prensas se registran. El número de interrupciones del haz se registran durante el entrenamiento y de pruebas. Todas las medidas de respuesta y del aparato locomotor se registran en los cursos de tiempo (2 minutos contenedores), pero generalmente se presentan como totales por sesión. </li></ol></li><li> La abstinencia forzada. Las ratas permanecen en jaulas de casa por la duración de la abstinencia forzada. El típico períodos de abstinencia forzada que usamos son para que las ratas a prueba ªe día inmediatamente posterior al último día de entrenamiento (Día 1 de la abstinencia forzada) o 30 días después del último día de entrenamiento (30 días de abstinencia forzada). </li><li> Pruebas <ol><li> Extinción, sin señales. En este procedimiento de pruebas, las ratas se permitió por primera vez a presionar la palanca activa en las mismas condiciones a los entrenamientos con la excepción de que la respuesta no tiene consecuencias y la duración de la sesión es de 1 h. Las ratas experiencia de al menos seis de estas sesiones de extinción en el día de prueba. Cada sesión de extinción está separada por un período de 5 minutos donde se retira la palanca activa y la luz de la casa está apagado. "Extinción" se indica si la palanca activa la respuesta se ha reducido a menos de 20 pulsaciones / h. Algunas ratas requieren un período de sesiones. La próxima sesión (después de otros 5 minutos de retraso) es la sesión de pruebas en ratas continuación, puede pulsar el tono de + señal de luz que fue emparejado inicialmente con cada entrega de la sacarosa durante el entrenamiento. </li><li> La extinción de las señales. En este abreviard Procedimiento de ensayo, las ratas se les permite a presionar la palanca activa en condiciones idénticas a las de formación, salvo que la sacarosa no se entrega. </li></ol></li><li> Palanca inactiva presionando se utiliza como una medida de discriminación de la palanca. También es, junto con las roturas de haz de luz, como una medida de la activación del motor inespecífico. Cambios motora vs motivación complicar la interpretación del comportamiento de deseo. La palanca inactiva la respuesta y los datos de haz de luz rompen son útiles en el esclarecimiento de las contribuciones de motor vs motivación para el deseo, como son los grupos de comparación en los estudios farmacológicos en las ratas que respondieron a una tasa alta de sacarosa o de otro alimento tienen el reto de un compuesto deseo potenciales que afectan (por ejemplo, 7 , 8). </li></ol> 3. Manipulaciones representante para afectar Deseo sacarosa después de períodos variables de abstinencia forzada El método general descrito aquí proporciona una manera de sondear el comportamiento y neurobiología determinaciónnoches de ansiedad después de períodos variables de abstinencia forzada. Aquí descritos son métodos relacionados con resultados representativos en la sección 4. <ol><li> Saciedad. Algunas ratas recibieron botellas de 10% de sacarosa en sus jaulas para la h 17, inmediatamente antes de la prueba 8. Ratas en este estudio se analizaron mediante el procedimiento de extinción, sin señales. </li><li> El enriquecimiento ambiental. Durante el período de abstinencia forzada, algunas ratas permanecieron en la vivienda individual (controles), mientras que otros fueron trasladados a un grande (36 "de ancho x 20" profundidad x 40 "de altura, productos de calidad Cage, Portland, OR, EE.UU.), la jaula con tres cohortes (enriquecido). Los animales enriquecidos había varios juguetes en su medio ambiente, incluyendo tubos de PVC y también recibieron juguetes nuevos cada M, W, F 10. ratas en este estudio se analizaron mediante el procedimiento de extinción, sin señales. </li><li> Provocación farmacológica. En el día de pruebas, las ratas fueron tratadas previamente con una dosis del antagonista de la dopamina D1 SCH 23390. Las ratas en este estudio were probado con la extinción del procedimiento con indicaciones. </li></ol> 4. Los resultados representativos: <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3335/3335fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1 Representante de Formación y los datos de prueba para un experimento de incubación de sacarosa antojo. Los puntos de datos indican la media ± SEM. El tamaño del grupo de la Figura 1a es de 77 ratas y tamaños de la figura 1b grupo varió desde 11 hasta 12 por grupo. * Diferencia significativa desde el día 1 de grupo, p &lt;0,05. Esta cifra es una adaptación de los datos en 8 con el permiso de Springer. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3335/3335fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2 Efecto de saciedad sacarosa sobre el ansia de sacarosa después de 1 ó 30 días de abstinencia forzada. El tamaño del grupo son 8-9 por grupo. * Diferencia significativa desde el día 1 del grupo, la diferencia † significativa del grupo control, p &lt;0,05. Esta cifra se adaptade 9 con permiso de Elsevier. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3335/3335fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3 Un mes de enriquecimiento ambiental reducido deseo sacarosa. Tamaño de los grupos están a 8 ratas. * Diferencia significativa desde el día 1, la diferencia † significativa del grupo control, p &lt;0,05. Esta cifra es una adaptación de 10 con permiso de Wolters Kluwer Health. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/3335/3335fig4.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 4"> Figura 4 sistémico SCH 23390 deseo disminución de sacarosa con mayor eficacia al cabo de un día de abstinencia forzada. El tamaño del grupo son 8.12 por cada grupo. * Diferencia significativa desde el día 1 del grupo, la diferencia † significativo de grupo de la dosis 0, p &lt;0,05. Esta cifra es una adaptación de 8 con el permiso de Springer. <ol><li> La figura 1 muestra los datos representativos entrenamiento y de pruebas para las ratas la auto-administración de sacarosa (FiguraUno superior) y luego responder en la extinción con la señal de sacarosa pares disponibles (Figura 1 abajo). Como se ve, las ratas responden de forma selectiva en la palanca activa durante el entrenamiento y durante la prueba. Curiosamente, la respuesta inactivos y la actividad locomotora muestran algunos de incubación, aunque el efecto es más robusta en la palanca activa de responder. </li><li> La Figura 2 muestra el efecto de saciedad con sacarosa sobre el ansia de sacarosa después de 1 ó 30 días de abstinencia forzada. Saciedad reduce la extinción, sin señales de responder después de cualquiera de los períodos de abstinencia forzada, pero la respuesta sólo se reduce a la señal de sacarosa sola en ratas que sólo tenía un día de abstinencia forzada. </li><li> Como se muestra en la Figura 3, el enriquecimiento ambiental reducido Extinción incubados sin señal de responder y responder a la señal de sacarosa sola comportamientos a los niveles encontrados en un solo día de la abstinencia forzada. </li><li> La figura 4 muestra un efecto de abstinencia dependen de SCH 23390 en la extinción de las señales de responder. SCH 23390 fue más effective a reducir el deseo sacarosa después de 1, frente a 30, los días de abstinencia forzada. </li></ol>

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<li>Shaham, Y., Shalev, U., Lu, L., De Wit, H., Stewart, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+reinstatement+model+of+drug+relapse%3A+history%2C+methodology+and+major+findings%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">The reinstatement model of drug relapse: history, methodology and major findings.</a> Psychopharmacology (Berl). 168, 3-20 (2003).</li>
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<li>Holland, P. C., Bouton, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampus+and+context+in+classical+conditioning%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Hippocampus and context in classical conditioning.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 9, 195-202 (1999).</li>
<li>Epstein, D. H., Preston, K. L., Stewart, J., Shaham, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+a+model+of+drug+relapse%3A+an+assessment+of+the+validity+of+the+reinstatement+procedure%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">Toward a model of drug relapse: an assessment of the validity of the reinstatement procedure.</a> Psychopharmacology (Berl). 189, 1-16 (2006).</li>
<li>Kupferschmidt, D. A., Brown, Z. J., Erb, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Procedure+for+Studying+the+Footshock-Induced+Reinstatement+of+Cocaine+Seeking+in+Laboratory+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A Procedure for Studying the Footshock-Induced Reinstatement of Cocaine Seeking in Laboratory Rats.</a> J. Vis. Exp. (47), (2011).</li>
</ol>

Todos los procedimientos que se siguen las pautas establecidas en los &quot;Principios de Cuidado de Animales de Laboratorio&quot; (publicación del NIH no. 86-23) y fueron aprobados por el Cuidado de Animales de la Universidad Western Washington institucional y el empleo.

Los procedimientos que aquí describimos podrían ser identificados como los procedimientos de reintegro, aunque esto es técnicamente inexacto como presionar una palanca para el taco no se extingue antes de la sesión de pruebas de deseo. En un procedimiento de reintegro típicos, respondiendo con señales de pares de recompensa se ​​extingue y luego en &quot;restablecer&quot; con la administración de una presentación no contingente de la recompensa (priming inducida por reintegro) o un factor de estrés como estímulo eléctri...

<table border="1"><tbody><tr><td> Artículo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Enriquecimiento de la jaula </td><td> Calidad de la Empresa de Cage </td><td> FH-36 ½ T-N </td></tr><tr><td> Cámara operante </td><td> Med Asociados </td><td> MED-008-CT-B3 </td></tr><tr><td> SCH 23390 </td><td> Sigma </td><td> D054 </td></tr></tbody></table>

un método general para la evaluación de incubación de sacarosa en ratas deseo

A General Method for Evaluating Incubation of Sucrose Craving in Rats

Para alguien con un ansia por la comida de alimentos dieta restringida, en respuesta al alimento de pares de señales puede servir como un punto de transición clave de comportamiento entre la abstinencia y la recaída a los alimentos tomando una. Ansia por la comida conceptualizada de esta forma es similar a la ansia por la droga en respuesta a las señales de pares de drogas. Una rica literatura se ha desarrollado en torno a la comprensión de los determinantes del comportamiento y neurobiología de la ansiedad por tomar drogas, nosotros y otros se han centrado recientemente en la traducción de las técnicas de investigación de la adicción básicos para entender mejor la adicción a las conductas de tipo relacionados con la alimentación 2.4. Como se hace en los estudios previos de ansia por la droga, se analiza el comportamiento de sacarosa deseo mediante la utilización de un modelo de rata de recaída. En este modelo, las ratas la auto-administración de cualquier fármaco o alimento en las sesiones durante varios días. En una sesión, la palanca de responder entrega el premio junto con un tono + estímulo luminoso. Comportamiento deseo es entonces definido operacionalmente como responder de unasiguiente período de sesiones, donde la recompensa no está disponible. Las ratas de forma fiable responderá por el tono + estímulo de luz, probablemente debido a su adquirió propiedades condicionadas de refuerzo 5. Este comportamiento se refiere a veces como la búsqueda de la sacarosa o la reactividad de referencia. En la discusión actual se utilizará el término &quot;ansia por la sacarosa&quot; subsumir tanto de estas construcciones. En la última década, nos hemos centrado en cómo la longitud de tiempo después de recompensar a la auto-administración ansia recompensa influencias. Curiosamente, las ratas aumentan la respuesta de la señal de recompensa emparejado en el transcurso de varias semanas de un período de forzada abstinencia. Este &quot;incubación del deseo&quot; se observa en las ratas que se han auto-administrados ya sea de alimentos o drogas de abuso 4,6. Este aumento en función del tiempo en el deseo de que hemos identificado en el modelo animal puede tener gran interés para la droga y comportamientos humanos de alimentos adicción. Aquí se presenta un protocolo para la incubación de la evaluación de sucrosí deseo en las ratas. Variantes del procedimiento se indicará donde el deseo es evaluado como de responder durante un discreto sacarosa pares señal después de la extinción de la palanca de presión dentro de la sacarosa de auto-administración de contexto (la extinción, sin señales) o como respuesta a las señales pares de sacarosa en un contexto general de la extinción (con señales de extinción).

Responder a las señales de alimentos o medicamentos por pares aumenta a lo largo de un período de abstinencia y esto puede relacionarse con una mayor susceptibilidad a las conductas recaída. Aquí detallamos un procedimiento para la evaluación de esta &quot;incubación del deseo&quot; en las ratas que se han auto-administrado sacarosa.

Un método general para la evaluación de incubación de sacarosa en ratas Deseo

Para una persona con una dieta restringida, el deseo intenso de comer en respuesta a estímulos asociados con los alimentos puede servir como un punto de transición conductual clave entre la abstinencia y...

El objetivo general de este experimento es evaluar el deseo de sacarosa en ratas tras un período breve o prolongado de abstinencia forzosa de la autoadministración de sacarosa. Esto se logra primero permitiendo que las ratas se administren sacarosa durante 10 sesiones diarias de autoadministración. Luego, las ratas se someten a un período de abstinencia forzosa de la autoadministración de sacarosa simplemente manteniéndolas en sus jaulas individuales durante uno o 30 días.El paso final del procedimiento consiste en devolver a las ratas al entorno de automedicación y permitirles responder a estímulos que previamente se asociaron explícitamente con la sacarosa y la automedicación, pero no con la sacarosa en sí. En última instancia, los resultados muestran cómo la tasa de respuesta ante estímulos emparejados con sacarosa varía según la duración de la abstinencia forzada. Como hemos informado previamente, el deseo de sacarosa aumenta o incuba durante un mes de abstinencia forzada de sacarosa.Los experimentos de autominicistración pueden realizarse mediante este procedimiento para investigar los sustratos conductuales y neurobiológicos de la incubación del deseo. La principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes es que la duración del tiempo posterior a la última sesión de autominicistración puede variar. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la investigación sobre adicciones, en particular, cómo la duración de un período de abstinencia forzada afecta al deseo.Las implicaciones del uso de esta técnica se extienden hacia la terapia para los comportamientos de recaída. En particular, dado que la gran mayoría de los individuos han recaído tras un período prolongado de abstinencia. Aunque este método puede proporcionar información sobre el deseo de azúcar.También puede aplicarse a otras recompensas, como las drogas de abuso. Este estudio utiliza ratas macho Long Evans que tienen tres meses de edad al inicio del estudio. Las ratas se mantienen individualmente en un ciclo inverso de día y noche de 12 horas, con alimento en pellets y agua disponibles ad libitum antes de comenzar el procedimiento; posteriormente, se pesan todos los animales experimentales y de control.Los animales deben pesarse cada lunes, miércoles y viernes durante toda la duración del estudio. Por último, inicie la privación de agua aproximadamente 20 horas antes de comenzar el estudio sobre el anhelo de sacarosa. Esto fomentará la autominiistración de sacarosa en el primer día de entrenamiento.Toda la capacitación y las pruebas se realizan entre las 09:00 y las 13:00 horas, y los grupos siempre se entrenan y se evalúan a la misma hora todos los días en la sala de pruebas. Las cámaras de condicionamiento operante están encerradas en gabinetes atenuadores de sonido con ventiladores de ventilación. Las cámaras utilizadas en este estudio tienen dimensiones de 30 por 20 por 24 centímetros y contienen dos palancas: una palanca fija y una palanca retráctil.Ambas palancas están colocadas a 10 centímetros del suelo de la rejilla. Además, las cámaras contienen un generador de tonos, una luz de estímulo blanca situada encima de la palanca retráctil y una luz de ambiente roja en la pared opuesta. Para evaluar la actividad locomotora, las cámaras están equipadas con haces de foto sensores infrarrojos; en estas cámaras, los haces frontales están a 10,5 centímetros de las paredes laterales y los haces laterales están cada uno a seis centímetros de las paredes laterales.Cada viga se encuentra a 4,5 centímetros por encima del suelo de barras de acero inoxidable. Añada solución fresca de sacarosa al 10% a la bomba de infusión ubicada en la parte superior de cada cámara. Programe el software asociado para activar la bomba y administrar 0,2 mililitros de solución de sacarosa al 10% en el receptáculo situado a la derecha de la palanca.Además, utilizando el programa de software asociado, la cámara se configura de modo que al presionar la palanca retráctil o activa también se active un estímulo compuesto formado por un tono y una luz blanca. El estímulo compuesto debe durar cinco segundos y debe ir seguido de un tiempo de espera de 42 segundos, durante el cual los pulsos sobre la palanca activa serán registrados pero no tendrán ninguna consecuencia programada. La palanca fija o inactiva está programada para no tener ninguna consecuencia al ser presionada, sino solo para registrar el número de pulsos.Esencialmente, el software debe registrar todas las pulsaciones realizadas en ambas palancas y el número de interrupciones del haz de infrarrojos durante cada sesión de entrenamiento. En el primer día de entrenamiento, coloque la rata en la cámara de condicionamiento operante durante un total de dos horas. Durante este tiempo, se permite que la rata se mueva libremente y puede presionar la palanca retráctil para obtener una solución de sacarosa al 10 % o puede presionar la palanca estacionaria inactiva.Todas las medidas de respuesta y locomoción se registran como series temporales en intervalos de dos minutos, pero por lo general se informan como totales por sesión. Una vez transcurridas dos horas, retire la rata y devuélvala a su jaula de alojamiento. Asegúrese de limpiar minuciosamente la cámara de condicionamiento operante para eliminar cualquier residuo o señales olfativas orales que puedan interferir con las sesiones posteriores de entrenamiento.Durante el período de abstinencia forzada, las ratas permanecen en la jaula de alojamiento con alimento en pellets y agua disponibles ad libitum. El período de abstinencia forzada puede prolongarse durante el tiempo que sea necesario. Un marco temporal típico para los estudios de incubación del deseo es de uno a 30 días.Además, pueden administrarse bajo condiciones de control otros parámetros que se deseen probar, como la sacarosa, la saciedad o el efecto del enriquecimiento ambiental. Durante este período, se presentan aquí dos paradigmas de prueba. El primero de ellos ilustra la extinción sin estímulos condicionados.Primero prepare la cámara de condicionamiento operante para replicar las condiciones de entrenamiento, con la excepción de que el tono y la luz blanca no se activan en respuesta a la depresión de la palanca activa. Programe la cámara para realizar seis sesiones de extinción de una hora cada una, separadas por un período de cinco minutos en el que se apaga la luz ambiental y se retrae la palanca activa, y que transcurran sin interrupciones. Luego, una vez completado el período de abstinencia forzada, coloque la rata en la cámara de condicionamiento operante y permita que responda en la palanca activa durante seis sesiones de extinción de una hora.Se indica la extinción conductual si la respuesta en la palanca activa se ha reducido a menos de 20 pulsaciones por hora en la sexta sesión de extinción. Si no ha ocurrido la extinción, permita que la rata realice una séptima sesión de extinción. La siguiente sesión tras otro retraso de cinco minutos es la sesión de prueba de una hora, en la que las ratas pueden pulsar para obtener la señal auditiva más la luz que inicialmente se asoció con cada administración de sacarosa durante el entrenamiento, para el segundo procedimiento de prueba: extinción con señales, la cámara de condicionamiento operante se configura para replicar las condiciones de entrenamiento.Con la excepción de que no se administra solución de sacarosa al presionar la palanca activa, la rata que se va a probar se coloca en la cámara de condicionamiento operante durante un período de dos horas. La presión de la palanca inactiva junto con los datos de interrupción del haz también pueden utilizarse como medida de activación motora no específica. Dado que los cambios motores frente a los motivacionales pueden complicar potencialmente la interpretación del comportamiento de reactividad a Q.Esta figura muestra datos típicos obtenidos de un grupo de 77 ratas normales entrenadas para autoadministrar sacarosa. De acuerdo con el paradigma de entrenamiento descrito en este protocolo, puede observarse que las ratas responden selectivamente en la palanca activa durante el entrenamiento. Aquí se muestran los datos obtenidos de una sesión de prueba.Se observa que las ratas responden en extinción con la extinción de la cola emparejada disponible y con señales. Nuevamente, las ratas responden selectivamente en la palanca activa durante la prueba, y la respuesta inactiva y la actividad locomotora muestran algo de incubación, aunque el efecto es más robusto en la respuesta en la palanca activa; los tamaños de grupo variaron entre 11 y 12 por grupo, y se observó una diferencia significativa entre los grupos del día uno y del día 30 con un valor de P menor a 0,05. Esta figura muestra el efecto de la saciedad por sacarosa sobre la reactividad a la sacarosa Q tras uno o 30 días de abstinencia forzada; algunas ratas recibieron botellas con sacarosa al 10 % en sus jaulas domésticas durante las 17 horas inmediatamente previas a la prueba, utilizando la extinción sin señales.El procedimiento mostró que la saciedad redujo la extinción sin señales en la respuesta tras cualquier período de abstinencia forzada, pero solo redujo la respuesta para la sacarosa Q en ratas que tuvieron solo un día de abstinencia forzada; los tamaños de los grupos fueron de ocho a nueve por grupo. El asterisco indica una diferencia significativa respecto al grupo del día uno, y el símbolo de cruz indica una diferencia significativa respecto al grupo control, donde P es menor que 0,05. Estos resultados ilustran que un mes de enriquecimiento ambiental redujo la reactividad a la sacarosa Q en ratas.Durante el período de abstinencia forzada, las ratas del grupo control permanecieron en jaulas individuales, mientras que el grupo enriquecido fue trasladado a jaulas grandes con varios juguetes en su entorno, incluyendo tubos de PVC. A estas ratas también se les proporcionaron juguetes novedosos cada lunes, miércoles y viernes. Las ratas de este estudio fueron evaluadas mediante el procedimiento de extinción sin Q'S.El enriquecimiento ambiental redujo la extinción incubada sin conductas de respuesta a Q y respuesta por la sacarosa Q sola a niveles observados tras solo un día de abstinencia forzada; cada grupo consistió en ocho ratas. El asterisco indica una diferencia significativa respecto al grupo del día uno, y el símbolo de cruz indica una diferencia significativa respecto al grupo control donde P es igual a menos de 0,05. Aquí, las ratas fueron pretratadas con una dosis del antagonista de la dopamina D1 SCH23390 el día de la prueba y evaluadas utilizando el procedimiento de extinción con QS.Puede observarse que la disminución sistémica de s CH 2 3 3 9 0 reduce la búsqueda de sacarosa de manera más efectiva tras un día de abstinencia forzada; cada grupo constó de ocho a doce ratas por grupo. El asterisco indica una diferencia significativa respecto al grupo del día uno. El símbolo de cruz indica una diferencia significativa respecto al grupo control, donde P es igual a menos de 0,05.Al intentar este procedimiento, es importante recordar equilibrar los grupos asignados a las condiciones de abstinencia forzada en función de sus comportamientos durante el entrenamiento. Tras seguir este procedimiento, se pueden realizar otros métodos, como la autominiistración de fármacos, para responder preguntas adicionales, como la generalidad del efecto de incubación del deseo tras su desarrollo. Esta técnica proporcionó a los investigadores en el campo de la adicción una forma de explorar los sustratos neuronales de los cambios dependientes de la abstinencia en el deseo en ratas.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo realizar un estudio que mida la abstinencia dependiente de sacarosa y el deseo de sacarosa en ratas, evaluando la respuesta de las ratas ante una Q previamente asociada con la autoadministración de sacarosa.

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Neurociencia

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