Name: Una introducción a las avispas parasitarias de Drosophila Y la respuesta inmune antiparasitario (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 4 s
Description: Aprende a mantener cultivos de avispas parasitoides en hospederos Drosophila y disecar glándulas linfáticas y cuerpos grasos. Este método permite analizar respuestas inmunes mediante inmunocitoquímica y microscopía de fluorescencia.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Estamos muy agradecidos con el profesor Todd Schlenke Trichopria de mosca de la fruta, el profesor Tony Ip cepas de moscas transgénicas, y el Prof. Carl Hashimoto para el anti-Spätzle anticuerpos. Damos las gracias a los miembros actuales y anteriores del laboratorio por sus contribuciones a esta presentación. Este trabajo fue apoyado por las siguientes subvenciones: a partir de los NIH (S06 GM08168, RISE 41399-009, y G12 RR03060-), el USDA (NRI / USDA CSREES 2006-03817 y 2009-35302-05277) y PSC-CUNY.

<ol><li>Schlenke, T. A., Morales, J., Govind, S., Clark, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrasting+infection+strategies+in+generalist+and+specialist+wasp+parasitoids+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Contrasting infection strategies in generalist and specialist wasp parasitoids of Drosophila melanogaster.</a> PLoS Pathog. 3, 1486-1501 (2007).</li>
<li>Chiu, H., Morales, J., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+immuno-electron+microscopy+localization+of+p40%2C+a+protein+component+of+immunosuppressive+virus-like+particles+from+Leptopilina+heterotoma%2C+a+virulent+parasitoid+wasp+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gen.+Virol%22%5BJournal%5D)">Identification and immuno-electron microscopy localization of p40, a protein component of immunosuppressive virus-like particles from Leptopilina heterotoma, a virulent parasitoid wasp of Drosophila.</a> J. Gen. Virol. 87, 461-470 (2006).</li>
<li>Gueguen, G., Rajwani, R., Paddibhatla, I., Morales, J., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VLPs+of+Leptopilina+boulardi+share+biogenesis+and+overall+stellate+morphology+with+VLPs+of+the+heterotoma+clade%5BTitle%5D)+AND+%22Virus+Res%22%5BJournal%5D)">VLPs of Leptopilina boulardi share biogenesis and overall stellate morphology with VLPs of the heterotoma clade.</a> Virus Res. 160, 159-165 (2011).</li>
<li>Paddibhatla, I., Lee, M. J., Kalamarz, M. E., Ferrarese, R., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+for+sumoylation+in+systemic+inflammation+and+immune+homeostasis+in+Drosophila+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Role for sumoylation in systemic inflammation and immune homeostasis in Drosophila larvae.</a> PLoS Pathog. 6, e1001234(2010).</li>
<li>Sorrentino, R. P., Carton, Y., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+immune+response+to+parasite+infection+in+the+Drosophila+lymph+gland+is+developmentally+regulated%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cellular immune response to parasite infection in the Drosophila lymph gland is developmentally regulated.</a> Dev. Biol. , 243-265 (2002).</li>
<li>Sorrentino, R. P., Melk, J. P., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+contributions+of+dorsal+group+and+JAK-Stat92E+pathway+genes+to+larval+hemocyte+concentration+and+the+egg+encapsulation+response+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of contributions of dorsal group and JAK-Stat92E pathway genes to larval hemocyte concentration and the egg encapsulation response in Drosophila.</a> Genetics. 166, 1343-1356 (2004).</li>
<li>Jung, S. H., Evans, C. J., Uemura, C., Banerjee, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+lymph+gland+as+a+developmental+model+of+hematopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The Drosophila lymph gland as a developmental model of hematopoiesis.</a> Development. 132, 2521-2533 (2005).</li>
<li>Krzemien, J., Crozatier, M., Vincent, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ontogeny+of+the+Drosophila+larval+hematopoietic+organ%2C+hemocyte+homeostasis+and+the+dedicated+cellular+immune+response+to+parasitism%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Ontogeny of the Drosophila larval hematopoietic organ, hemocyte homeostasis and the dedicated cellular immune response to parasitism.</a> Int. J. Dev. Biol. 54, 1117-1125 (2010).</li>
<li>Martinez-Agosto, J. A., Mikkola, H. K., Hartenstein, V., Banerjee, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+hematopoietic+stem+cell+and+its+niche%3A+a+comparative+view%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">The hematopoietic stem cell and its niche: a comparative view.</a> Genes Dev. 21, 3044-3060 (2007).</li>
<li>Lemaitre, B., Hoffmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+host+defense+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The host defense of Drosophila melanogaster.</a> Annu. Rev. Immunol. 25, 697-743 (2007).</li>
<li>Schlegel, A., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lessons+from+%22lower%22+organisms%3A+what+worms%2C+flies%2C+and+zebrafish+can+teach+us+about+human+energy+metabolism%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Lessons from "lower" organisms: what worms, flies, and zebrafish can teach us about human energy metabolism.</a> PLoS Genet. 3, e199(2007).</li>
<li>Ferrandon, D., Jung, A. C., Criqui, M., Lemaitre, B., Uttenweiler-Joseph, S., Michaut, L., Reichhart, J., Hoffmann, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+drosomycin-GFP+reporter+transgene+reveals+a+local+immune+response+in+Drosophila+that+is+not+dependent+on+the+Toll+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">A drosomycin-GFP reporter transgene reveals a local immune response in Drosophila that is not dependent on the Toll pathway.</a> EMBO J. 17, 1217-1227 (1998).</li>
<li>Bruckner, K., Kockel, L., Duchek, P., Luque, C. M., Rorth, P., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+PDGF%2FVEGF+receptor+controls+blood+cell+survival+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Cell%22%5BJournal%5D)">The PDGF/VEGF receptor controls blood cell survival in Drosophila.</a> Dev. Cell. 7, 73-84 (2004).</li>
<li>Tokusumi, T., Shoue, D. A., Tokusumi, Y., Stoller, J. R., Schulz, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+hemocyte-specific+enhancer-reporter+transgenes+for+the+analysis+of+hematopoiesis+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">New hemocyte-specific enhancer-reporter transgenes for the analysis of hematopoiesis in Drosophila.</a> Genesis. 47, 771-774 (2009).</li>
<li>Tokusumi, T., Sorrentino, R. P., Russell, M., Ferrarese, R., Govind, S., Schulz, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+a+lamellocyte+transcriptional+enhancer+located+within+the+misshapen+gene+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Characterization of a lamellocyte transcriptional enhancer located within the misshapen gene of Drosophila melanogaster.</a> PLoS One. 4, e6429(2009).</li>
<li>Morales, J., Chiu, H., Oo, T., Plaza, R., Hoskins, S., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biogenesis%2C+structure%2C+and+immune-suppressive+effects+of+virus-like+particles+of+a+Drosophila+parasitoid%2C+Leptopilina+victoriae%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Insect+Physiol%22%5BJournal%5D)">Biogenesis, structure, and immune-suppressive effects of virus-like particles of a Drosophila parasitoid, Leptopilina victoriae.</a> J. Insect Physiol. 51, 181-195 (2005).</li>
<li>Bettencourt, R., Asha, H., Dearolf, C., Ip, Y. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemolymph-dependent+and+-independent+responses+in+Drosophila+immune+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">Hemolymph-dependent and -independent responses in Drosophila immune tissue.</a> J. Cell Biochem. 92, 849-863 (2004).</li>
<li>Melk, J. P., Govind, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+analysis+of+Ganaspis+xanthopoda%2C+a+larval+parasitoid+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">Developmental analysis of Ganaspis xanthopoda, a larval parasitoid of Drosophila melanogaster.</a> J. Exp. Biol. 202, 1885-1896 (1999).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

El interés por las avispas parásitas de Drosophila está surgiendo como las técnicas moleculares para descifrar genomas completos se vuelven eficientes y rentables. Sin embargo, en relación con sus excepcionalmente bien estudiados los ejércitos, muchos aspectos fascinantes de la biología avispas siguen siendo oscuros. Estos incluyen temas relacionados con la gama de huéspedes, la inmunosupresión, superparasitismo, y el comportamiento. El objetivo de esta presentación fue demostrar los efectos de la infección en ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Materiales </td><td> Tipo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> Materiales para el mantenimiento de los cultivos de insectos </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Levadura </td><td> Seca activa </td><td> Fisher Scientific </td><td> S802453 </td></tr><tr><td> Fly alimentos </td><td> La harina de maíz, el azúcar </td><td></td><td> Receta estándar </td></tr><tr><td> Miel </td><td> Trébol </td><td> Oro holandesa </td><td></td></tr><tr><td> Viales </td><td> Polipropileno shell viales (estrecho) </td><td> Fisher Scientific </td><td> AS514 </td></tr><tr><td> Cierres de los viales </td><td> Algodón enchufe </td><td> Fisher Scientific </td><td> AS212 </td></tr><tr><td> Cierres de los viales </td><td> Zumbido enchufe </td><td&gt; Genesee Científico </td><td> AS273 </td></tr><tr><td> Estufa refrigerada </td><td> Precision 815 </td><td> Thermo Scientific </td><td> 3721 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Los materiales para la preparación de muestras </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Cilindro de CO 2 </td><td> Grado de sequedad del hueso </td><td> TW Smith </td><td> UN1013 </td></tr><tr><td> Espátula </td><td> Espátula de micro (14 cm) </td><td> Fisher Scientific </td><td> 21-401-15 </td></tr><tr><td> Pyrex placas planas de prueba </td><td> 9-así placa de la disección de 85 mm x 100 mm </td><td> Thomas Scientific </td><td> 7812G17 </td></tr><tr><td> Pipetas Pasteur </td><td> La cal sodada </td><td> J &amp; H Berge </td><td> 71-5200-05 </td></tr><tr><td> Fórceps </td><td> Estilo # 5 </td><td> Sigma </td><td> T-4662 </td></tr><tr><td> Etanol </td><td> 190 prueba de la USP </td><td> Fisher Scientific </td><td> 04-355-221 </td></tr><tr><td> Formaldehído </td><td> 37% w / w </td><td> Fisher Scientific </td><td> F79-1 </td></tr><tr><td> Anticuerpo secundario Cy3 AffiniPure burro anti-conejo IgG (H + L) </td><td> 1:50 excitación de 546 nm; de emisión 565 nm </td><td> Jackson Immuno Research Laboratories, Inc. </td><td> 711-165-152 </td></tr><tr><td> Antifade (N-propil galato) </td><td> 4 mg / ml en glicerol al 50% en 1X PBS </td><td> MP Biomedicals </td><td> 10274790 </td></tr><tr><td> Glicerol </td><td></td><td> Fisher Scientific </td><td> G-33-1 </td></tr><tr><td> Hoechst 33258 </td><td> 0,2 g / ml de excitación 352 nm, emisión 461 nm </td><td> Molecular Probes </td><td> H-1398 </td></tr><tr><td> Rodamina phalloidin </td><td> 200 unidades / ml (6,6Excitación mM) 540 nm; de emisión 565 nm </td><td> Molecular Probes </td><td> R415 </td></tr><tr><td> Alexa Fluor 488 phalloidin </td><td> 300 unidades / ml de excitación de 495 nm, emisión 518 nm </td><td> Molecular Probes </td><td> A12379 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Desechables </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Botella de lavado </td><td> Fisherbrand </td><td> Fisher Scientific </td><td> 03 a 409-22A </td></tr><tr><td> Kimwipes </td><td> Kimberly Clark </td><td> Fisher Scientific </td><td> 06-666A </td></tr><tr><td> Toallas de papel </td><td> 1 capa C-Fold </td><td> Pluma </td><td> 901-7CFTB2400 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Microscopía </td><td> Ynbsp; </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Leica estereomicroscopio </td><td> MZFLIII </td><td> Imperio Imaging Systems, Inc. </td><td> 10446208 </td></tr><tr><td> Zeiss Estereomicroscopio </td><td> Stemi 1000 o 2000, C- </td><td> Carl Zeiss </td><td> 000000-1006-126 </td></tr><tr><td> Fuente de Luz - LED </td><td> Cuello de cisne iluminador </td><td> Fisher Scientific </td><td> 12563501 </td></tr><tr><td> Etapa </td><td> Caja de luz transmitida con placa </td><td> Carl Zeiss </td><td> 455137000 </td></tr><tr><td> Zeiss microscopio confocal de barrido láser </td><td> LSM 510 </td><td> Carl Zeiss </td><td></td></tr><tr><td> Microscopio compuesto Zeiss </td><td> Axioplan 2 en posición vertical </td><td> Carl Zeiss </td><td></td></tr></tbody></table><table border="1"><tbody><tr><td> Las cepas de avispa </td><td> Fly Cueles </td></tr><tr><td> Leptopilina victoriae 16 </td><td> yw </td></tr><tr><td> Leptopilina boulardi 17 1 </td><td> UAS-GFP-Dorsal 17 </td></tr><tr><td> Leptopilina heterotoma 2 </td><td> SerpentHemoGal4 13 </td></tr><tr><td> Leptopilina heterotoma 14 1 </td><td> MSNF9 moCherry-14 </td></tr><tr><td> Trichopria drosófilas </td><td> Sólidos lácteos no grasos 15-GFP </td></tr><tr><td> Ganaspis xanthopoda 18 </td><td> YW-Serpiente Gal4 UAS GFP-Dorsal/Basc 4 </td></tr><tr><td></td><td> PA; Drosomycin-GFP/CyO y + 12 </td></tr></tbody></table>

una introducción a las avispas parasitarias de<em&gt; drosophila</em&gt; y la respuesta inmune antiparasitario

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

La mayoría de las especies conocidas de avispas parasitoides atacan las etapas larvarias o de pupa de Drosophila. Mientras que Trichopria drosophilae infecta las etapas de pupa del huésped (Fig. 1A-C), las hembras del género Leptopilina (Fig. 1D, 1F, 1G) y Ganaspis (Fig. 1E) atacan las etapas larvarias. Utilizamos estos parásitos para estudiar la base molecular de una carrera armamentista biológica. Las avispas parasitoides tienen un valor inmenso como agentes de biocontrol. La mayoría de ellas portan factores de virulencia y otros que modifican la fisiología e inmunidad del huésped. El análisis de las avispas de Drosophila está proporcionando información sobre cómo las interacciones específicas entre especies moldean las estructuras genéticas de las comunidades naturales. Estos estudios también sirven como modelo para comprender la fisiología inmune de los huéspedes y cómo las reacciones inmunitarias coordinadas son frustradas por esta clase de parásitos.
La cutícula larvaria/pupal sirve como primera línea de defensa. El ovipositor de la avispa es una estructura afilada, semejante a una aguja, que introduce eficazmente los huevos en el hemocel del huésped. Tras la oviposición se produce una reacción de cicatrización en la cutícula (Fig. 1C, flechas). Algunas avispas pueden insertar dos o más huevos en un mismo huésped, aunque solo el desarrollo de un huevo tiene éxito. Los huevos supernumerarios o las larvas en desarrollo son eliminados mediante un proceso que aún no se comprende. Por ello, estas avispas se denominan parasitoides solitarios.
Dependiendo de la cepa de mosca y de la especie de avispa, el huevo de la avispa tiene uno de dos destinos. O bien es encapsulado, lo que impide su desarrollo (emerge el hospedador; Fig. 2 izquierda); o bien el huevo de la avispa eclosiona, se desarrolla, muda y crece hasta convertirse en adulto (emerge la avispa; Fig. 2 derecha). L. heterotoma es una de las especies mejor estudiadas de avispas parásitas de Drosophila. Es una "generalista", lo que significa que puede utilizar a la mayoría de las especies de Drosophila como hospedadores1. L. heterotoma y L. victoriae son especies hermanas y producen partículas similares a virus que interfieren activamente con la respuesta de encapsulación2. A diferencia de L. heterotoma, L. boulardi es un parásito especialista y el rango de especies de Drosophila que utiliza es relativamente limitado1. Las cepas de L. boulardi también producen partículas similares a virus3, aunque difieren significativamente en su capacidad para tener éxito en D. melanogaster1. Algunas de estas cepas de L. boulardi son difíciles de mantener en D. melanogaster1, ya que el hospedador frecuentemente logra encapsular sus huevos. Por lo tanto, es importante conocer a ambos socios en protocolos experimentales específicos.
Además de los tejidos de barrera (cutícula, intestino y tráquea), las larvas de Drosophila presentan respuestas inmunitarias sistémicas celulares e humorales que se originan a partir de las funciones de las células sanguíneas y del cuerpo graso, respectivamente. La oviposición por L. boulardi activa ambos componentes inmunitarios1,4. Las células sanguíneas se encuentran en circulación, en poblaciones sésiles bajo la cutícula segmentada y en el ganglio linfático. El ganglio linfático es un pequeño órgano hematopoyético ubicado en el lado dorsal de la larva. Grupos de células hematopoyéticas, denominados lóbulos, se disponen segmentariamente en pares a lo largo del vaso dorsal, que discurre según el eje anteroposterior del animal (Fig. 3A). El cuerpo graso es un órgano grande y multifuncional (Fig. 3B). Este secreta péptidos antimicrobianos en respuesta a infecciones microbianas y de metazoos.
La infección por avispas activa la señalización inmunitaria (Fig. 4)4. A nivel celular, desencadena la división y diferenciación de las células sanguíneas. Como mecanismo de defensa, se forman agregados y cápsulas en el hemocelo de los animales infectados (Fig. 5)5,6. Las células sanguíneas activadas migran hacia el huevo de avispa (o larva de avispa) y comienzan a formar una cápsula a su alrededor (Fig. 5A-F). Algunas células sanguíneas se agrupan para formar nódulos (Fig. 5G-H). Un análisis cuidadoso revela que la infección por avispas induce la dispersión de los lóbulos más anteriores de la glándula linfática en sus periferias (Fig. 6C, D).
Presentamos datos representativos con los componentes de la vía de transducción de señal Toll, Dorsal y Spätzle (Figs. 4,5,7), y su gen diana Drosomycin (Fig. 6), para ilustrar cómo se pueden estudiar cambios específicos en la glándula linfática y en el hemocelo tras la infección por avispas. Los protocolos de disección descritos aquí también permiten obtener los huevos de avispa (o estados en desarrollo de avispas) del hemolinfa del hospedador (Fig. 8).

Parasitoide (parásitos) avispas constituyen una clase importante de enemigos naturales de muchos insectos, incluyendo<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt;. Vamos a introducir las técnicas para propagar estos parásitos en<em&gt; Drosophila</em&gt; Spp. y demostrar la forma de analizar sus efectos sobre los tejidos inmunes de<em&gt; Drosophila</em&gt; Larvas.

Una introducción a las avispas parasitarias de<em&gt; Drosophila</em&gt; Y la respuesta inmune antiparasitario

La mayoría de las especies conocidas de avispas parasitoides atacan los estadios larvario o pupal de Drosophila. Mientras que Trichopria drosophilae infecta los estadios pupales del huésped (Fig. ...

Los objetivos generales de este procedimiento son mostrar cómo mantener cultivos de avispas parasitoides en huéspedes drosófilas y cómo diseccionar el ganglio linfático y el cuerpo graso. Esto se logra primero cultivando avispas en larvas de drosófila. Luego, los animales se disecan para aislar los ganglios linfáticos de la larva, lo que implica desprender la cutícula y eliminar los cuerpos grasos y otras estructuras finas con el fin de aislar los ganglios linfát游戏副本Asimismo, los cuerpos grasos mismos pueden aislarse utilizando un procedimiento similar con inmunocitohistoquímica y microscopía de fluorescencia. Se visualizan los cambios específicos en la expresión génica y en las células en los tejidos inmunitarios. Tras la infestación por avispas, estudiamos un sistema único de infección e inmunidad que utiliza la mosca de la fruta *Drosophila* y su avispa parasitoide.Nuestro laboratorio es uno de los pocos donde se mantienen cultivos vivos de parasitoides de drosófila. Por lo tanto, a menudo nos solicitan compartir nuestras técnicas. Los parasitoides son enemigos naturales de muchos insectos.Las especies que estudiamos atacan las etapas larvarias de muchas especies de drosófila. E

an-introduction-to-parasitic-wasps-drosophila-antiparasite-immune

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Wolbachia Infección bacteriana en Drosophila

Fopius arisanus es un parasitoide de huevos de larvas de moscas de la fruta tefrítidas que se utiliza con éxito en el control biológico de estas plagas tropicales importantes. Se describe aquí un protocolo optimizado para la cría de F. arisanus a pequeña escala, utilizando materiales fácilmente disponibles.

Un protocolo optimizado para cría Fopius arisanus, Un parasitoide de moscas de fruta tefrítidas

Para comprender un enlace entre la respuesta inmunitaria y el comportamiento, se describe un método para medir el comportamiento locomotor...

Medición cuantitativa de la respuesta inmune y del sueño en<em&gt; Drosophila</em

Drosophila melanogaster es un organismo modelo excepcional para estudiar el sistema inmune innato y las consecuencias fisiológicas de la infección y la enfermedad. Este protocolo describe cómo administrar infecciones bacterianas robustas y cuantitativamente repetibles a D. melanogaster, y cómo medir posteriormente la gravedad de la infección y cuantificar la respuesta inmunitaria del huésped.

La infección bacteriana sistémica y Defensa Inmune fenotipos en<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Este método muestra cómo visualizar la invasión del patógeno en las células de los insectos con modelos tridimensionales (3D). Hemocitos de larvas de Drosophila estaban infectadas con patógenos virales o bacterianos, o ex vivo o en vivo. Hemocitos infectados luego fijados y teñidos para la proyección de imagen con un microscopio confocal y la posterior reconstrucción celular 3D.

Extracción de hemocitos de larvas de Drosophila melanogaster para infección microbiana y análisis

Este protocolo describe métodos para exponer oralmente e infectar a la mosca de la fruta Drosophila melanogaster con bacterias patógenas y para medir el número de bacterias infecciosas caseta después de la infección intestinal. Además, describimos el efecto de mutantes inmunes mosca supervivencia después de la infección bacteriana oral.

Oral infección bacteriana y vertimiento en Drosophila melanogaster

Este protocolo describe un ensayo de fagocitosis in vivo en adultos de Drosophila melanogaster para cuantificar fagocito reconocimiento y liquidación de las infecciones microbianas.

Evaluar el Cellular la respuesta inmune de la mosca de la fruta, Drosophila melanogasterutilizando un ensayo de fagocitosis en Vivo

Las moscas adultas de Drosophila melanogaster se han utilizado ampliamente como organismos modelo para investigar los mecanismos moleculares subyacentes a las respuestas inmunes innatas antimicrobianas del huésped y las estrategias de infección microbiana. Para promover la etapa de larva de D. melanogaster como un sistema modelo adicional o alternativo, se describe una técnica de inyección larvaria.

Drosophila melanogaster Protocolo de inyección de larvas

Ganaspis brasiliensis, un parasitoide larvario de Drosophila suzukii (una plaga mundial de cultivos frutales invasores), ha sido aprobado o se considera para su introducción en Europa y los Estados Unidos para el control biológico de esta plaga. Este artículo proporciona protocolos para la cría a pequeña y gran escala de este parasitoide.

Métodos para la cría del parasitoide Ganaspis brasiliensis, un prometedor agente de control biológico para la Drosophila suzukii invasora

El objetivo de este protocolo es facilitar el análisis funcional de las interacciones parasitoide-huésped en Asobara japonica y Drosophila melanogaster. mediante métodos de cría optimizados, un ensayo de infección de oviposición única y knockdown génico mediado por ARNi.

Protocolos para la cría eficiente y el análisis funcional de la avispa endoparasitoide Asobara japonica y su hospedadora Drosophila melanogaster

Aprende a mantener cultivos de avispas parasitoides en hospederos Drosophila y disecar glándulas linfáticas y cuerpos grasos. Este método permite analizar respuestas inmunes mediante inmunocitoquímica y microscopía de fluorescencia.

Una introducción a las avispas parasitarias de

Explorar más videos