Name: Ensayo Replegado intracelular (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 18 s
Description: Aprende a medir el repliegue proteico intracelular tras choque térmico utilizando luciferasa como reportero. Este método evalúa la actividad de chaperonas moleculares en células HEK293.

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Danilo Maddalo es un beneficiario de una beca de investigación como el Grupo de Jóvenes Investigadores (YIG) del Instituto de Tecnología de Karlsruhe.

1. Sembrar las células <ol><li> Antes de empezar, calentar el medio de cultivo, el PBS 1X y tripsina en un baño de agua a 37 ˚ C </li><li> Tomar las células de la incubadora y se aspira el medio. </li><li> Aplique suavemente 5 ml de PBS 1X en las células para lavarlos. </li><li> Aspirar el PBS 1X y aplicar 1 ml de tripsina que contiene 0,025% de EDTA. </li><li> Gire suavemente la placa para tener una distribución uniforme de la tripsina. </li><li> Coloque las células de la incubadora a 37 ˚ C durante 5-10 minutos (dependiendo del tipo de célula). De vez en vez, compruebe si las células están separadas por agitación de la placa. </li><li> Resuspender las células en 10-20 ml de medio y recoger en un tubo Falcon de 50 ml. </li><li> Contar las células mediante un contador Beckman. El número de células debería ser suficiente para garantizar una confluencia de 60-70%. </li><li> Placa de las células y les permiten a las semillas durante 6-8 horas. </li></ol> 2. Transinfección <ol><li> Antes de la transfección, se caliente una alícuota de medio libre de suero en un baño de agua a 37 ˚ C. </li><li> Lleva el gen X-treme 9 a temperatura ambiente. </li><li> Pipetear el medio libre de suero en dos tubos eppendorf (1 tubo = 1 transfección). </li><li> Pipeta de la Gene X-treme 9 en la atención de medio libre de suero que paga la punta no toque la pared de plástico del eppendorf y se incuban durante 5 minutos. Mientras tanto preparar dos mezclas de ADN: en un tubo se mezclan los plásmidos de renilla, luciérnagas y un control de vector vacío, en otro tubo de renilla, luciérnaga y la chaperona molecular. </li><li> Añadir la mezcla de ADN a cada eppendorf conteniendo medio libre de suero + X-treme Gene 9, vortex e incubar a temperatura ambiente durante 20 minutos. </li><li> Añadir gota a gota cada mezcla en cada plato y se incuba durante 24 horas a 37 ° C y 5% de CO 2 </li></ol> 3. La división de las células <ol><li> 24 horas después de la transfección, trypsinize las células como se describe en 1,4 a 1,6 y se diluye a una confluencia final de 60-70% en una placa de 6 pocillos. </li><li> Preparar un plato para el control no sorprendió y tantas placas como los puntos de tiempo de recuperación que tienen que ser analizados, como se muestra en la fig. 2. </li></ol> 4. De choque térmico <ol><li> De choque térmico, pre-caliente el suero que contienen medio de un baño de agua a 37 ˚ C. </li><li> "Amortiguador de choque térmico" preparar diluyendo en medio que contenía suero cicloheximida a una concentración final de 20 mg / ml y MOPS a 20 mm. </li><li> Ahora, corta las placas de la incubadora y aspirar el medio. </li><li> Añadir a cada pocillo 1 ml de "amortiguador de choque térmico, y se incuba durante 30 minutos a 37 ˚ C y 5% de CO 2 (incluye también la placa de referencia en este tratamiento). Esto evitará que la síntesis de novo de proteínas. </li><li> Mientras tanto en el interruptor en un baño de agua y establecer el temperatura a 45 ˚ C. </li><li> Después de la incubación, el sello de la tapa de las placas con Parafilm previamente cortado en tiras. La placa de referencia (100% de refolfed luciérnaga) se deja en la incubadora. </li><li> Las placas se incuban a 45 ˚ C durante 30 minutos. </li><li> Retire las placas del baño de agua, quitar la parafina y poner las placas de nuevo a la incubadora para permitir la recuperación. </li><li> En cada punto de tiempo de la cosecha de las células y los lava en PBS 1X por centrifugación a 2000Xg durante 1 minuto a 4 ˚ C. </li></ol> 5. Lisis celular y ensayo luciferasa <ol><li> Para una lisis celular eficiente, snap congelar el sedimento de células en nitrógeno líquido. </li><li> Añadir 200 ul de buffer de lisis pasiva diluida 1:5 con agua destilada en un tubo de vidrio. </li><li> Añadir 30 l de lisado de células en una placa de 96 pocillos. Cada muestra está contaminada por triplicado. </li><li> Sólo el "no sorprendió" muestras de referencia será utilizado paraleer la actividad de la luciferasa Renilla, ya que este paso se utiliza para comprobar la eficacia de transfección de igualdad. </li><li> Preparar las soluciones para el ensayo. Para la solución de luciferina diluir luciferina a una concentración final de 0,2 mM de Gly-Gly buffer. Para el tampón de reacción diluir la TDT y la concentración de ATP 1 mM final en Gly-Gly buffer. Para el buffer de coelenterazine reacción, diluir coelenterazine a una concentración final de 0,2 M en tampón coelenterazine. Conservar la solución de luciferina y la reacción coelenterazine luz buffer protegida. </li><li> Ahora coloque la placa de 96 pozos en el luminómetro e iniciar el programa "Wallac 1420 estaciones de trabajo". </li><li> Introducir el Pump1 en el tubo Falcon que contiene la solución coelenterazine. Cierre la tapa de la luz por lo que no puede entrar en contacto con el tubo. </li><li> Seleccione en el menú de mantenimiento de dispensador de 'la opción y marque Pump1. </li><li> Seleccione la opción 'Fill'. </li><li> Para modificar el diseño de la placa de elegir la opción "Explorar el protocolo y los resultados" en el menú. Seleccione el protocolo y haga clic dos veces en la misma. A continuación, seleccione los pozos para ser leído. </li><li> Volver a 'Wallac Manager' y haga clic en 'Inicio'. La reacción entre la luciferasa Renilla y su sustrato coelenterazine emite luz con una longitud de onda máxima de 482 nm. </li><li> Después de la lectura, ir a "mantenimiento del dispensador" y seleccione "Vaciar y Pump1 a liberar a todos de nuevo la solución residual al tubo. </li><li> Ahora mueva el tubo a un tubo Falcon que contiene agua y marca la casilla "Flush". </li><li> Tras la etapa de lavado, vaciar el tubo mediante la selección de "vacío". </li><li> Coloque el tubo de Pump1 en el buffer de tubo de reacción de halcón y el de Pump2 en el tubo de la luciferina halcón. </li><li> Cambiar el diseño de la placa. </li><li> Seleccione 'Fill' para Pump1 y Pump2 de la Di-Spenser menú de mantenimiento. </li><li> Seleccione el protocolo y empezar la lectura. La reacción entre la luciferasa de luciérnaga y su sustrato luciferina emite luz con una longitud de onda máxima de 560 nm. </li><li> Al final de la lectura, repita el procedimiento vacía-Flush-vacío para Pump1 y Pump2. </li><li> Los resultados ya están disponibles en el 'Wallac 1420 Explorer'. </li><li> Cada experimento se asocia a un número de prueba, nombre de usuario, fecha de inicio y fin. </li><li> Los resultados ya se pueden exportar como un archivo de Excel. </li><li> Para los cálculos, las células se dividen en tres grupos: 1. no sorprendió las muestras de referencia (fijado en un 100% de replegarse luciferasa de luciérnaga), 2. células sin chaperón molecular y sometidos a desconchado térmico, 3. células con chaperón molecular y el calor sorprendió. </li></ol> 6. Resultados representante Plegamiento de proteínas se relaciona directamente con el tiempo de recuperación por lo tanto, para probar si el sistema está trabajando a favor Perly, un ensayo se debe realizar la recogida de las células en diferentes momentos. Existe una correlación directa tiempo / porcentaje de replegamiento indica que el experimento ha sido realizado correctamente y por lo tanto representa un factor limitante. Sin embargo debe ser considerado siempre que el repliegue tras el choque térmico es un evento de saturación y por lo tanto, un análisis de tiempo de curso apropiado se debe realizar antes de comenzar cualquier experimento. <img src="/files/ftp_upload/3540/3540fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Descripción general del experimento. En el ensayo in vivo replegado requiere de 3 a 4 días para ser completado. El día 1 se siembran las células y transfectadas. El día siguiente, las células están divididos en un formato más pequeño y el día 3 que son sometidos a desconchado térmico. En este punto es posible realizar el ensayo de luciferasa después de recoger las células o para guardar el pellet de células a -80 ° C y realizar el ensayo en otro momento _content "&gt; <img src="/files/ftp_upload/3540/3540fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. División celular. El día 2 las células se dividen en una placa de 6 pocillos. Cada transfección se diluye en un pozo con el fin de tener toda la transfección en la misma placa. Cada placa se corresponderá con un tiempo de recuperación concreto, más una placa de referencia no sorprendió. <img src="/files/ftp_upload/3540/3540fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. Representante buen resultado. Porcentaje de A. replegado medido directamente por la actividad luciferasa de luciérnaga. Cada gráfico de barras representa el porcentaje de replegado en ausencia (barras de color negro) y en presencia (barras rojas) de una chaperona molecular en diferentes puntos de tiempo de recuperación. B. La correlación entre el tiempo y replegado en ausencia (línea en negro) y en presencia (línea roja) de acompañante. Los valores de r cuadrado indican una buena correlación. En Fig.3A se muestra un resultado representativo, donde las células se recogieron 15, 30, 45, 60 y 120 después del choque térmico en ausencia (barras de color negro) y en presencia (barras rojas) de chaperona molecular. Porcentaje de aumento de replegarse luciferasa con el tiempo de recuperación prolongado y con la transfección de la chaperona molecular. La correlación entre el repliegue y el tiempo para el control (Fig. 3B, la línea de negro) y el acompañante molecular transfectadas las células (Fig. 3B, línea roja) se muestra. <img src="/files/ftp_upload/3540/3540fig4.jpg" alt="Figura 4" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Figura 4"> Figura 4. Representante mal resultado. Porcentaje de A. replegado mide directamente la actividad de luciferasa. Cada gráfico de barras representa el porcentaje de replegado en ausencia (barras de color negro) y en presencia (barras rojas) de una chaperona molecular en diferentes puntos de tiempo de recuperación. B. La correlación entre el tiempo y replegado en ausencia y en presencia (rojo lINE) de acompañante. Los valores de r cuadrado indican correlación mal. Figura 4A. Muestra un resultado representativo de un experimento no se realiza correctamente. Tanto el control (barras de color negro) y el acompañante molecular transfectadas las células (barras rojas) no mostraron un aumento de la proteína replegado con el tiempo. Además, la transfección de la chaperona molecular no se tradujo en un aumento de replegamiento. Esta mala correlación se confirma en la figura. 4B muestra un valor de R cuadrado de 0,6619 y 0,1882, respectivamente, para el control (línea en negro) y el acompañante molecular transfectadas las células (línea roja).

<ol><li>Bukau, B., Weissman, J., Horwich, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+chaperones+and+protein+quality+control%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Molecular chaperones and protein quality control.</a> Cell. 125, 443-443 (2006).</li>
<li>Ritossa, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discovery+of+the+heat+shock+response%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stress+Chaperones%22%5BJournal%5D)">Discovery of the heat shock response.</a> Cell Stress Chaperones. 1, 97-97 (1996).</li>
<li>Hendrick, J. P., Hartl, F. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+chaperone+functions+of+heat-shock+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Molecular chaperone functions of heat-shock proteins.</a> Annu. Rev. Biochem. 62, 349-349 (1993).</li>
<li>Fuqua, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heat+shock+proteins+and+drug+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Breast.+Cancer.+Res.+Treat%22%5BJournal%5D)">Heat shock proteins and drug resistance.</a> Breast. Cancer. Res. Treat. 32, 67-67 (1994).</li>
<li>Guzhova, I., Margulis, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hsp70+chaperone+as+a+survival+factor+in+cell+pathology%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Rev.+Cytol%22%5BJournal%5D)">Hsp70 chaperone as a survival factor in cell pathology.</a> Int. Rev. Cytol. 254, 101-101 (2006).</li>
<li>Whitesell, L., Lindquist, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HSP90+and+the+chaperoning+of+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Cancer%22%5BJournal%5D)">HSP90 and the chaperoning of cancer.</a> Nat. Rev. Cancer. 5, 761-761 (2005).</li>
<li>Konstantinopoulos, P. A., Papavassiliou, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((17-AAG%3A+mechanisms+of+antitumour+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Expert.+Opin.+Investig.+Drugs%22%5BJournal%5D)">17-AAG: mechanisms of antitumour activity.</a> Expert. Opin. Investig. Drugs. 14, 1471-1471 (2005).</li>
<li>Galluzzi, L., Giordanetto, F., Kroemer, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+HSP70+for+cancer+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Targeting HSP70 for cancer therapy.</a> Mol. Cell. 36, 176-176 (2009).</li>
<li>Ozacmak, V. H., Barut, F., Ozacmak, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Melatonin+provides+neuroprotection+by+reducing+oxidative+stress+and+HSP70+expression+during+chronic+cerebral+hypoperfusion+in+ovariectomized+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pineal.+Res%22%5BJournal%5D)">Melatonin provides neuroprotection by reducing oxidative stress and HSP70 expression during chronic cerebral hypoperfusion in ovariectomized rats.</a> J. Pineal. Res. 47, 156-156 (2009).</li>
<li>Schroder, H., Langer, T., Hartl, F. U., Bukau, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DnaK%2C+DnaJ+and+GrpE+form+a+cellular+chaperone+machinery+capable+of+repairing+heat-induced+protein+damage%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO.+J%22%5BJournal%5D)">DnaK, DnaJ and GrpE form a cellular chaperone machinery capable of repairing heat-induced protein damage.</a> EMBO. J. 12, 4137-41 (1993).</li>
<li>Thulasiraman, V., Matts, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+geldanamycin+on+the+kinetics+of+chaperone-mediated+renaturation+of+firefly+luciferase+in+rabbit+reticulocyte+lysate%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Effect of geldanamycin on the kinetics of chaperone-mediated renaturation of firefly luciferase in rabbit reticulocyte lysate.</a> Biochemistry. 35, 13443-13443 (1996).</li>
<li>Howarth, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hsp40+molecules+that+target+to+the+ubiquitin-proteasome+system+decrease+inclusion+formation+in+models+of+polyglutamine+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">Hsp40 molecules that target to the ubiquitin-proteasome system decrease inclusion formation in models of polyglutamine disease.</a> Mol. Ther. 15, 1110-1110 (2007).</li>
<li>Nollen, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bag1+functions+in+vivo+as+a+negative+regulator+of+Hsp70+chaperone+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Bag1 functions in vivo as a negative regulator of Hsp70 chaperone activity.</a> Mol. Cell. Biol. 20, 1083-1083 (2000).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

En este trabajo un protocolo para medir la actividad intracelular de replegado de las chaperonas moleculares se presenta. Todo el ensayo se puede realizar en 3 ó 4 días como lo demuestra la visión de la figura. 1. La robustez y la linealidad de la señal de luz producida por la luciérnaga y la luciferasa Renilla representan una base sólida para la reproducibilidad del protocolo. El paso crítico de la prueba es la elección de un reactivo de transfe...

Para este experimento &quot;Luz Vector &#39;una forma luminómetro Perkin Elmer &#39;1420 contador de luminiscencia se utilizó Programas para el luminómetro: Renilla: la bomba 1, 100 l de inyección Tampón de reacción: Pump1, inyectar 70 l Luciferina: Pump2, inyección 30μl Para los buffers de preparar estas soluciones madre con agua destilada: <ul style="list-style:none"><li> - 1M MgSO 4: 246,48 g MgSO 4 * 7H 2 O en 1 litro </li><li> - 0,5 M EGTA: 190,18 g EGTA en 1 litro </li><li> - 1M KH 2 PO 4: 136,09 g KH 2 PO 4 en 1 litro </li><li> - 1M K2 HPO 4: 228,23 g K 2 HPO 4 * 3 H 2 O en 1 litro </li><li> - 5 M NaCl: 292,2 g de NaCl en 1 litro </li><li> - 0,5 M EDTA: 186,12 g EDTA * 2H 2 O en 1 litro &nbsp;</li></ul> Gly-Gly-buffer: <ul style="list-style:none"><li> - 25mm Glycylglycin </li><li> - 15 mM MgSO 4 </li><li> - 4 mm EGTA </li></ul> Para un uso litro a 3,3 g de Glycylglycin, 15 ml de una solución 1M MgSO4 y 8 ml de una solución 0,5 M EGTA. Resolver en el agua, ajustar el pH a 7,8 y llevar a un volumen total de 1 litro. Tampón de reacción para Renilla / Coelenterazine búfer: <ul style="list-style:none"><li> - &amp; Nbsp; 13,4 mM KH 2 PO 4 </li><li> - 86,6 mM KH 2 PO 4 </li><li> - 0,5 M NaCl </li><li> - 1 mM EDTA </li></ul> Para un uso litros 13,4 ml de 1M KH 2 PO 4 solución, 86,6 ml de 1M K 2 HPO 4 solución, 100 ml de una solución de NaCl 5M y 2 ml de una solución 0,5 M EDTA. <table border="1"><tr><td></td><td> Empresa </td><td> Catálogo / Número de producto: </td></tr><tr><td> DMEM (Dulbecco modificado de Eagle Medium 1X) </td><td> GIBCO </td><td> 41966029 </td></tr><tr><td> Oro suero bovino fetal </td><td> PAA </td><td> A15-151 </td></tr><tr><td> Gene X-treme 9 ADN reactivo de transfección </td><td> Roche </td><td&gt; 06365809001 </td></tr><tr><td> PBS Fosfato de Dulbecco solución salina tamponada 1X </td><td> GIBCO </td><td> 14190-094 </td></tr><tr><td> MOPS 3 - (N-morfolino) propanosulfónico </td><td> SIGMA-ALDRICH </td><td> M1254 </td></tr><tr><td> Cicloheximida </td><td> SIGMA-ALDRICH </td><td> C7698 </td></tr><tr><td> Tampón de lisis pasiva 5X </td><td> Promega </td><td> E194A </td></tr><tr><td> Glycylglycin EGTA MgSO 4 (MgSO 4 * 7H 2 O) </td><td> SIGMA-ALDRICH Roth Roth </td><td> G7278 3054.2 P027.1 </td></tr><tr><td> KH 2 PO 4 K 2 HPO 4 (K 2 HPO 4 * 3 H 2 O) NaCl EDTA </td><td> Roth Roth Roth Roth </td><td> 3904.1 6878.2 3957.1 8043.1 </td></tr><tr><td> Luciferina Firefly </td><td> Biosynth </td><td> L8200 </td></tr><tr><td> Coelenterazine </td><td> Biosynth </td><td> C7000 </td></tr><tr><td> DTT (ditiotreitol) </td><td> Roth </td><td> 6908.2 </td></tr><tr><td> ATP (trifosfato de adenosina) </td><td> Roche </td><td> 10519987001 </td></tr></table>

ensayo replegado intracelular

Intracellular Refolding Assay

Este protocolo describe un método para medir la actividad enzimática de las chaperonas moleculares en un sistema basado en células y los posibles efectos de los compuestos con actividad inhibitoria / estimulante. Chaperonas moleculares son proteínas implicadas en la regulación de un plegamiento de proteínas y tienen un papel crucial en la promoción de la supervivencia celular al estrés, como los insultos de choque térmico 2, el hambre de nutrientes y la exposición a productos químicos / venenos 3. Por esta razón, los acompañantes se encuentran para participar en eventos como el desarrollo de tumores, chemioresistance de 4 células de cáncer, así como la neurodegeneración 5. El diseño de pequeñas moléculas capaces de inhibir o estimular la actividad de estas enzimas es por lo tanto, una de las estrategias más estudiadas para el tratamiento del cáncer y enfermedades neurodegenerativas 7 9. El ensayo aquí descrito ofrece la posibilidad de medir la actividad de replegamiento de una chaperona molecular en particular y para estudiar el efecto de un borradorHeridas en su actividad. En este método el gen de la chaperona molecular se investiga transfectadas con un vector de codificación de expresión para el gen de la luciferasa de luciérnaga. Ya se ha descrito que desnaturalizan luciferasa de luciérnaga puede ser replegada por chaperonas moleculares 10,11. Como la normalización de control de transfección, un vector de codificación para el gen de la luciferasa Renilla es transfectadas. Todas las transfecciones se describe en este protocolo se realizan con X-treme Gene 11 (Roche) en células HEK-293. En el primer paso, la síntesis de proteínas es inhibida por el tratamiento de las células con cicloheximida. A partir de entonces se desarrolla la proteína inducida por choque térmico a 45 ° C durante 30 minutos. Sobre la recuperación a 37 ° C, las proteínas son re-doblado en su conformación activa y la actividad de la luciferasa de luciérnaga se utiliza como lectura: la luz se producirá más, la proteína más tendrá recuperó la conformación original. No-calor células sorprendido se establecen como referencia (100% de replegarseluciferasa).

En este protocolo un método para medir el replegamiento de proteínas intracelulares tras el choque térmico se describe. Este método puede ser usado para estudiar foldases como chaperones moleculares y sus co-factores o componentes capaces de influir en su actividad. La actividad luciferasa de luciérnaga se utiliza como reportero para medir la actividad de las chaperonas replegado.

Ensayo Replegado intracelular

This protocol describes a method to measure the enzymatic activity of molecular chaperones in a cell-based system and the possible effects of compounds ...

El objetivo general del siguiente experimento es medir la proteína intracelular dependiente de chaperonas que se repliega tras un choque térmico. Utilizando un reportero de luciferasa, primero transfecte las células con plásmidos que contengan el gen del reportero de luciferasa y la chaperona de interés. Luego, divida las células transfectadas según los puntos de tiempo de recuperación en el diseño experimental.Al día siguiente, someta las células a un choque térmico para inducir el desdoblamiento proteico. Permita la recuperación para restablecer el plegamiento proteico intracelular y luego mida la actividad del reportero luciferasa. Los resultados miden el replegamiento proteico dependiente del tiempo y de las chaperonas, basado en el ensayo de luciferasa.La principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes, como el ensayo de plegamiento in vitro, es la posibilidad de obtener una lectura fisiológica del efecto de compuestos o proteínas sobre la actividad de chaperonas. Las implicaciones de esta técnica se extienden a terapias para una amplia gama de enfermedades, como enfermedades neurodegenerativas o cáncer, porque las chaperonas desempeñan un papel importante en el desarrollo de estas patologías. Primero, precaliente el medio de cultivo, el PBS y la tripsina a 37 grados Celsius en un baño de agua.Lave una cultura confluyente de células HEK 293 con cinco mililitros de PBS. A continuación, agregue un mililitro de tripsina que contenga 0,025 % de EDTA, gire suavemente la placa para lograr una distribución uniforme de la tripsina e incube a 37 grados Celsius. Agite periódicamente la placa para verificar la disociación celular.Ahora, suspenda las células en 10 mililitros de medio DMEM completo y transfiera a un tubo cónico de 50 mililitros. Luego, cuente las células utilizando una placa contador Beckman. Incube las células a una confluencia aproximada del 60 al 70% durante seis a ocho horas.Equilibre el reactivo Extreme Gene 9 a temperatura ambiente y el alícuota de medio libre de suero a 37 grados Celsius. Pipetee el medio libre de suero en dos tubos Eppendorf. A continuación, agregue el reactivo Extreme Gene 9 sin tocar la pared del tubo Eppendorf e incube durante cinco minutos a temperatura ambiente.Mientras tanto, prepare las mezclas de transfección 2D NA en el tubo uno, añada ran vanilla luciérnaga y un control de vector vacío en el tubo dos. Añada ran vanilla luciérnaga y la chaperona molecular. Añada el ADN a la mezcla del reactivo de transfección, vortexee e incube a temperatura ambiente durante 20 minutos.Continúe añadiendo esta mezcla a las células en placas e incube durante 24 horas. Recoga las células transfectadas utilizando tripsina, siembre las células con una confluencia del 60 al 70 % en placas de seis pocillos y déjelas en el incubador durante la noche. Aspire el medio de las células transfectadas.Luego, agregue un mililitro de tampón de choque térmico e incube durante 30 minutos. Para detener la síntesis de proteínas de novo, selle las tapas con tiras de paraforma e incube en un baño de agua a 45 grados Celsius durante 30 minutos. Ahora retire la paraforma y coloque las células nuevamente en el incubador para su recuperación en los puntos de tiempo especificados.Recoger las células y lavar una vez con PBS. Para una lisis celular eficiente, congelar rápidamente el pellet celular en nitrógeno líquido, agregar 200 microlitros de tampón de lisis pasiva diluido. A continuación, distribuir en tres réplicas. 30 microlitros del lisado celular por pocillo de una placa de 96 pocillos.Para evaluar la eficiencia de transfección, comience con las muestras de referencia no sometidas a choque. Para medir la actividad de luciferasa ran, prepare un tampón de reacción fresco de Lucifer 0,2 milimolar en tampón gly-gly que contenga 1 milimolar de ATP y 0,2 micromolar de tampón de reacción ezine. Inserte la placa de 96 pocillos en el luminómetro e inicie el programa.Estación de trabajo Wallach 1420. Introduzca la bomba uno en el tubo Falcon que contiene tampón de reacción de ezina 0,2 micromolar. Seleccione del menú la opción mantenimiento del dispensador y marque la bomba uno.Seleccione la opción de rellenar para editar el diseño de la placa. Elija la opción, explore el protocolo y los resultados en el menú. Seleccione el protocolo.Ahora seleccione los pocillos que se van a leer. Vuelva al administrador de Wallach y haga clic en iniciar para medir las emisiones de las muestras. A 482 nanómetros, proceda al mantenimiento del dispensador y seleccione vaciar y bombear uno para devolver toda la solución residual al tubo.Ahora mueva el tubo a un falcon que contiene agua y marque, enjuague. Continúe seleccionando vacío. Luego coloque el tubo de la bomba uno en el tampón de reacción y el tubo de la bomba dos en la solución de LUCIFERINA.Cambie el diseño de la placa. Seleccione llenado para la bomba uno y la bomba dos. En el menú de mantenimiento del dispensador, seleccione el protocolo e inicie la medición de la longitud de onda de la reacción de luciferasa de luciérnaga de 560 nanómetros.Al final de la repetición, repita el procedimiento: vacíe, enjuague, vacíe. Para la bomba uno y la bomba dos, visualice los resultados en el Wallach 1420 Explorer. Cada experimento está asociado a un ensayo.Número de usuario, fechas de inicio y finalización, exportar resultados como un archivo de Excel. Para el análisis, el plegamiento de proteínas está directamente relacionado con el tiempo de recuperación. En este experimento, las células se evalúan en diferentes puntos de tiempo tras el choque térmico.En ausencia y en presencia del chaperón molecular. Como era de esperar, el porcentaje de luciferasa replegada aumenta con el tiempo prolongado de recuperación tanto en los controles como en las células transfectadas con el chaperón molecular. En contraste, un conjunto de datos inválido muestra bajos valores de R cuadrado para la correlación entre el tiempo y el replegamiento.Tras seguir esta técnica, se pueden realizar otros métodos como el ensayo de TPAs in vitro para responder preguntas adicionales, como la inhibición de la actividad enzimática de la chaperona. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo medir la proteína intracelular. Seguimos después del choque térmico.

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