Name: Ex Vivo organotípicos Modelo corneal aguda de herpes simplex virus tipo epitelial que la infección (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: Aprende a cultivar córneas ex vivo de conejos y donantes humanos para estudiar la infección por herpes simplex tipo I. Este modelo organotípico ofrece mayor relevancia fisiológica que los cultivos celulares tradicionales.

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El apoyo del Banco Leonístico de Delaware Valley fue muy valiosa para este trabajo. Anticuerpo monoclonal de ratón contra ICP8 primaria fue una especie de regalo del doctor David Knipe (Harvard Medical School). También agradecemos al Dr. Stephen Jennings (Drexel University College of Medicine) y el Dr. Peter Laibson (Wills Eye Institute) útil para los debates y la experiencia.

Todos los reactivos y equipos se compraron estéril o se esterilizaron antes del procedimiento. En este artículo se describen los pasos para la implantación del modelo ex vivo a partir de la vista pre-enucleado. En nuestros experimentos, utilizamos ojos frescos enteros de jóvenes (8-12 semanas) conejos albinos (Pel-Freez Biologicals, Rogers, AR). Además, utilizamos córneas humanas obtenidas a partir del banco de ojos local. Si se realiza enucleación usted mismo, tenga cuidado de no dañar la córnea o el limbo durante el procedimiento. Protocolos de conejo enucleación se puede encontrar en otra parte 2. Parte 1: La escisión del botón Corneoscleral <ol><li> Moje una estrecha franja de gasa con PBS y se envuelve alrededor del globo ocular para facilitar la celebración durante el procedimiento. </li><li> Utilice un bisturí afilado para hacer una incisión en la esclerótica tangencial, de aproximadamente 0,5 cm de distancia del limbo. </li><li> Use tijeras afiladas para extender la incisión y completamente cortar el corneoscleral botón. </li><li> Una vez que el botón corneoescleral se aísla, se burlan de lejos el iris mientras sostiene el borde escleral con fórceps. Evite dañar el endotelio o ejercer una tensión excesiva en la córnea. </li></ol> Parte 2: Introducción de la córnea en cultivo organotípico <ol><li> Córneas explantados se cultivaron en medio esencial mínimo (MEM) suplementado con no aminoácidos esenciales (1X), L-glutamina (2 mM), penicilina (200 U / ml) y estreptomicina (200 ug / ml). Un agente antifúngico, tal como anfotericina, también se puede añadir si es necesario. </li><li> Preparar una solución al 1% de agarosa en medio de cultivo y mantenerlo listo a 55 ° C. </li><li> Enjuague completamente la córnea en PBS estéril que contiene penicilina (200 U / ml) y estreptomicina (200 ug / ml). </li><li> Coloque el lado epitelial de la córnea hacia abajo en un pocillo de una placa estéril lugar. </li><li> Añadir el medio de agarosa que contiene a la concavidad endotelial de la córnea justo lo suficiente parallenar por completo. Permitir ~ 1 min para que la agarosa se solidifique. </li><li> Coloque la córnea con el medio de cultivo de soporte de gel de andamio lado epitelial hacia arriba en una placa de cultivo tisular de 35 mm y añadir a cubrir la superficie epitelial. </li><li> La córnea puede ser cultivado de este modo por más de una semana, con cambios de medio cada 48 horas. </li></ol> Parte 3: La infección por HSV-1 y el tratamiento con medicamentos experimentales <ol><li> Añadir 1 ml de medio que contiene la cantidad deseada de virus en una placa de cultivo tisular de 35 mm. Por lo general infectan con 1x10 4 PFU de la cepa KOS de HSV-1 por córnea. Los títulos valores se determinan mediante la realización de ensayos de placas en monocapas de CV-1. </li><li> Coloque la córnea, junto con el lado de agarosa andamio epitelial hacia abajo en el medio que contiene virus. </li><li> Coloque la córnea en una incubadora de cultivo de tejido para infectar durante 1 hora con agitación intermitente cada 10-15 minutos. </li><li> Después de 1 hora, aspirar el virus-contaiNing medio y enjuague 2-3 veces con PBS para eliminar cualquier partícula viral residual. </li><li> Coloque la córnea vuelve a su posición anterior y se añade medio de cultivo fresco para cubrir la superficie epitelial. </li><li> Los tratamientos experimentales se puede iniciar antes o después de la infección, dependiendo de la naturaleza del experimento. </li><li> El medio de cultivo se cambió cada 48 horas. </li></ol> Parte 4: Toma de Muestras <ol class="lalpha"><li> Medio para el análisis de la placa de ensayo. Mezclar bien el medio y utilizar de inmediato para un ensayo de placa o almacenar a -80 ° C para su uso posterior si la recolección de muestras en diferentes puntos temporales. </li><li> ADN, ARN, proteína o células de epitelio corneal <ol><li> Retire el andamio de agarosa y enjuague bien la córnea con PBS. </li><li> Escindir el anillo de tejido de la esclerótica de la córnea para asegurar que el material epitelial corneal sólo se recoge. </li><li> Ucantar un escalpelo, raspar las células epiteliales de la córnea en el tampón apropiado, en función del tipo de material a ser aislado. Para el aislamiento de ADN y ARN, se utiliza el kit DNeasy Blood &amp; Tissue y el kit RNeasy Mini, respectivamente (QIAGEN, Hilden, Alemania). Para la recolección de los lisados ​​de proteínas, se utiliza tampón Laemmli. Para el análisis de citometría de flujo de células epiteliales corneales, se pre-incuban las córneas en una pequeña cantidad de tripsina para desprender las células y, a continuación desalojarlos en tripsina con un escalpelo. Desde raspado el epitelio corneal no produce cantidades iguales de tejido, es importante incluir controles adecuados en el análisis de las muestras. Usamos ARNr 18S como un transcrito de referencia en QRT-PCR, GAPDH como un gen de referencia en qPCRs, y nucleolina como control de carga para las transferencias Western. </li></ol></li><li> Las muestras de tejidos para inmunohistoquímica o inmunofluorescencia <ol><li> Retire el andamio de agarosa y enjuagar el maízea bien con PBS. </li><li> Dependiendo de su objetivo experimental, el uso de la córnea para hacer un bloque de tejido en parafina o un bloque de tejido congelado, como se muestra en el vídeo. Seguimos procedimientos estándar en la preparación de secciones de tejido corneal. </li></ol></li></ol> Los resultados representativos La mayoría de los métodos disponibles para el estudio de células en cultivo de tejidos puede ser fácilmente adaptado para el uso en las córneas infectadas con HSV-1 ex vivo. Aquí se presentan resultados representativos de algunas de las técnicas más comunes aplicables al estudio de la infección por HSV-1 - qPCR (Figura 1 D), QRT-PCR (Figura 1B), Western blot (Figura 1F), la placa de ensayo (Figura 1 C), y tejido de inmunofluorescencia (Figura 1E). <img src="/files/ftp_upload/3631/3631fig1.jpg" alt="Figura 1" /> Figura 1. Análisis de las córneas infectadas con HSV-1 v exivo. (A) Representación esquemática del modelo ex vivo de aguda corneal epitelial infección HSV-1. (BF) Análisis de córneas infectadas utilizando el método descrito en este artículo de vídeo. Explantados córneas de conejo fueron infectadas con 1x10 4 PFU / córnea de la cepa KOS de HSV-1 y se cultivaron en presencia (PAA) o ausencia (Mock) de ácido fosfonoacético (400 ug / ml), un inhibidor conocido de la replicación del HSV. (B) El ARN total se recogieron en los puntos de tiempo indicados, y la transcripción viral se evaluó mediante qRT-PCR con cebadores para HSV-1 polimerasa. Primers contra 18S rRNA fueron utilizados como una referencia. n = 3. Las barras de error indican ± SEM. (C) El medio de cultivo se recogió a 48 hpi, y la producción de partículas infecciosas se evaluó mediante ensayo en placa sobre monocapas de CV-1. (D) El ADN total se recogió a 48 hpi, y la replicación del genoma viral se evaluó en un ensayo de qPCR con los cebadores para el HSV-1 del genoma. PrIMers contra GAPDH se utiliza como referencia. n = 3. Las barras de error indican ± SEM. (E) Mock tratados con córneas se flash congelado a 48 hpi, se seccionaron, y se analizaron por inmunofluorescencia indirecta para la presencia de una proteína viral temprana (ICP8) dentro del epitelio infectado. Los núcleos se tiñen con Höchst 33258. (F) Proteína lisados ​​se recogieron a las 48 hpi, y la expresión de una proteína viral (ICP0) se evaluó mediante Western blot. BCA ensayo se utilizó para garantizar la igualdad de carga de muestras. hpi = horas después de la infección.

<ol><li>Kaye, S., Choudhary, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+keratitis%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex keratitis.</a> Prog. Retin. Eye Res. 25, 355-380 (2006).</li>
<li>Holmberg, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enucleation+of+exotic+pets%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Exotic+Pet+Medicine%22%5BJournal%5D)">Enucleation of exotic pets.</a> Journal of Exotic Pet Medicine. 16, 88-94 (2007).</li>
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<li>Novitskaya, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Difficulties+imaging+herpes+simplex+keratitis+with+fluorescein+isothiocynate-labeled+anti-HSV-1+antibodies+in+an+ex+vivo+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">Difficulties imaging herpes simplex keratitis with fluorescein isothiocynate-labeled anti-HSV-1 antibodies in an ex vivo model.</a> Cornea. 28, 421-425 (2009).</li>
<li>Sharma, A., Shimeld, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+immunofluorescence+to+diagnose+herpes+simplex+virus+keratitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">In vivo immunofluorescence to diagnose herpes simplex virus keratitis in mice.</a> Br. J. Ophthalmol. 81, 785-788 (1997).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

En este artículo de vídeo se describe un método para el estudio agudo corneal epitelial infección HSV-1 en un modelo ex vivo. Este modelo es un escalón útil entre la in vitro y la modelos in vivo, ya que permite la validación fisiológicamente precisa de los resultados de cultivo de células y, por lo tanto, limita la cantidad de experimentación animal que debe ser realizada. Además, el modelo ex vivo ofrece una oportunidad única y valiosa para estudiar la infección por herpes ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reactivos / Materiales </td><td> Empresa </td><td> Catálogo # </td></tr><tr><td> Medio Esencial Mínimo (MEM) </td><td> Mediatech </td><td> 10 a 010-CV </td></tr><tr><td> No aminoácidos esenciales (solución 100x) </td><td> Mediatech </td><td> 25 a 025-CI </td></tr><tr><td> L-Glutamina </td><td> Mediatech </td><td> 25 a 005-CI </td></tr><tr><td> La penicilina G sal de sodio </td><td> Sigma </td><td> P3032 </td></tr><tr><td> Sal de sulfato de estreptomicina </td><td> Sigma </td><td> S9137 </td></tr><tr><td> Agarosa </td><td> Invitrogen </td><td> 15510-027 </td></tr><tr><td> Tampón fosfato salino (PBS) </td><td> Preparada en laboratorio </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Tripsina EDTA (1x) &lt;/ Td&gt; <td> Mediatech </td><td> 25 a 053-CI </td></tr><tr><td> Sangre y DNeasy Tissue Kit </td><td> QIAGEN </td><td> 69504 </td></tr><tr><td> RNeasy Mini Kit </td><td> QIAGEN </td><td> 74104 </td></tr><tr><td> Tampón de Laemmli </td><td> Preparada en laboratorio </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Temperatura óptima de corte (OCT) Compuesto </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4583 </td></tr><tr><td> Ojos enteros conejo (joven) </td><td> Pel-Freez </td><td> 41211-2 </td></tr><tr><td> Las córneas humanas y los ojos enteros </td><td> Banco de Ojos Local </td><td> N / A </td></tr><tr><td> 12 Pues Porcelana Plata al contado </td><td> Suministro de Avogadro Lab </td><td> 1877 </td></tr><tr><td> 35 mm placa de cultivo de tejidos </td><td> Halcón </td><td> 353001 </td></tr><tr><td> 6 BienPlaca de cultivo de la célula </td><td> Greiner Bio-One </td><td> 657160 </td></tr><tr><td> Criomolde Intermedio </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4566 </td></tr></tbody></table>

ex vivo organotípicos modelo corneal aguda de herpes simplex virus tipo epitelial que la infección

Ex Vivo Organotypic Corneal Model of Acute Epithelial Herpes Simplex Virus Type I Infection

La queratitis herpética es una de las patologías más graves asociadas con el virus del herpes simple de tipo 1 (HSV-1). La queratitis herpética es actualmente la principal causa de ceguera tanto córnea-derivado y las infecciones asociadas-en el mundo desarrollado. Presentación típica de la queratitis por herpes incluye la infección del epitelio corneal y el estroma a veces córnea más profunda y el endotelio, lo que conduce a patologías corneales tales como cicatrices permanentes, adelgazamiento, y la opacidad 1. Corneal infección HSV-1 es tradicionalmente estudiado en dos tipos de modelos experimentales. El modelo in vitro, en el que las monocapas de cultivo de células epiteliales corneales infectadas en una placa de Petri, ofrece simplicidad, alto nivel de replicabilidad, experimentos rápidos y los costos relativamente bajos. Por otro lado, el modelo in vivo, en el que los animales tales como conejos o ratones se inoculan directamente en la córnea, ofrece una fisiológica altamente sofisticadosistema, pero tiene costos más altos, más largos experimentos, cuidado de animales necesario, y un mayor grado de variabilidad. En este artículo de vídeo, se proporciona una demostración detallada de un modelo ex vivo de nuevo corneal epitelial infección HSV-1, que combina las ventajas tanto de la vitro y en modelos in vivo en el. El modelo ex vivo utiliza córneas intactas organotypically mantenidas en cultivo e infectadas con HSV-1. El uso del modelo ex vivo permite conclusiones altamente fisiológicamente basadas, sin embargo, es bastante barato y requiere dedicación de tiempo comparable a la del modelo in vitro.

En este artículo de vídeo se describe el uso de un nuevo<em&gt; Ex vivo</em&gt; Modelo de herpes simplex virus tipo agudas que la infección del epitelio corneal.

Ex Vivo organotípicos Modelo corneal aguda de herpes simplex virus tipo epitelial que la infección

La queratitis herpética es una de las patologías más graves asociadas con el virus del herpes simple tipo 1 (HSV-1). La queratitis herpética es actualmente la principal...

Soy Jane Clifford, doctora en ciencias. Soy profesora y directora del departamento de bioquímica y biología molecular en la Facultad de Medicina de la Universidad Drexel. Y mi nombre es Ola Iv y soy estudiante de medicina y doctorado en el laboratorio de la Dra. Clifford. El video que Oli y yo preparamos para ustedes demuestra el cultivo ex vivo de córneas obtenidas de conejos y donantes humanos.Hemos utilizado estas córneas para estudiar la infección por virus del herpes y sin duda son aplicables para otras enfermedades de la córnea con fines de estudio de otras patologías corneales, y es un modelo ex vivo particularmente relevante en comparación con células y cultivos mono. La queratitis herpética es una de las patologías más graves asociadas con el virus del herpes simple tipo uno. Actualmente es la causa principal de ceguera derivada de la córnea y asociada a infecciones en el mundo desarrollado.La queratitis herpética se estudia tradicionalmente en dos tipos de modelos experimentales. El modelo in vitro, en el que monocapas cultivadas de células epiteliales corneales se infectan en una placa de Petri, ofrece simplicidad, un alto nivel de replicabilidad, experimentos rápidos y costos relativamente bajos. Por otro lado, el modelo in vivo de queratitis herpética, en el que animales como conejos o ratones se inoculan directamente en la córnea, ofrece un sistema fisiológico altamente sofisticado, pero tiene costos más elevados, experimentos más largos, requiere cuidados animales y presenta un mayor grado de variabilidad.En este artículo en video, proporcionamos una demostración detallada de un nuevo modelo ex vivo de infección aguda del epitelio corneal por el virus del herpes simple tipo 1 (HSV-1), que combina las ventajas de los modelos in vitro e in vivo. El modelo ex vivo utiliza córneas intactas mantenidas típicamente en cultivo y infectadas con HSV. El uso del modelo ex vivo permite obtener conclusiones altamente basadas en la fisiología, aunque es bastante económico y requiere un compromiso de tiempo y recursos comparable al del modelo in vitro.Prepare lo siguiente antes de comenzar el procedimiento. Placa de Petri, solución salina tamponada con fosfatos, medio de cultivo corneal y medio para andamiaje, placa de pocillos, tira de gasa, globo ocular fresco, bisturí, pinzas y tijeras afiladas. Humedezca una tira estrecha de gasa con PBS y envuélvala alrededor del globo ocular para sujetarlo firmemente.Durante el procedimiento, utilice un escalpelo afilado para realizar una incisión tangencial en la esclerótica a aproximadamente medio centímetro del us. Use tijeras para extirpar completamente el botón corneoescleral. A medida que se amplía la incisión, la presión dentro del globo ocular disminuirá, lo que dificultará sostener y manipular el tejido.Por este motivo, recomendamos utilizar en este paso una tijera afilada y confiable. Una vez aislado el botón corneoescleral, separe el iris cuidadosamente mientras sostiene el borde escleral con pinzas. Evite dañar el endotelio o ejercer un estrés excesivo sobre la córnea.Prepare una solución al 1% de agros en medio y téngala lista. A 55 grados Celsius, enjuague cuidadosamente la córnea en PBS estéril que contenga penicilina y estreptomicina. Coloque la córnea con el epitelio hacia abajo en el pocillo de un Spotlight estéril.Agregue agros que contengan medio a la concavidad endotelial de la córnea. Solo lo suficiente para llenarla completamente. Deje aproximadamente un minuto para que el agros se solidifique.Coloque la córnea con el andamio de agarosa de soporte con el epitelio hacia arriba en una placa de cultivo celular y agregue medio MEM suplementado para cubrir la superficie epitelial. La córnea puede cultivarse de esta manera durante más de una semana con cambios de medio cada 48 horas. Añada un mililitro de medio que contenga la cantidad deseada de virus en una placa de cultivo celular.Coloque la córnea con el andamio de agro con el lado epitelial hacia abajo en el medio que contiene el virus. Coloque la córnea en el incubador de cultivo de tejidos para infectar durante una hora con agitación intermitente cada 10 a 15 minutos tras la primera hora. Aspire el medio que contiene el virus y enjuague de dos a tres veces con PBS para eliminar cualquier partícula viral residual.Al enjuagar con PBS, tenga cuidado de no desalojar la córnea del andamio agro. Añada medio fresco para cubrir la superficie epitelial. Los tratamientos experimentales pueden iniciarse antes o después de la infección, dependiendo de la naturaleza del experimento.El medio de cultivo se cambia cada 48 horas. Mezcle bien el medio y úselo inmediatamente para un ensayo de placas, o almacénelo a menos 80 grados Celsius para uso posterior. Si se recogen muestras en diferentes puntos temporales, enjuague bien la córnea con PBS.Retire el andamio de agarosa, separe el anillo de tejido escleral de la córnea para asegurar que solo se recoja material epitelial corneal. Con un escalpelo, raspe las células epiteliales corneales dentro del tampón adecuado, según el tipo de material que se vaya a aislar. La eliminación del borde escleral permite que la córnea se hinche rápidamente al absorber agua.Dado que la hinchazón puede complicar el raspado, recomendamos realizar rápidamente el paso de enjuagar la placa de Petri para asegurar que se haya recolectado toda la muestra. Retire el andamio de agro y enjuague bien la córnea con PBS.Utilice la córnea para elaborar un bloque de tejido en parafina o un bloque de tejido congelado, según se demuestra aquí, en función del objetivo experimental. Incluya la córnea en compuesto óptimo para corte a temperatura baja (OCT) dentro de un molde para muestras. Congele rápidamente la córnea en un baño de hielo seco con etanol. Lo que hemos mostrado aquí en este video es la preparación de córneas, la disección de la córnea, su colocación en cultivo ex vivo y la infección de córneas con virus del herpes.Esto ha proporcionado la técnica para un modelo que nos ha sido muy útil en el estudio de la infección por virus del herpes, ex vivo, y esperamos que sea útil para otros en sus experimentos con células corneales.

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La mayoría de los estudios de la enfermedad corneal herpética utilizar un modelo de infección primaria. Sin embargo, la infección primaria con el virus HSV-1 no suele conducir a la enfermedad humana. Aquí se describe un modelo de la enfermedad herpética recurrente corneal, que más estrechamente imita la enfermedad humana.

Queratitis herpética estromal recurrente en ratones, un modelo para el estudio HSK Humanos

Este video describe un protocolo para configurar un modelo ex vivo para la queratitis bacteriana utilizando un botón corneoescleral diseccionado del ojo porcino. Las bacterias inoculadas atraviesan las incisiones epiteliales de la córnea para invadir el estroma subyacente y establecer una infección dentro de los tejidos corneales que imita la infección in vivo.

Modelo de Córnea Porcina Ex vivo de Queratitis Bacteriana: Una Técnica para Establecer la Infección Bacteriana en las Células Epiteliales de la Córnea

Este video muestra el método para realizar un ensayo de placa utilizando un virus obtenido de córnea porcina infectada. La córnea porcina se utiliza para probar la eficacia antiviral de fármacos experimentales.

Determinación de la eficacia antiviral de fármacos experimentales mediante un ensayo de placa

Hemos establecido un fluorescente en el protocolo de hibridación in situ para la detección de un genoma del virus de ADN persistente dentro de las secciones de tejido de modelos animales. Este protocolo permite el estudio de proceso de infección por codetection del genoma viral, sus productos de ARN, y proteínas virales o celulares dentro de las células individuales.

Detección del genoma y transcripciones de un virus ADN persistente en los tejidos neuronales por Fluorescente In situ La hibridación Combinado con inmunotinción

La piel es un tejido objetivo del patógeno humano virus del herpes simple tipo 1 (HSV-1). Para explorar la ruta de invasión del VHS-1 en el tejido, establecimos un modelo de infección ex vivo de láminas epidérmicas murinas, que representan la capa más externa de la piel.

Ex Vivo Infección de murino Epidermis con virus herpes simplex tipo 1

Un protocolo para un ex vivo modelo de cultura órgano córneo es útil para estudios de cicatrización se describe. Este sistema modelo puede utilizarse para evaluar los efectos de agentes para promover la curación regenerativa o toxicidad de la droga en un ambiente organizado de multicelular 3D.

Ex Vivo modelo de cultura órgano córneo para la curación de heridas estudios

Este artículo describe un protocolo paso a paso para establecer un modelo ex vivo porcino de queratitis bacteriana. Pseudomonas aeruginosa se utiliza como organismo prototípico. Este modelo innovador imita la infección in vivo, ya que la proliferación bacteriana depende de la capacidad de la bacteria para dañar el tejido corneal.

Establecer un modelo de córnea ex vivo porcina para estudiar tratamientos farmacológicos contra la queratitis bacteriana

Describimos el uso de una córnea porcina para probar la eficacia antiviral de los fármacos experimentales.

Explante de tejido corneal porcino para estudiar la eficacia de los antivirales del virus del herpes simple-1

Aquí, se describe un protocolo para crear una herida de abrasión epitelial corneal central en el ratón utilizando una trefina y un palo de golf romo. Este modelo de cicatrización de heridas corneales es altamente reproducible y ahora se está utilizando para evaluar la cicatrización de heridas corneales comprometidas en el contexto de enfermedades.

Un modelo de abrasión epitelial para estudiar la cicatrización de heridas corneales

Aquí, se desarrollan modelos animales basados en ratones y conejos para lesiones mecánicas y químicas del epitelio corneal para detectar nuevas terapias y el mecanismo subyacente.

Modelos animales ex vivo e in vivo para lesiones mecánicas y químicas del epitelio corneal

Desarrollamos un modelo de rata de inflamación corneal severa a través de legrado de epitelio corneal combinado con suturas corneales. El estudio evaluó los patrones de inflamación de la córnea, la proliferación epitelial y los cambios en las células madre limbales en condiciones inflamatorias.

Establecimiento de un modelo de inflamación corneal severa en ratas basado en legrado del epitelio corneal combinado con suturas corneales

Aprende a cultivar córneas ex vivo de conejos y donantes humanos para estudiar la infección por herpes simplex tipo I. Este modelo organotípico ofrece mayor relevancia fisiológica que los cultivos celulares tradicionales.

Ex Vivo organotípicos Modelo corneal aguda de herpes simplex virus tipo epitelial que la infección

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