Name: Ovariectomía y 17β-estradiol reemplazo en ratas y ratones: una demostración visual (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: Aprenda a realizar ovariectomía y reemplazo de 17β-estradiol en ratas y ratones usando cápsulas de silastic y mezcla oral de Nutella. Este método permite controlar niveles hormonales estables para estudios de neurociencia y endocrinología.

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El estudio fue financiado por la Universidad de Linköping y de la Diputación Provincial de Östergötland.

1. Ovariectomía a través de la Ruta del dorsal <ol><li> Se anestesia el animal, por ejemplo, utilizando 1,5% de isoflurano (4% para la inducción) en un oxígeno / óxido nitroso 30% / 70% mezcla. Colocar el animal en posición boca abajo en una placa de calefacción conectado a un termómetro rectal. Es importante tener una fina capa de aislamiento entre el animal y la placa, y que el termómetro de realimentación del sistema mantiene la temperatura corporal dentro de 37 ± 0,5 ° C. Aplique el gel para proteger los ojos y administrar 5 mg Rimadyl / kg de peso diluido en solución salina por vía subcutánea en la cara lateral del cuello del animal para el alivio del dolor postoperatorio. </li><li> Afeitado un 4 * 4 cm (3 * 3 cm para los ratones) cephally zona de la cresta ilíaca. Es necesario lavar completamente el área afeitada con la Jodopax ejemplo, antes de cubrir el animal con una hoja de 4 * 4 cm de la cirugía de la apertura. </li><li> Haga una incisión de 2-3 cm de la línea media y sin rodeos disección de la piel de la fascia subyacente. Uno cm lateral de la línea media, hacer otra incisión through la fascia. Francamente disecar lateralmente bajo esta fascia como superficialmente como sea posible hasta llegar a la cavidad abdominal. </li><li> Usando las pinzas, agarra el tejido adiposo que rodea el ovario en la cavidad abdominal y tire suavemente hacia afuera. Identificar el ovario y ligar las trompas de Falopio y los vasos 0.5-1 cm proximal de esta estructura. Cortar el ovario y el tejido adiposo ligado y poner la parte posterior del tejido restante en la cavidad abdominal. Hacer otra incisión en la fascia contralateral y repita el procedimiento. </li><li> Cerrar las heridas, de preferencia utilizando una sutura monofilamento, y dejar que el animal despierta de la anestesia. Colocar el animal en una jaula calentada (25-27 ° C) durante al menos 2 horas después de la cirugía. Los animales deben ser alojados por separado los primeros días del postoperatorio. Es fundamental que la jaula se limpiarán con frecuencia / sustituido durante la fase de recuperación. Veinticuatro horas después de la cirugía, los animales se inyectan por vía subcutánea con otro 5 mg Rimadyl / kg de peso corporal diluido ensolución salina. </li></ol> 2. La administración subcutánea de 17β-estradiol a través de cápsulas de Silastic <ol><li> Mezcle la cantidad deseada de 17β-estradiol en aceite de sésamo. Para las concentraciones fisiológicas en ratas y ratones, se recomienda 180 mg / ml y 18-36 mcg / ml, respectivamente. Placebo cápsulas se llenan con aceite de sésamo puro. </li><li> Corte 3 cm (2 cm para ratones) la longitud de los tubos de silastic y 5 mm (3 mm para los ratones) longitudes de palos de madera para conectar aplicadores. El uso de pinzas, apretar un tapón de madera en la cápsula de silastic antes de inyectar la solución de aceite 17β-estradiol/sesame para llenar toda la longitud. Suavemente la tapa de la cápsula de silastic en el extremo abierto con otro tapón de madera (los tapones se supone que debe permanecer permanentemente en la cápsula). Incubar las cápsulas en el restante 17β-estradiol solución durante la noche antes de la implantación. </li><li> La implantación de la cápsula se puede realizar durante la anestesia que se utiliza en ovariectomía en ratas. Para mice, sin embargo, un período de recuperación 14-días después de la ovariectomía se recomienda para minimizar el riesgo de la cápsula que sobresale a través de la piel frágil. </li><li> Después de las preparaciones quirúrgicas como en 1.1, o después de cerrar la incisión ovariectomía, afeitarse y lavarse un área de 2 * 2 cm en la cara dorsal del cuello del animal. Haga una incisión de 1 cm y sin rodeos la disección de un bolsillo subcutáneo caudolaterally, con amplio espacio para la cápsula. Limpiar la cápsula de silastic (que hasta este punto de tiempo ha sido incubadas en la solución 17β-estradiol) y suavemente instalar a través de la incisión, que posteriormente se cierra por una sutura. Es crucial para asegurarse de que las cepas de la cápsula de la piel tan poco como sea posible, particularmente en el área cercana a la herida. Desde la producción de cápsulas a la implantación, es importante que se evita la contaminación. </li></ol> 3. La administración oral de 17β-estradiol a través de la tuerca de la crema Nutella <ol><li> Se disuelven completamente 17β-estradiol en aceite de sésamo, y luego mezclar el aceite de sésamo con la Nutella. Se recomienda que cada porción diaria contiene 28 mg 17β-estradiol, 5 l de aceite de sésamo y 1 g de Nutella por kilogramo de peso corporal para las ratas y 1,12 mg 17β-estradiol, 0.312 l de aceite de sésamo y 60 mg de Nutella para cada ratón de 30 g. Placebo nueces crema se prepara de forma idéntica, salvo sin el 17β-estradiol. </li><li> Capacitar a los animales para comer libre de hormonas de nuez de crema durante cinco días antes del experimento. Los primeros tres días de entrenamiento, las ratas de forma óptima, debe estar capacitado en grupos (aproximadamente 0,5 g de Nutella 2-5 animales), en sus propias jaulas. En los días cuarto y quinto de la formación, los animales se colocan en jaulas separadas antes de recibir la porción diaria para asemejarse a la situación experimental. </li><li> Durante el experimento, los animales se colocan en jaulas separadas para cada ocasión de alimentación, después de lo cual la porción de Nutella se sirve en pequeñas baldosas de cerámica. Si la formación se ha realizado el anterior, oexperiencia ur es que más del 95% de las ratas y ratones aceptar la tuerca de crema, y ​​una vez completamente habituados, la mayoría de los animales que consumen en cuestión de segundos. </li></ol> 4. Los resultados representativos Suero fisiológico 17β-estradiol concentraciones, que los métodos actuales apuntan a reproducir, es de aproximadamente 5 a 140 pg / ml para las ratas y 5-35 pg / ml para los ratones 4,6. Las cápsulas subcutáneas silastic de acuerdo con las instrucciones anteriores, cuando se administra a 300 g hembra Sprague-Dawley, producir disminuyendo lentamente 17β-estradiol concentraciones de suero de alrededor de 40 pg / ml el día 2 a 10 pg / ml el día 35. Sin embargo, inmediatamente después de la administración, un pico de concentración en suero alrededor de 1000 pg / ml se puede esperar, cayendo al rango fisiológico dentro de las 8 horas (Figura 1A) 4,5. Las cápsulas de silastic para los ratones descritos anteriormente con 17β-estradiol/mL mg de 36 años, cuando se administró a 25 mujeres C57BL g / 6 ratones, hacer que el suero concentradoentrations que poco a poco disminuyen de aproximadamente 90 pg / mL día 2 a 25 pg / mL día 35. Esto es, probablemente, precedido por un pico similar como se encontró en las ratas, aunque esto no ha sido investigado (Figura 1B) 6. El método Nutella peroral con las dosificaciones se ha descrito anteriormente, cuando se administra a 300 g hembra Sprague-Dawley, hace que los niveles fisiológicos de 17β-estradiol con las fluctuaciones diarias entre 10-70 pg / ml (Figura 2A) 4. Para ratones utilizando la dosis anterior, los niveles diarios fluctúan entre aproximadamente 20 y 120 pg / ml 6 (Figura 2B). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4013/4013fig1.jpg" /> <st<html> . rong&gt; Figura 1 se presentan los gráficos estilizados 17β-estradiol concentraciones en ratas (A, n = 10 en los puntos de tiempo hasta 24 h, n = 15 en los puntos de tiempo posteriores) 4,5 y los ratones (B, n = 10) 6 después de la implantación de cápsulas. Las cápsulas de silastic producir un pico corto inicial de las concentraciones séricas de hasta 1000 pg / ml, pero la disminución en cuestión de horas a niveles inferiores a 100 pg / ml. Para las próximas semanas 4-5, las cápsulas de rendimiento estable, aunque cada vez menor, las concentraciones séricas. Las áreas sombreadas corresponden a fisiológicos 17β-estradiol concentraciones séricas en ratas hembra intactas y ratones, respectivamente. A pesar de que visualmente no se muestra en los gráficos, hay variabilidad interindividual en las concentraciones de 17β-estradiol, lo que hace coeficientes de variación desde 27 hasta 183% en las ratas y de 28 a 115% en los ratones con el método de la cápsula de silastic (media muy baja concentraciones a menudo generan altos coeficientes de variación). iles/ftp_upload/4013/4013fig2.jpg &quot;/&gt; Figura 2 gráficos estilizados presentan 17β-estradiol concentraciones en ratas (A, n = 15). 4 y ratones (B, n = 10) 6, como consecuencia de la administración de hormonas diaria en Nutella. El método Nutella peroral hace picos diarios, sin embargo, con mucho, no tan alta como producido por vía subcutánea o métodos intravenosos. Esto imita la farmacocinética de la terapia humana sustitución hormonal, y el tratamiento por vía oral puede proceder durante tanto tiempo como sea necesario, incluso si el ejemplo anterior sólo presentan un período inicial de 96 horas. Las áreas sombreadas corresponden a fisiológicos 17β-estradiol concentraciones séricas en ratas hembra intactas y ratones, respectivamente. Aunque no se demostró visualmente en los gráficos, hay variabilidad interindividual en las concentraciones de 17β-estradiol, lo que hace coeficientes de variación desde 40 hasta 132% en las ratas y de 13 a 219% en los ratones con el método de Nutella (concentraciones medias muy bajas a menudo generan altacoeficientes de variación).

<ol><li>Strom, J. O., Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-related+neuroprotective+versus+neurodamaging+effects+of+estrogens+in+rat+cerebral+ischemia%3A+a+systematic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Dose-related neuroprotective versus neurodamaging effects of estrogens in rat cerebral ischemia: a systematic analysis.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 29, 1359-1372 (2009).</li>
<li>Strom, J. O., Theodorsson, E., Holm, L., Theodorsson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Different+methods+for+administering+17beta-estradiol+to+ovariectomized+rats+result+in+opposite+effects+on+ischemic+brain+damage%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Different methods for administering 17beta-estradiol to ovariectomized rats result in opposite effects on ischemic brain damage.</a> BMC Neurosci. 11, 1471-2202 (2010).</li>
<li>Strom, J. O., Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hormesis+and+Female+Sex+Hormones%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmaceuticals%22%5BJournal%5D)">Hormesis and Female Sex Hormones.</a> Pharmaceuticals. 4, 15(2011).</li>
<li>Isaksson, I. M., Theodorsson, A., Theodorsson, E., Strom, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+17beta-estradiol+administration+to+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Scandinavian+journal+of+clinical+and+laboratory+investigation%22%5BJournal%5D)">Methods for 17beta-estradiol administration to rats.</a> Scandinavian journal of clinical and laboratory investigation. , (2011).</li>
<li>Strom, J. O., Theodorsson, E., Theodorsson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Order+of+magnitude+differences+between+methods+for+maintaining+physiological+17beta-oestradiol+concentrations+in+ovariectomized+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Scand.+J.+Clin.+Lab+Invest%22%5BJournal%5D)">Order of magnitude differences between methods for maintaining physiological 17beta-oestradiol concentrations in ovariectomized rats.</a> Scand. J. Clin. Lab Invest. 68, 814-822 (2008).</li>
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<li>Kalliokoski, O., Jacobsen, K. R., Hau, J., Abelson, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serum+concentrations+of+buprenorphine+after+oral+and+parenteral+administration+in+male+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Vet.+J%22%5BJournal%5D)">Serum concentrations of buprenorphine after oral and parenteral administration in male mice.</a> Vet. J. 187, 251-254 (2011).</li>
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<li>Wise, P. M., Dubal, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol+protects+against+ischemic+brain+injury+in+middle-aged+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Estradiol protects against ischemic brain injury in middle-aged rats.</a> Biol. Reprod. 63, 982-985 (2000).</li>
<li>Saleh, T. M., Cribb, A. E., Connell, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estrogen-induced+recovery+of+autonomic+function+after+middle+cerebral+artery+occlusion+in+male+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Estrogen-induced recovery of autonomic function after middle cerebral artery occlusion in male rats.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 281, 1531-1539 (2001).</li>
<li>Bingham, D., Macrae, I. M., Carswell, H. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detrimental+effects+of+17beta-oestradiol+after+permanent+middle+cerebral+artery+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Detrimental effects of 17beta-oestradiol after permanent middle cerebral artery occlusion.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 25, 414-420 (2005).</li>
<li>Carswell, H. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+17beta-estradiol+upon+stroke+damage+in+stroke+prone+and+normotensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Differential effects of 17beta-estradiol upon stroke damage in stroke prone and normotensive rats.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 24, 298-304 (2004).</li>
<li>Yong, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((17beta-estradiol+potentiates+ischemia-reperfusion+injury+in+diabetic+ovariectomized+female+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">17beta-estradiol potentiates ischemia-reperfusion injury in diabetic ovariectomized female rats.</a> Brain Res. 1054, 192-199 (2005).</li>
<li>Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol+increases+brain+lesions+in+the+cortex+and+lateral+striatum+after+transient+occlusion+of+the+middle+cerebral+artery+in+rats%3A+no+effect+of+ischemia+on+galanin+in+the+stroke+area+but+decreased+levels+in+the+hippocampus%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">Estradiol increases brain lesions in the cortex and lateral striatum after transient occlusion of the middle cerebral artery in rats: no effect of ischemia on galanin in the stroke area but decreased levels in the hippocampus.</a> Peptides. 26, 2257-2264 (2005).</li>
<li>Levin-Allerhand, J. A., Sokol, K., Smith, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safe+and+effective+method+for+chronic+17beta-estradiol+administration+to+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Safe and effective method for chronic 17beta-estradiol administration to mice.</a> Contemp. Top Lab Anim. Sci. 42, 33-35 (2003).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Los modos de administración presentados anteriormente tienen en estudios anteriores demostró ser superior a comerciales gránulos de liberación lenta y las inyecciones en términos de producir fisiológicas concentraciones séricas de 17β-estradiol. Mientras gránulos de liberación lenta, producen picos séricos muy elevados y prolongados de concentración, las inyecciones causar fluctuaciones extremas, la hormona del día y requieren un manejo estresante repetida de los animales de 4-6. La importancia de elegir los ...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios </td></tr><tr><td> Rimadyl, 50 mg / ml </td><td> Pfizer </td><td> 462986 </td><td> La analgesia postoperatoria después de la ovariectomía. </td></tr><tr><td> Lubrithal gel para los ojos </td><td> Laboratorios LEO Pharma </td><td></td><td> Protección de los ojos durante la cirugía. </td></tr><tr><td> Jodopax veterinario </td><td> Pharmaxim </td><td></td><td> Cirugía desinfección. </td></tr><tr><td> Sutura de Vicryl 4-0 </td><td> Johnson &amp; Johnson </td><td></td><td> Sutura de la herida y la ligadura de ovario. </td></tr><tr><td> 17β-estradiol,&gt; 98% </td><td> Sigma </td><td> E8875-1G </td><td> En aceite de ajonjolí para las cápsulas de silastic y Nutella. </td></tr><tr><td> Aceite de sésamo </td><td> Sigma </td><td> S3547-1L </td><td> Disolución de la 17β-estradiol. </td></tr><tr><td> Tubos de Silastic, ID / OD: 1.575/3.175 mm </td><td> Dow Corning </td><td> 508-008 </td><td> La producción de cápsulas de silastic. </td></tr><tr><td> Aplicador de madera </td><td> Selefatrade </td><td> 12-0783 </td><td> La nivelación de las cápsulas de silastic. </td></tr><tr><td> Nutella </td><td> Ferrero </td><td></td><td> Medio para la vía oral 17β-estradiol. </td></tr></tbody></table>

ovariectomía y 17β-estradiol reemplazo en ratas y ratones: una demostración visual

Ovariectomy and 17&beta;-estradiol Replacement in Rats and Mice: A Visual Demonstration

Los estrógenos son una familia de hormonas sexuales femeninas con un espectro excepcionalmente amplia de efectos. Cuando las ratas y los ratones son utilizados en la investigación de los estrógenos que son comúnmente ovariectomizadas con el fin de realizar la ablación de la producción de hormonas de ciclo rápido, en sustitución de la exógena 17β-estradiol. Hay, sin embargo, la falta de consenso respecto a cómo la hormona debe ser administrado para obtener las concentraciones fisiológicas de suero. Esto es crucial ya que el nivel de 17β-estradiol / método de administración influye profundamente en los resultados experimentales 1-3. Tenemos en una serie de estudios que se caracterizan los diferentes modos de administración de 17β-estradiol, encontrando que subcutáneos cápsulas de silastic y por vía oral Nutella nuez de crema son superiores a las disponibles en el mercado pastillas de liberación lenta (producido por la compañía Research innovador de América) y inyecciones diarias en términos de producción fisiológicas las concentraciones séricas de 17β-estradiol 6.4. Entre los advantages del método tuerca-crema, que previamente ha sido utilizado para la buprenorfina administración 7, es que cuando se utiliza para la administración de estrógenos que se asemeja a la terapia de sustitución hormonal por vía oral y no es invasivo. Las cápsulas subcutáneas silastic son convenientes y producir las concentraciones séricas más estables. Este artículo video contiene paso a paso las demostraciones de la ovariectomía y 17β-estradiol reemplazo de la hormona por las cápsulas de silastic y Nutella por vía oral en ratas y ratones, seguidos por una discusión de aspectos importantes de los procedimientos de gestión.

Ovariectomía y la consiguiente sustitución de 17β-estradiol por medio de cápsulas de Silastic y Nutella por vía oral se ha demostrado en ratas y ratones.

Ovariectomía y 17β-estradiol reemplazo en ratas y ratones: una demostración visual

Los estrógenos son una familia de hormonas sexuales femeninas con un espectro de efectos excepcionalmente amplio. Cuando se utilizan ratas y ratones en la investigación sobre los estrógenos, estos son...

El objetivo general de este procedimiento es lograr un control estricto sobre las concentraciones séricas de estrógeno, que de otro modo fluctuarían, en ratas y ratones hembra. Esto se consigue primero mediante la extirpación de los ovarios por la vía dorsal. A continuación, se preparan cápsulas de cel elástica y una mezcla de Nutella.Finalmente, se inserta una cápsula por vía subcutánea, o se administra la mezcla de Nutella por vía oral. En última instancia, los resultados pueden obtenerse mediante radioinmunoensayo, que muestra concentraciones séricas estables o fluctuantes de 17 beta-estradiol para los métodos de cápsula y Nutella, respectivamente. La principal ventaja de estas técnicas frente a métodos existentes como los comprimidos de liberación lenta es que se ha demostrado que producen concentraciones fisiológicas de estradiol durante períodos prolongados de tiempo.Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del estrógeno, como las diferencias en los efectos entre la administración, las raíces y las dosis. Después de anestesiar al animal, colóquelo en posición prona sobre una placa calefactora conectada a un termómetro rectal. Aplique IGEL y para alivio postoperatorio en la cara lateral del cuello del animal por vía subcutánea.Administre cinco miligramos por kilogramo de IL en solución salina anteriormente desde la cresta ilíaca en un área de cuatro por cuatro centímetros. Luego desinfecte el área con un antiséptico antes de cubrir el animal con una hoja quirúrgica de cuatro por cuatro centímetros de abertura. Realice una incisión media de dos a tres centímetros y separe por disección romo la piel de la fascia subyacente, un centímetro lateral a la línea media.Realice otra incisión a través de la fascia. Luego, lo más superficialmente posible, realice una disección roma lateralmente bajo esta fascia hasta alcanzar la cavidad abdominal. Con pinzas, tome el tejido adiposo que rodea el ovario en la cavidad abdominal y extráigalo suavemente.Identifique el ovario y ligue los cuernos uterinos y los vasos a 0,5 a un centímetro proximalmente a esta estructura. Extraiga el ovario y el tejido adiposo ligado y coloque el tejido restante de vuelta en la cavidad abdominal.Realice otra incisión en la fascia contralateral y extraiga el otro ovario. Cierre las heridas y, si no va a administrar inmediatamente 17 beta estradiol, permita que el animal despierte de la anestesia.Coloque al animal en una jaula calentada durante al menos dos horas después de la cirugía. Mantenga a la rata separada durante los primeros días posteriores a la cirugía. 24 horas después de la cirugía, por vía subcutánea.Inyecte los animales con otros cinco miligramos por kilogramo de IL para administrar 17 beta-estradiol mediante cápsulas de silastic. Mezcle bien la cantidad deseada en aceite de sésamo. Corte trozos de tubo de silastic de tres centímetros de longitud y trozos de aplicadores de madera de cinco milímetros de largo para taponar, utilizando pinzas.Presione un tapón de madera dentro de la cápsula escolar antes de inyectar la solución de 17 beta estradiol en aceite de sésamo. Para llenar toda la longitud, tape suavemente el extremo abierto de la cápsula escolar con otro tapón de madera. Incube las cápsulas en la solución restante de 17 beta estradiol durante la noche antes de la implantación.Después de cerrar las incisiones de la ectomía, afeite y desinfecte un área cuadrada de dos por dos centímetros en la cara dorsal del cuello de la rata. Realice una incisión de un centímetro y seccione el cordón de forma lateral y roma. Diseque un bolsillo subcutáneo creando suficiente espacio para la cápsula.Limpie la cápsula escolar e insértela suavemente a través de la incisión. Luego cierre la incisión con una sutura. Asegúrese de que la cápsula tense la piel lo menos posible, especialmente alrededor de la herida.Para utilizar la crema de nueces Nutella como medio de administración de estrógeno, disuelva completamente el 17 beta-estradiol en aceite de sésamo y luego mezcle el aceite de sésamo con la crema de nueces. Prepare una crema de nueces placebo sin 17 beta-estradiol cinco días antes del experimento. Entrene a las ratas para que consuman la crema de nueces libre de hormonas desde el día uno hasta el tres.Entrene a los animales en grupos durante los días cuarto y quinto. Aliméntelos con la crema de nuez en jaulas separadas durante todo el experimento. Coloque a los animales en jaulas separadas cuando se les administre el suero fisiológico de crema de nuez.Las concentraciones de estradiol 17 beta, que los métodos actuales buscan reproducir, son aproximadamente de cinco a 140 picogramos por mililitro para ratas, y de cinco a 35 picogramos por mililitro para ratones. Como se muestra aquí, cuando se administran a ratas hembra Sprague Dawley de 300 gramos.Las cápsulas elásticas subcutáneas producen concentraciones séricas decrecientes lentamente de 17 beta estradiol, desde aproximadamente 40 picogramos por mililitro en el día dos hasta 10 picogramos por mililitro en el día 35. Sin embargo, inmediatamente después de la administración, se puede esperar un pico de concentración sérica de aproximadamente 1000 picogramos por mililitro, que disminuye al rango fisiológico dentro de las ocho horas siguientes cuando las cápsulas se administran a ratones hembras C57BL/6 de 25 gramos.La concentración sérica disminuyó lentamente de aproximadamente 90 picogramos por mililitro el día dos a 25 picogramos por mililitro el día 35 cuando se administró mediante la crema de nueces a 300 gramos. Spra de ratas. Los niveles fisiológicos de 17 beta-estradiol fluctuaron diariamente entre 10 y 70 picogramos por mililitro en ratones.Los niveles de estradiol 17 beta oscilaron entre 20 y 120 picogramos por mililitro. Una vez dominada, la técnica de ectomía e implantación de la cápsula puede realizarse en 10 minutos si se realiza correctamente. Al intentar este procedimiento, es importante recordar adherirse estrictamente a las pautas de higiene.

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Este manuscrito describe una forma consistente de realizar rápidamente orquiectomías y ovariectomías de supervivencia en roedores.

Orquiectomía murina y ovariectomía para reducir la producción de hormonas sexuales

El establecimiento del embarazo es un proceso dinámico que involucra diafonía compleja entre embriones y úteros. Las contribuciones precisas del entorno uterino materno a estos procesos siguen siendo un área activa de investigación. Aquí, se proporcionan protocolos detallados para ayudar en el diseño de modelos animales in vivo para abordar estas preguntas de investigación.

Métodos para estudiar las contribuciones uterinas al establecimiento del embarazo en un modelo de ratón ovariectomizado

Aquí se presenta un protocolo para demostrar que la cápsula de Bazi Bushen (BZBS) puede regular la vía de señalización RANKL/OPG en el modelo de roedor ovariectomizado a través de su efecto similar al estrógeno.

Efecto similar al estrógeno de la cápsula de Bazi Bushen en ratas ovariectomizadas

La hormona folículo estimulante (FSH) en varios tejidos y órganos extragonadales se asocia con la patogénesis de múltiples enfermedades. El modelo de ratón ovariectomizado y tratado con FSH (OVF) se puede utilizar para explorar las acciones extragonadales de la FSH.

Exploración de los efectos independientes de la hormona folículo estimulante in vivo en un modelo de ratón

Este protocolo introduce una técnica para inducir modelos de síndrome de ovario poliquístico (SOP) en ratones mediante la liberación controlada de letrozol utilizando minibombas. Bajo la anestesia adecuada, la minibomba se implantó por vía subcutánea y se indujo con éxito el SOP en los ratones después de un cierto período de liberación de la minibomba.

Una técnica modificada para inducir el síndrome de ovario poliquístico en ratones

Aprenda a realizar ovariectomía y reemplazo de 17β-estradiol en ratas y ratones usando cápsulas de silastic y mezcla oral de Nutella. Este método permite controlar niveles hormonales estables para estudios de neurociencia y endocrinología.

Ovariectomía y 17β-estradiol reemplazo en ratas y ratones: una demostración visual

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