Name: La estimulación mecánica de condrocitos-agarosa hidrogeles (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-27T19:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 45 s
Description: Aprende a aplicar carga mecánica compresiva dinámica a condrocitos encapsulados en hidrogeles de agarosa. Este método evalúa la síntesis de colágeno y proteoglicanos en ingeniería de tejidos.

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1. Aislamiento de condrocitos articulares primarios Cosecha 10-15 rebanadas completo de cartílago de espesor de las superficies articulares de las articulaciones de animales (por ejemplo, la articulación metacarpiana-falángica de vacas esqueléticamente maduros obtenidos de un matadero local). <ol><li> Colocar las rodajas de cartílago en un 100 mm placa de Petri y se incuba en 20 ml de 0,5% de proteasa en Ham F-12 (w / v) durante 2 horas a 37 ° C. Enjuague tres veces en medios de cultivo de Ham F-12, y se incuba con 20 ml de 0,15% de colagenasa A en los medios de cultivo de Ham F-12 durante la noche a 37 ° C. </li><li> Se filtra la suspensión celular a través de un filtro de malla 200 de pantalla en un plato limpio. Lavar el filtro con 5 ml de Ham F-12 y añadir al plato. Transferir la suspensión celular a un tubo cónico de 50 ml. Lavar la placa de Petri con 10 ml de Ham F-12 y añadir al tubo cónico. </li><li> Centrifugar el tubo a 600-800 rcf durante 6-8 min a temperatura ambiente. </li><li> Aspirar el sobrenadante y asegúrese de no molestar ªe pastilla de células y volver a suspender en 40 ml de medio de cultivo de Ham F-12. </li><li> Centrifugar el tubo a 600-800 rcf durante 6-8 min. </li><li> Repetir los pasos 1,4 y 1,5 veces más para un total de 3 veces. Antes de la centrifugación de la tercera vez, resuspender el precipitado a través de la agitación y obtener una alícuota de 500 l para el recuento celular. </li><li> Contar las células viables usando el método de exclusión con azul de tripano 9 con un hemocitómetro y un microscopio de luz invertida. </li><li> Aspirar el sobrenadante y volver a suspender el sedimento en un volumen de 12-F de Ham al doble de la densidad de siembra deseada (por ejemplo 20 x 10 6 células / ml para una concentración final de 10 x 10 6 células / ml después de la encapsulación). </li></ol> 2. Condrocito-agarosa hidrogel Encapsulación <ol><li> Calor 0,8 g autoclave Tipo VII de agarosa en 20 ml de PBS 1x estéril (pH 7,4) en una placa caliente ajustada a 120 ° C hasta que se disolvió. Una vez disuelto, reducir el calor a 60 ° C como temperaturas más altas will afectar la viabilidad celular. </li><li> En un tubo cónico de 50 ml, mezclar cuidadosamente volúmenes iguales de la suspensión celular con el doble de la concentración deseada de agarosa (por ejemplo, 4% de suspensión de agarosa para una final de 2% de hidrogel de agarosa). Evitar la creación de burbujas grandes, ya que pueden afectar a la viabilidad celular y la construcción de la vida de fatiga. </li><li> Cuidadosamente alícuota de 10 ml de la mezcla de condrocito-agarosa en un diámetro de 60 mm placa de Petri, evitando al mismo tiempo la creación de burbujas grandes. </li><li> Dejar reposar durante 30 minutos a temperatura ambiente hasta que gelificó. </li><li> Obtener el mayor número de condrocitos-agarosa muestras de hidrogel, según sea necesario (típicamente 20-30) usando un punzón de biopsia de 4 mm. </li><li> Mida y registre las dimensiones físicas (diámetro y altura) de muestras representativas utilizando un micrómetro. Las construcciones debe ser aproximadamente 5 mm de altura, descartar cualquier muestras obtenidas de una región donde la varianza altura de la muestra fue mayor que 2%. </li><li> Transferir las muestras a un nuevo 60 mm placa de Petri y suplementocon 10 ml de medio completo (20% por ejemplo, suero bovino fetal en medios de cultivo de Ham F-12 con 20 mM de HEPES, 100 g / ml de ácido ascórbico, y antibióticos / antimicóticos 2x). </li></ol> 3. La estimulación mecánica y radiomarcaje de condrocitos-agarosa hidrogeles <ol><li> Esterilizar en autoclave los componentes metálicos de la instalación de compresión. Esterilizar los componentes de plástico con 70% de etanol (durante la noche) y luz UV (por lo menos durante 15 min). </li><li> Para mantener las construcciones que se caiga, usando fórceps, lugar 12 anillos de plástico estériles de retención (con un diámetro interior mayor que el diámetro constructo) (n = 6, muestras y controles) en los pocillos de una placa de cultivo de 24 pocillos. </li><li> Utilizando pinzas, transferir cuidadosamente los hidrogeles de condrocitos-agarosa de la placa de Petri a la placa de 24-así, asegurando cada uno en un anillo de retención. </li><li> Transferir 400 l de medio completo (por ejemplo, 20% de FBS en los medios de cultivo de Ham F-12 con 20 mM de HEPES, 100 ug / ml de ácido ascórbico, y2x antibióticos / antimicóticos) a cada pocillo de muestra. </li><li> Montar la plataforma de compresión esterilizada (Figura 1) y fije las placas con tornillos de fijación. Una el equipo de perforación de compresión a la placa de cultivo de 24 pocillos. </li><li> Suelte y vuelva a sujetar-los tornillos de ajuste para establecer platina de hidrogel de contacto (cero estado de deformación). </li><li> Cargue la plataforma de compresión montado en un Mach-1 Testing System micromecánica. Plataforma segura para la etapa vertical mediante pasador de posicionamiento y bloqueo en su lugar con el tornillo de fijación. Retire la plantilla de interlineado. </li><li> Aplicar una carga de compresión dinámica en amplitud deseada (por ejemplo, 10% de amplitud de deformación sobre la base de la altura original de las muestras), la frecuencia (por ejemplo, 1 Hz) y la duración o el número de ciclos (por ejemplo, intervalos de tiempo de hasta 60 min). </li><li> Tras la finalización de la estimulación mecánica, sustituir la plantilla espaciamiento, afloje el tornillo de pasador de fijación localizar y eliminar la plataforma de compresión y la placa de cultivo de Mach-1 Testing System micromecánicos. </li&gt; <li> Radiomarcador hidrogel células constructos suplementando el medio con 5 Ci de isótopo deseado (por ejemplo, [3 H]-prolina etiqueta de proteínas para la síntesis de colágeno específico de condrocitos y [35 S]-azufre para la síntesis de proteoglicanos). </li><li> Incubar los constructos radiomarcados para 24 horas a 37 ° C, 5% CO 2 10. </li><li> Cosechar los constructos de hidrogel radiomarcados y enjuague 3 veces en 1X PBS (pH 7,4) para eliminar cualquier isótopo no incorporado. Digest muestras usando papaína (40 ug / ml en 20 mM de acetato de amonio, 1 mM de ácido ethyldiaminetetraacetic y 2 mM de ditiotreitol a 65 ° C durante 72 hr). </li><li> Ensayo para digerir el contenido de ADN mediante el ensayo PicoGreen tinte 11 y actividad incorporada isótopo, normalizado a contenido de ADN, por β-líquido de centelleo contando 12,13 digestión con papaína inmediatamente siguiente. </li></ol> Nota: La compra y venta de materiales radiactivos (isótopos y elementos de desechoque puedan haber estado en contacto con materiales radioactivos) debe seguir el institucional relevante (y / o gubernamentales) Políticas y procedimientos para la manipulación y eliminación de sustancias radiactivas. 4. Los resultados representativos Bovina condrocitos articulares-agarosa construcciones hidrogeles (2% de agarosa con 10 x 10 6 células / ml células encapsuladas) fueron estimuladas mecánicamente a una amplitud de 10% de deformación a la compresión a una frecuencia de 1 Hz durante 20 a 60 min (o 1.200 ciclos a 3.600 ) y se ensayó el contenido de ADN y la síntesis de matriz extracelular mediante la incorporación de radioisótopos. ADN y la síntesis de matriz extracelular se vio afectada de una manera dependiente de la dosis. Contenido de ADN mostraron una disminución significativa del 35% como resultado de 20 o 30 min de estimulación (p &lt;0,01), mientras que 60 min de estimulación no mostró ningún efecto (Figura 2). Cartílago específicos de la síntesis de colágeno y proteoglicanos (determinado por [3 H]-prolina y[35 S]-azufre incorporación, respectivamente) mostraron incrementos significativos de aproximadamente 60% ​​en respuesta a 20 o 30 min de estimulación (p &lt;0,01), con 60 min de estimulación que no presenta efecto observable (Figura 3). <img src="/files/ftp_upload/4229/4229fig1.jpg" alt="Figura 1" /> . Figura 1 Esquema de la plataforma de compresión dinámica hecha a la medida para estimular condrocitos agarosa construcciones de la izquierda:. Plataforma ensamblada Derecha:. Despiece que muestra los componentes individuales. <img src="/files/ftp_upload/4229/4229fig2.jpg" alt="Figura 2" /> Cambios Figura 2. En el contenido de ADN de condrocito-agarosa hidrogeles mecánicamente estimulados bajo una amplitud de deformación 10% de compresión a 1 Hz durante 20 a 60 min (media ± SEM, n = 6/grupo). Cambios Figura 3. En la síntesis de matriz extracelular (colágeno y proteoglicanos) de condrocito-agarosa hidrogeles mecánicamente estimulados bajo amplitud de la deformación a la compresión 10% a 1 Hz durante 20 a 60 minutos (media ± SEM, n = 6/grupo).

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<li>Chowdhury, T. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporal+regulation+of+chondrocyte+metabolism+in+agarose+constructs+subjected+to+dynamic+compression%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Biochemistry+and+Biophysics%22%5BJournal%5D)">Temporal regulation of chondrocyte metabolism in agarose constructs subjected to dynamic compression.</a> Archives of Biochemistry and Biophysics. 417, 105-111 (2003).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

<html> El método descrito para la aplicación de estímulos mecánicos controlados a la celda de semilla de agarosa hidrogeles permite la investigación directa en los efectos dinámicos de las fuerzas de compresión sobre el metabolismo de los condrocitos. El uso de la plataforma de pruebas de medida junto con los anillos de retención proporcionado restricción lateral para las construcciones para evitar problemas potenciales de la muestra de inflexión. El uso de platos de carga muerta ponderados fijados por los equipos conjun...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo o equipo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios (opcional) </td></tr><tr><td> Ham F-12 </td><td> Thermo Fisher Scientific </td><td> SH3001002 </td><td></td></tr><tr><td> Colagenasa A </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> C0130 </td><td></td></tr><tr><td> Proteasa </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> P5147 </td><td></td></tr><tr><td> Suero Bovino Fetal </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> F1051 </td><td></td></tr><tr><td> Ascorbato </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> A4034 </td><td></td></tr><tr><td> Antibióticos / antimicóticos </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> A5955 </td><td></td></tr><tr><td> HEPES </td><td> Bioshop Canada Ltd. </td><td> HEP001 </td><td></td></tr><tr><td> Trypan azul </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> 93595 </td><td></td></tr><tr><td> Reichert Bright-Line Hemocitómetro </td><td> Hausser Scientific </td><td> 1490 </td><td></td></tr><tr><td> Quant-iT PicoGreen </td><td> Invitrogen </td><td> P7589 </td><td></td></tr><tr><td> La papaína de la papaya látex </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> P3125 </td><td></td></tr><tr><td> Acetato de amonio </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> A1542 </td><td></td></tr><tr><td> Ácido Ethyldiaminetetraacetic </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> E9884 </td><td></td></tr><tr><td> DL-ditiotreitol </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> 43819 </td><td></td></tr><tr><td> Bajo punto de fusión de agarosa, Tipo VII </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> A9045 </td><td></td></tr> &lt;tr&gt; <td> Pantalla de malla (200) Filtrar </td><td> Sigma Aldrich Ltd. </td><td> S4145 </td><td></td></tr><tr><td> Mach-1 Tester micromecánico </td><td> Biomomentum Inc. </td><td> V500cs </td><td></td></tr><tr><td> Compresión Cargando Jig </td><td> Custom-construido </td><td></td><td> Producto similar podría ser suministrada por Biomomentum Inc. </td></tr><tr><td> Falcon 24 Placa de Cultura Bien </td><td> Thermo Fisher Scientific </td><td> B353047 </td><td></td></tr><tr><td> β-líquido contador de centelleo </td><td> Beckman Coulter </td><td> LS6500 </td><td></td></tr><tr><td> [3H] Proline </td><td> Perkin-Elmer </td><td> NET323005MC </td><td></td></tr><tr><td> [35S] Azufre </td><td> Perkin-Elmer </td><td> NEX041005MC </td><td></td></tr></tbody></table>

la estimulación mecánica de condrocitos-agarosa hidrogeles

Mechanical Stimulation of Chondrocyte-agarose Hydrogels

El cartílago articular sufre de una capacidad limitada de reparación deteriorados por el insulto mecánico o degradados por la enfermedad, tal como la osteoartritis. Para remediar esta deficiencia, varias intervenciones médicas se han desarrollado. Uno de tales métodos es para recubrir la zona dañada con cartílago de tejido de ingeniería, sin embargo, la ingeniería de tejidos típicamente carece de las propiedades bioquímicas y la durabilidad de cartílago nativo, cuestionando su supervivencia a largo plazo. Esto limita la aplicación de la ingeniería de tejido cartilaginoso a la reparación de pequeños defectos focales, basándose en el tejido circundante para proteger el material implantado. Para mejorar las propiedades del tejido desarrollado, la estimulación mecánica es un método popular utilizado para mejorar la síntesis de la matriz extracelular cartilaginosa, así como las propiedades mecánicas resultantes de la ingeniería tisular. La estimulación mecánica se aplica fuerzas al tejido construye análoga a las experimentadas in vivo. Estase basa en la premisa de que el entorno mecánico, en parte, regula el desarrollo y mantenimiento de 1,2 tejido nativo. La forma más comúnmente aplicado de la estimulación mecánica en la ingeniería de tejido de cartílago es la compresión dinámica a cepas fisiológicos de aproximadamente 5-20% a una frecuencia de 1 Hz a 1,3. Varios estudios han investigado los efectos de la compresión dinámica y han demostrado que tienen un efecto positivo sobre el metabolismo de los condrocitos y la biosíntesis, en última instancia, afectar a las propiedades funcionales del tejido 4-8 desarrollado. En este trabajo, se expone el método para estimular mecánicamente condrocitos agarosa construcciones de hidrogel bajo compresión dinámica y analizar los cambios en la biosíntesis a través de ensayos bioquímicos y radioisótopos. Este método también puede ser fácilmente modificado para evaluar cualquier cambio potencialmente inducidos en respuesta celular como resultado de estímulos mecánicos.

La biosíntesis de la matriz extracelular cartilaginosa por los condrocitos pueden ser afectados por la aplicación de estímulos mecánicos. Este método describe la técnica de aplicación de dinámicas tensiones compresivas a los condrocitos encapsulados en construcciones en 3D y la evaluación de los cambios inducidos en el metabolismo de los condrocitos.

La estimulación mecánica de condrocitos-agarosa hidrogeles

El cartílago articular posee una capacidad de reparación limitada cuando sufre daños por traumatismos mecánicos o se degrada debido a enfermedades, como la osteoartritis. Para remediar...

El objetivo general de este procedimiento es aplicar una carga compresiva mecánica dinámica a hidrogeles sembrados con células. Para ello, se obtienen células primarias mediante disección y digestión enzimática de fragmentos de cartílago. Las células aisladas se encapsulan en un hidrogel de agarosa al 2%, y se crean constructos sembrados con células utilizando un punzón de biopsia.A continuación, las muestras se colocan en el dispositivo de carga compresiva y se cargan en un estimulador micro-mecánico Mach One. Luego se aplica una carga compresiva dinámica a los constructos sembrados con células para evaluar la síntesis de colágeno y proteoglicanos. Los constructos se etiquetan radiactivamente tras la incubación incorporada.Los isótopos se cuantifican mediante recuento de centelleo de los datos resultantes, que se normalizan respecto al ADN. El contenido muestra cambios en la síntesis de la matriz extracelular tras la estimulación mecánica. Aunque este método puede proporcionar información sobre la respuesta en el sitio opuesto y la estimulación mecánica.También puede aplicarse a otros sistemas, como células madre, otros tejidos conectivos o células mecanorreceptoras. Las articulaciones metacarpofalángicas de vacas maduras esqueléticamente utilizadas aquí se obtuvieron de un matadero local que trabaja en un área de disección estéril. En una cabina de flujo laminar, coloque las rodajas de cartílago en una placa de Petri de 100 milímetros de diámetro que contenga 20 mililitros de medio Ham's F-12 con 0,5 % de proteasa e incube durante dos horas a 37 °C.Tras el vacío de incubación, aspire la solución de proteasa y enjuague las secciones añadiendo suavemente medio de cultivo Hams F-12 con agitación suave, luego aspire el medio. Repita este lavado otras dos veces; tras el tercer lavado, aspire al vacío el medio de cultivo.Añada 20 mililitros de Hams F12 que contenga 0,15 % de colagenasa A e incube los cultivos durante la noche a 37 grados Celsius. Al día siguiente, aspire la suspensión celular a través de un filtro de malla de 200 aberturas hacia un plato de Petri limpio; para lavar el filtro, aspire cinco mililitros adicionales de Hams F12, recogiendo el filtrado en el mismo recipiente. Transfiera la suspensión celular a un tubo cónico de 50 mililitros.Lave la placa de Petri con 10 mililitros de Hams F12. A continuación, añada la solución de lavado al tubo cónico. Centrifugue el tubo a 600-800 RCF durante seis a ocho minutos a temperatura ambiente.Una vez finalizada la centrifugación, aspire el sobrenadante teniendo cuidado de no perturbar el botón celular. Reuspenda el botón en 40 mililitros de medio de cultivo. Centrifugue el tubo a 600-800 RCF durante seis a ocho minutos.Repita la aspiración, la resuspensión y la centrifugación otras dos veces, para un total de tres veces antes del tercer centrifugado. Resuspenda el precipitado mediante agitación y tome una alícuota de 500 microlitros para el recuento celular. Durante el tercer centrifugado, utilice un hemocitómetro y un microscopio óptico invertido para contar las células viables en la alícuota mediante exclusión con azul de tripano.Luego, una vez determinado el número de células y completada la tercera centrifugación, aspire el sobrenadante y resuspenda el precipitado. Suspenda el pellet en un volumen de medio de cultivo al doble de la densidad de siembra deseada. Aquí, los condrocitos se resuspenden a 20 veces 10 a la sexta células por mililitro.El siguiente paso del procedimiento consiste en encapsular los condrocitos articulares primarios aislados en un hidrogel de aros. En un vaso de precipitados, suspenda 0.8 gramos de aros en 20 mililitros de PBS estéril. Coloque el vaso de precipitados en una placa calefactora ajustada a 120 grados Celsius tan pronto como el aros se disuelva.Reduzca el calor a 60 grados Celsius en un tubo cónico de 50 mililitros. Combine volúmenes iguales de la suspensión celular con el doble de la concentración deseada de la solución de aro calentada. Aquí, cinco mililitros de suspensión celular se añaden a cinco mililitros de suspensión al 4 % de agro para obtener una mezcla final de hidrogel al 2 % de Agros, mezclando bien mediante pipeteo y evitando la formación de burbujas grandes, que podrían afectar la viabilidad celular.A continuación, pipete cuidadosamente 10 mililitros de la mezcla de agraos de condrocitos en una placa de Petri de 60 milímetros de diámetro. Nuevamente, evitando la formación de burbujas grandes. Cubra la placa con su tapa.Luego, deje reposar la mezcla durante 30 minutos a temperatura ambiente. Una vez que la mezcla se haya solidificado, utilice un punzón de biopsia de cuatro milímetros para obtener tantas muestras de hidrogel de aros de condrocitos como sea posible. Normalmente, esto equivale a entre 20 y 30 muestras.Coloque las muestras en una placa de Petri limpia utilizando una medida micrométrica y registre el diámetro y la altura de cada muestra. Idealmente, el constructo debe tener aproximadamente cinco milímetros de altura; deseche cualquier muestra obtenida de una región donde la altura de la muestra sea mayor al 2%. Transfiera las muestras a una placa de Petri fresca de 60 milímetros que contenga 10 milímetros de medio completo. En esta parte del protocolo, los constructos con células adheridas se someterán a estimulación mecánica mediante compresión dinámica.Esto se logrará utilizando un dispositivo de compresión personalizado que acopla mecánicamente la carga de los PLA sobre el constructo a un sistema micro-mecánico simulado, el cual controla la cantidad de compresión aplicada a los constructos. El aspecto más difícil del procedimiento consiste en cargar las muestras en el dispositivo de compresión. Es importante ajustar adecuadamente las placas del dispositivo para garantizar la aplicación apropiada de la carga compresiva dinámica.Antes de su uso, esterilice las piezas metálicas del dispositivo de compresión en una autoclave. Esterilice las piezas plásticas con etanol al 70 % durante la noche y con luz UV durante al menos 15 minutos. Para evitar que las construcciones de hidrogel con aros de condrocitos se caigan.Utilice pinzas para colocar 12 anillos plásticos de retención estériles en los pocillos de una placa de cultivo de 24 pocillos. Los diámetros internos de los anillos de retención deben ser mayores que los diámetros de los constructos. Utilice las pinzas con cuidado.Transfiera los hidrogeles de cartílago aros a la placa de 24 pocillos desde la placa de Petri, asegurando cada uno en un anillo de retención. Transfiera 400 microlitros de medio completo a cada muestra. A continuación, ensamble cuidadosamente el dispositivo de compresión esterilizado y, utilizando tornillos de fijación, asegure los PLAs.Sujete el dispositivo de compresión a la placa de cultivo de 24 pocillos para establecer la liberación por contacto del hidrogel y vuelva a asegurarlo. La deformación generada por los tornillos de ajuste se aplicará a este estado de referencia sin carga o estado de deformación cero. Coloque el dispositivo de compresión ensamblado en un sistema de pruebas micro-mecánicas Mach one con el pasador de ubicación.Sujete el dispositivo al soporte vertical y luego, utilizando un tornillo de fijación, bloquéelo en su lugar. Retire la plantilla de espaciado. Utilice la interfaz de software Mach one para establecer la frecuencia en un hercio, la amplitud en 350 micrones y el número de ciclos en 1.200.Esto aplica una carga compresiva dinámica con una amplitud de deformación del 10 % en función de la altura original de las muestras. Para iniciar la estimulación mecánica, presione el botón de inicio, el actuador mach one. El dispositivo de carga que se fija a la placa de cultivo tiene seis indentaciones que se mueven hacia arriba y hacia abajo, estimulando seis muestras simultáneamente.Las muestras de control sin estimular también se encuentran en la misma placa de cultivo, pero no se colocan en los pozos que tienen las muescas. Cuando la corrida finalice, la máquina uno emitirá un sonido y el actuador pasará al estado de referencia descargado. Tras completarse la estimulación mecánica, reemplace la plantilla de espaciado.Suelte el tornillo de fijación del pasador de ubicación y retire el dispositivo de compresión y la placa de cultivo del sistema de prueba junto con la etiqueta radiactiva. Pipetee en cada pocillo cinco microcurios de prolina marcada con tritio como etiqueta proteica para la síntesis de colágeno específica de condrocitos y azufre-35 para la síntesis de proteoglicanos. Incube los constructos marcados con radioisótopos durante 24 horas a 37 grados Celsius y 5 % de dióxido de carbono para cosechar los constructos de hidrogel marcados con radioisótopos. Utilice pinzas para enjuagar cada constructo de hidrogel tres veces mediante inmersión en PBS. Para eliminar cualquier isótopo no incorporado, coloque el constructo enjuagado en un tubo de 1,5 mililitros.A continuación, agregue 500 microlitros de solución pape a los tubos de 1,5 mililitros. Colóquelos en un bloque calefactor y deje que digieran a 65 grados Celsius durante 72 horas. Una vez finalizada la digestión, la muestra debe verse relativamente clara.Inmediatamente después de la digestión con pape, tome alícuotas de 100 microlitros de cada muestra para determinar el contenido de ADN utilizando el ensayo pico green D. Luego, tome una alícuota de 100 microlitros de cada muestra para determinar la actividad del isótopo incorporado mediante recuento de centelleo líquido beta. La actividad del isótopo resultante debe normalizarse luego respecto al contenido de ADN para su análisis.Los constructos de hidrogel de aros de condrocitos articulares bovinos compuestos de 2% de aros con 10 veces 10 a la sexta células por mililitro de células encapsuladas fueron estimulados mecánicamente a una amplitud de 10% de deformación compresiva a una frecuencia de un hertz durante 20 a 60 minutos, o 1.200 a 3.600 ciclos. Luego, se analizaron en cuanto a contenido de ADN y síntesis de matriz extracelular mediante la incorporación de radioisótopos.Como puede observarse aquí, la síntesis de ADN y de la matriz extracelular se vio afectada de manera dependiente de la dosis. El contenido de ADN mostró una disminución significativa del 35 % como resultado de una estimulación de 20 o 30 minutos, con un valor p inferior a 0,01; sin embargo, 60 minutos de estimulación no mostraron efecto. La síntesis de colágeno y proteoglicanos específicos del cartílago se determinó mediante la incorporación de tritio, prolina y azufre S35, respectivamente.Estos mostraron aumentos significativos de aproximadamente el 60 % en respuesta a 20 o 30 minutos de estimulación, con un valor p inferior a 0,01; 60 minutos de estimulación no mostraron un efecto observable. Después de ver este video, usted debería tener una buena comprensión de cómo estimular mecánicamente cultivos en hidrogel utilizando impresión dinámica y adaptar este protocolo para su uso en aplicaciones similares.

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Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

Un sistema 3D de los condrocitos articulares humanos en cultivo de altos niveles de líquido sinovial se describe. El líquido sinovial refleja el microambiente más naturales para el cartílago articular, y puede ser fácilmente obtenido y almacenado. Así, este sistema puede ser utilizado para el estudio de la regeneración del cartílago y de terapias de detección para el tratamiento de la artritis.

Un sistema 3D para los condrocitos articulares humanos cultivo de líquido sinovial

Hemos diseñado un nuevo biorreactor de carga mecánica que se puede aplicar tensión mecánica uniaxial o biaxial a un biocompuesto cartílago antes del trasplante en un defecto de cartílago articular.

Diseño de un Carga mecánica Biaxial biorreactor para Ingeniería de Tejidos

Un bioprinter se utilizó para crear hidrogeles modelado basado en un molde de sacrificio. El molde poloxámero se rellenó con un segundo hidrogel y luego se eluyó, dejando huecos que estaban llenos de una tercera hidrogel. Este método utiliza elución rápida y buena capacidad de impresión de poloxámero para generar arquitecturas complejas a partir de biopolímeros.

Impresión Moldes inversa termosensible para la Creación de modelado hidrogeles de dos componentes para el 3D de cultivo celular

La reparación del cartílago representa un desafío médico no resuelto y los enfoques basados en células para diseñar el cartílago articular humano son una solución prometedora. Aquí, describimos los hidrogeles biomiméticos tridimensionales (3D) como una herramienta ideal para la expansión y maduración de los condrocitos articulares humanos.

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Un andamio de la ingeniería de tejidos inyectable compuesto de poli (N-isopropilacrilamida) sulfato de condroitina-injertado (PNIPAAm-g-CS) que contienen micropartículas de alginato se preparó. La fuerza adhesiva, propiedades de hinchamiento y en la biocompatibilidad in vitro se analizaron en este estudio. Las técnicas de caracterización desarrolladas aquí pueden ser aplicables a otros sistemas de termogelificación.

Síntesis de termogelificante poli (N-isopropilacrilamida) compuestos de sulfato de condroitina-injertado con alginato micropartículas de Ingeniería de Tejidos

El estrés mecánico puede inducir la diferenciación condrogénica de las células madre, proporcionando un enfoque terapéutico potencial para la reparación del cartílago dañado. Presentamos un protocolo para inducir la diferenciación condrogénica de células madre derivadas del tejido adiposo (ASCs) utilizando la gravedad centrífuga (CG). La regulación positiva de SOX9 inducida por CG da como resultado el desarrollo de fenotipos condrogénicos.

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Condrogénesis de células madre requiere un ajuste fino de las condiciones de cultivo. A continuación, presentamos un enfoque magnético para la condensación de las células, un paso esencial para iniciar la condrogénesis. Además, mostramos que la maduración dinámica en un biorreactor se aplica estimulación mecánica a las construcciones celulares y mejora la producción de la matriz extracelular cartilaginosa.

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Este artículo proporciona métodos detallados para fabricar y caracterizar un dispositivo microfluídico de accionamiento neumático para la compresión de condrocitos.

Una plataforma microfluídica para estimular los condrocitos con compresión dinámica

La terapia ósea a través de la osificación endocondral mediante la implantación de tejido cartilaginoso artificial producido a partir de células madre mesenquimales tiene el potencial de eludir los inconvenientes de las terapias convencionales. Los hidrogeles de ácido hialurónico son eficaces para escalar injertos de cartílago uniformemente diferenciados, así como para crear hueso integrado con vascularización entre injertos fusionados in vivo.

Formación ósea integrada a través de la osificación endocondral in vivo utilizando células madre mesenquimales

Este estudio describe un método para producir esferoides condrocíticos mediante la agregación de células en esferoides en condiciones de baja adherencia utilizando la gravedad, seguido de un cultivo de los esferoides resultantes en mini-biorreactores.

Generación de esferoides a partir de varios condrocitos utilizando condiciones de baja adherencia por gravedad y mini-biorreactores caseros

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