Name: Placa de Ensayo para Norovirus murino (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 53 s
Description: Aprende a cuantificar partículas infecciosas de norovirus murino mediante ensayo de placa en macrófagos de ratón. Este protocolo permite medir infectividad viral en muestras biológicas y ambientales.

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Damos las gracias a los miembros del laboratorio Wobus de comentarios críticos y sugerencias. El trabajo en el laboratorio de CEW fue financiado por fondos de puesta en marcha de la Universidad de Michigan, una subvención desarrollo de la carrera desde el Centro de NIH / NIAID Regional de Excelencia para la bio-defensa y de Investigación de Enfermedades Infecciosas Emergentes (ICE) Programa, Región V &#39;Gran Lakes &#39;ICE (premio NIH 1-U54-AI-057153) y NIH R01 AI080611. MBG-H. fue financiado por la Inmunología Experimental (NIH T32 A1007413-16) y los Mecanismos moleculares en la patogenia bacteriana (NIH T32 A1007528) becas de formación en la Universidad de Michigan. JBC fue financiado por Coordenação de Perfeccionamiento de Personal de Nível Superior (CAPES), Brasilia, Brasil.

1. El cultivo de la línea celular de macrófagos RAW 264,7 <ol><li> Mantener células RAW 264,7 (ATCC, catálogo # TIB-71) en DMEM-10 medios de comunicación, que consiste en glucosa elevada DMEM con 10% (v / v) de baja endotoxina de suero bovino fetal (&lt;10 EU / ml), 10 mM HEPES , 100 U / ml de penicilina, 100 ug / ml de estreptomicina, 1 mM no aminoácidos esenciales, 2 mM L-glutamina. Las células se mantienen típicamente en 175 cm 2 frascos de cultivo de tejidos que contienen 35 ml de medio por frasco y se incubaron a 37 ° C y 5% de CO 2 en un incubador de cultivo de tejido. Sin embargo, cualquier matraz de tamaño puede utilizarse con un volumen de medio que resulte apropiado para el tamaño del matraz. </li><li> Para dividir celdas: aspirar fuera de los viejos medios, añadir 10 ml de DMEM fresco-10 medios de comunicación a las células, y luego raspar las células de la parte inferior del matraz mediante el uso de un raspador de células. A continuación, se resuspenden las células en una solución homogénea mediante la elaboración de las células en una pipeta de 10 ml y con fuerza apretando las células a través de la punta de pipeta prEssed contra el fondo del matraz. Repita esta acción por lo menos 3 veces por lo que las células ya no se agrupan. Verificar por microscopía de luz que una única suspensión celular fue generado. Luego, transferir 1 ml (dilución 1:10 o células ~ 1x10 7) - 2 ml (dilución 1:5 o células ~ 2x10 7) de la suspensión celular a un nuevo matraz de 175 cm 2, y llevar el volumen final de los medios de comunicación hasta 35 ml. </li><li> Dividir celdas cuando están casi confluente (~ 1x10 8 células total/175 cm 2 frascos): cada tres días, si a partir de una dilución 1:10, o cada dos días, si a partir de una dilución 1:5. El uso de microscopía de luz para comprobar la morfología celular antes de dividir celdas. La mayoría de las células se deben mirar a su alrededor y no activado. Las células activadas tienen gránulos y / o prolongado, larguiruchos morfología con apéndices. No permita que las células crecen en exceso como esas células no suelen formar placas. Mantenga un registro del número de pases y con frecuencia volver a empezar por el deshielo de una parte alícuota paso inferior de las células. (Usamos el paso 30 como un punto de corte). </li></ol> 2. Infect RAW 264,7 células con MNV Inóculo <ol><li> Semillas RAW 264,7 células en placas de 6 pocillos (3,5 cm de diámetro) con una densidad de 1x10 6 células viables / ml en DMEM-10 medios de comunicación, y añadir 2 ml de esta suspensión a cada pocillo. Es importante distribuir uniformemente las células en los pocillos, ya sea por las placas de balanceo con la mano por lo menos 10 veces o mediante el uso de un aparato de balanceo para ~ 10 min. No remolino las placas como esto hará que las células a agruparse en el centro del pozo. Colocar las placas en una incubadora de cultivo de tejidos (a 37 ° C y 5% de CO 2). Permitir que las células se unan durante la noche o durante al menos 4 horas a 37 ° C. Las células deben ser 60 - 80% confluente para el ensayo en placa y se distribuye uniformemente a lo largo del pozo. </li><li> El día siguiente, preparar el inóculo del virus, que puede ser de MNV células infectadas en cultivo de tejidos o de tejidos homogeneizados o muestras fecales de MNV-ratones infectados. Al usar muestras de tejido, tamaño de un guisante piLos CEE de tejido se homogeneizaron en 2 ml con tapón de rosca tubos que contienen perlas de sílice estériles en 1 ml de DMEM-10 utilizando un homogeneizador de tejidos (por ejemplo MagnaLyser; Roche). Para las muestras de heces, no más de 3 partículas fecales se homogeneizaron en 1 ml de medio. Todas las muestras se congelan entonces (a -80 ° C) y se descongeló una vez antes de realizar el ensayo en placa. </li><li> 10-Preparar diluciones del inóculo de virus en DMEM completo-5 medio, que consiste en DMEM / glucosa alta, 5% (v / v) de baja endotoxina suero bovino fetal (&lt;10 EU / ml), 10 mM de HEPES, 100 U / ml de penicilina, 100 ug / ml de estreptomicina, 1 mM no aminoácidos esenciales, 2 mM de L-glutamina. </li><li> Diez veces la dilución se preparan en placas de 24 pocillos: Una pipeta de repetidor se utiliza para dispensar 1,35 ml de medio en pocillos múltiples, la dilución 10 -1 se prepara mezclando 1,35 ml de medio y 0,15 ml de virus que contiene la muestra, y luego 0,15 ml de la dilución 10 -1 se añade a 1,35 ml de medio para hacer que la 10 -2 dilution y así sucesivamente. Es importante cambiar las puntas cada vez que realice una nueva dilución. Una pipeta multicanal puede ser utilizado para hacer las diluciones de muestras múltiples a la vez con dos puntas de guarnición en un pocillo de una placa de 24-así la transferencia de un volumen total de 0,15 ml por pocillo (véase la Figura 3A). </li><li> Un intervalo de dilución típico de homogeneizados de tejido y contenidos fecales es 10 -1 a 10 -3. Sin embargo, las placas de estas muestras tienden a ser más pequeños en comparación con los de las muestras de cultivo de tejidos. Además, en algunos casos una dilución 1:100 de las muestras de heces se necesita para diluir suficientemente a cabo cualquiera de los componentes tóxicos de las heces que podrían perturbar la monocapa de células, lo que dificulta la capacidad de contar las placas. El intervalo de dilución de los lisados ​​de cultivo de tejido depende del punto de tiempo de interés durante el ciclo de vida viral. Las diluciones que van hasta 10 -9 puede ser necesaria en el pico de la infección. </li><li> Después de las diluciones en serie se preparan, etiquetar el 6-así placas que contienen monocapas (RAW 264.7 de la sección 2.1) con el nombre de la muestra y las diluciones ser plateado. Una placa a la vez, eliminar todos los medios por moviéndola hacia fuera o aspiración de la misma. Inmediatamente después añadir 0,5 ml de una muestra diluida a un pocillo, y después repetir con un duplicado así, antes de proceder a la siguiente dilución. Una vez que los 3 diluciones se añaden a una placa de placa de inclinación, de ida y vuelta con la mano para asegurarse de que todas las células han sido cubiertos. Manejar un plato a la vez para asegurar que las células no se seque. </li><li> Después de la adición de 0,5 ml de las diluciones a cada pocillo, la pila de placas en posición vertical y los incuban durante 1 hora a temperatura ambiente. Debido a que el volumen añadido a cada pocillo no es suficiente para cubrir completamente la monocapa, las placas deben ser suavemente inclinada hacia atrás y hacia adelante a mano cada 10-15 minutos o se coloca en un aparato de balanceo (~ 18 oscilaciones por minuto). Esto evita que las células se sequen. </li></ol> 3. Bajo punto de fusión de agarosa (SeaPlaque) Preparación Overlay <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Nota: es recomendable tener varias botellas con autoclave SeaPlaque agarosa preparado con anticipación. La agarosa se puede volver a fundir en un horno de microondas antes de su uso. <ol><li> Calcular la cantidad de superposición necesaria para el volumen total de las placas antes de la incubación de 1 h se completa. El volumen necesario es 2 ml / pocillo o placa 12 ml/6-well. Preparar agarosa (ver sección 3.2) y los medios (ver sección 3.3) por separado. </li><li> Para preparar la agarosa, suspender 3 g de agarosa SeaPlaque en un volumen total de 100 ml de agua destilada (3% w / v) en una botella de vidrio. Autoclave durante 20-30 min. (Si agarosa ya estaba preparada de antemano, re-fusión de agarosa en el microondas.) Es importante equilibrar SeaPlaque agarosa a 42 ° C en un baño de agua antes de su uso, porque si la agarosa es demasiado caliente, que matará a las células. Asegúrese de que el nivel de agua es igual o por encima del nivel de la agarosa para evitar la solidificación no deseada. </li><li> Para preparar los medios de comunicación: hacer 100 ml de 2x MEM medios de comunicación, que consiste2x MEM, 10% (v / v) de baja endotoxina de suero bovino fetal (&lt;10 EU / ml), HEPES 10 mM, 100 U / ml de penicilina, 100 ug / ml de estreptomicina, 4 mM de L-glutamina. Equilibrar los medios de comunicación a 37 ° C en un baño de agua. </li><li> Mezclar tanto la agarosa SeaPlaque y los medios 2X MEM juntos en una botella estéril en una relación 1:1 inmediatamente antes de la superposición de las monocapas de células infectadas. Si hay más de 200 ml de superposición que se necesita, volumen dividido en múltiples botellas y mantener en 37 ° C baño de agua hasta que esté listo para usar. </li><li> Al final de la incubación de 1 hora (véase la sección 2,7), aspirar el inóculo fuera de cada pocillo. Se añade lentamente 2 ml de superposición al borde de cada pocillo mediante la colocación de la punta de la pipeta contra la pared de cada pocillo. Hasta 5 placas se pueden manejar simultáneamente sin células se sequen. </li><li> Permitir la superposición de solidificar durante aproximadamente 10 min a temperatura ambiente antes de colocar las placas en posición vertical en el cultivo de tejidos incubadora. Incubar las placas durante 48 horas a 37 ° C en 5% de CO 2. </li><li> Despuésel período de incubación, las placas son apenas visible a simple vista, a fin de comprobar las placas teñidas de presencia de placas. Si no están visibles las placas, se incuba durante 4 horas y puedes volver a intentarlo. Sin embargo, el tiempo máximo de incubación no debe superar los 72 hr. </li></ol> 4. La visualización de las placas por tinción con rojo neutro <ol><li> Para visualizar las placas, la solución de tinción con rojo neutro se prepara mediante la adición de 3 ml de rojo neutro (0,33% w / v en DPBS; Sigma, catálogo # N2889) a cada ml de 1x PBS 97 (grado de cultivo de tejidos, Mg 2 + -, Ca 2 + - libre, Gibco, catálogo # 10010). Calcular el volumen de la solución de tinción con rojo neutro necesario para el experimento: 12 ml de solución colorante rojo neutro se requieren para cada 6-así placa. A continuación, añadir 2 ml a cada pocillo. Aunque algunos protocolos de ensayo de placas requieren el tapón de agarosa para ser retirado de los pocillos, en este protocolo de la solución de tinción con rojo neutro se añade directamente a la superposición. </li><li> Después de una hora uno encubation a 37 º C, comprobar si las placas son visibles con solución de tinción con rojo neutro todavía en pozos. Si las placas no son evidentes, deje que la tinción para continuar por otro hr. Continuar la incubación hasta que las placas son visibles. (Nota:. Tinción durante más de 3 horas no es óptimo y si no hay placas son visibles en la muestra de control positivo después de 3 horas de tinción, el ensayo de placa no funcionaba correctamente) Después de la tinción es completa, aspirar la solución de tinción con rojo neutro , asegurando el tapón de agarosa no se altera, y luego proceder a contar las placas. </li><li> Cuente placas colocando la placa boca abajo sobre una caja de luz y marcar un punto en placas contados a evitar cargos duplicados. Elige la dilución para contar las placas en los pocillos en las placas están claramente separados (es decir, ninguna evidencia visual de la fusión de las placas juntas). Si es posible, contar las placas en dos diluciones. Es importante tener en cuenta que el tamaño de la placa puede variar entre cepas MNV, el inóculo de virus, y depende de lacondición de las células RAW 264,7 durante el ensayo de placas. </li><li> Si no hay placas son visibles en un pozo, si no había un virus presente en la muestra o la cantidad de virus estaba bajo el límite de detección del ensayo en placa. En este caso, los pocillos se tiñen de rojo con un color parecido a otros que contienen pozos de placa. Alternativamente, la ausencia de placas también se observa cuando hay partículas virales demasiados presentes en una determinada dilución. Esto conduce a la lisis de la monocapa entera y pozos aparecen de color naranja / amarillo. </li><li> Cálculo de los títulos virales. Añadir el número de placas en ambos pozos a una sola dilución y se multiplica por el factor de dilución (es decir, 1 ml si 2 pocillos se infectaron con 0,5 ml). Esto dará lugar a la cantidad de unidades formadoras de placas (PFU) en su volumen de inóculo de 1 ml. Por ejemplo, en la Figura 4 a la dilución 10 -2, un pocillo (marcada &quot;II&quot;) tiene 14 placas y así el otro (marcado &quot;V&quot;) tiene 17 placas. Por lo tanto, el título viral será 14x10 2 + 2 17x10 = 3100 (3.1x10 3) ufp / ml. </li></ol> 5. Los resultados representativos Infecciosas MNV-1 partículas se puede cuantificar usando un ensayo en placa como se indica esquemáticamente en la Figura 1. Figura 2A muestra un pozo con una monocapa de células RAW 264,7 justo antes de la infección, mientras que la Figura 2B muestra tres placas visibles indicados por números romanos I, II y III en un pozo. Los pasos individuales del ensayo se representa en las Figuras 3A a F. La figura 3A muestra la preparación de la serie de dilución de 10 veces de una muestra que contiene virus. Figura 3B muestra la transferencia de las diluciones en pocillos duplicados de una placa de 6-así. Figura 3C muestra el aparato de oscilación usado para incubar células RAW 264,7 con el inóculo a temperatura ambiente durante 1 hr Figura 3D muestra las células que se superpone con el SeaPlaque:. MEMmezcla. Figura 3E muestra una placa a temperatura ambiente para permitir la superposición a solidificar, mientras que la Figura 3F muestra las células que se tiñen con un 0,01% neutral solución de color rojo 48 horas más tarde. Después de la tinción de células de 1-3 hr y aspirando la solución de tinción con rojo neutro, las placas son visibles y pueden ser contados (figura 4). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/4297/4297fig1.jpg" /> Figura 1. Esquema del protocolo de ensayo MNV placa. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/4297/4297fig2.jpg" /> Figura 2. Imágenes representativas de un pocillo de una monocapa antes de la infección y después de la formación de placas. A) RAW 264,7 células se cultivaron durante la noche y formado la imagen bajo un microscopio óptico de 20 aumentos. B) Las células se tiñeron con un 0,01% de solución de rojo neutro después de 48 hr de la infección y se visualizaron bajo un microscopio de luz con un aumento de 4x. Números romanos I, II, y III indican tres placas visibles. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/4297/4297fig3.jpg" /> Figura 3. Imágenes representativas de los diferentes pasos del ensayo de placa. A) MNV-1 inóculo se prepara en diluciones de 10 veces. B) Inóculo se añadieron a monocapas de células en pocillos duplicados. C) Las células y el inóculo se incubó por balanceo durante 1 hora a temperatura ambiente. D) Las células se recubren con una mezcla 1:1 de agarosa SeaPlaque y 2x MEM medios de comunicación. E) Las placas se incubaron durante 10 min a temperatura ambiente para permitir la superposición de solidificar. F) Tinción de las células con la solución de tinción con rojo neutro 48 horas después de la infección. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/4297/4297fig4.jpg" /> Figura 4. MNV-1 forma placas en células monolAyers. Aquí se muestra una placa de ensayo de placa representativa de 48 horas después de la infección, que muestra las placas teñidas con tinción con rojo neutro solución después de 1 hora de incubación. La placa de muestra de tres pocillos por duplicado 10-diluciones. Wells etiquetados con números romanos I y IV corresponden a la dilución 10-1; II y V corresponden a la dilución 10-2; III y VI corresponden a la dilución 10-3. El título viral de la muestra se indica a continuación (véase la sección 4,5 para los detalles del cálculo).

<ol><li>Wobus, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replication+of+Norovirus+in+cell+culture+reveals+a+tropism+for+dendritic+cells+and+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Replication of Norovirus in cell culture reveals a tropism for dendritic cells and macrophages.</a> PLoS Biol. 2, e432(2004).</li>
<li>Wobus, C. E., Thackray, L. B., Virgin, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+norovirus%3A+a+model+system+to+study+norovirus+biology+and+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+virology%22%5BJournal%5D)">Murine norovirus: a model system to study norovirus biology and pathogenesis.</a> Journal of virology. 80, 5104-5112 (2006).</li>
<li>Condit, R. C. Ch. 2. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCondit%2C+RC+%22Fields+Virology%22">Fields Virology</a>. Knipe, D. M., Howley, P. M. 1, Lippincott Williams & Wilkins. 25-58 (2007).</li>
<li>Thackray, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+noroviruses+comprising+a+single+genogroup+exhibit+biological+diversity+despite+limited+sequence+divergence%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+virology%22%5BJournal%5D)">Murine noroviruses comprising a single genogroup exhibit biological diversity despite limited sequence divergence.</a> Journal of virology. 81, 10460-10473 (2007).</li>
<li>Reed, L. J., Muench, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+estimating+50%25+endpoints%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Hygiene%22%5BJournal%5D)">A simple method for estimating 50% endpoints.</a> American Journal of Hygiene. 27, 493-497 (1932).</li>
<li>Chachu, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibody+is+critical+for+the+clearance+of+murine+norovirus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+virology%22%5BJournal%5D)">Antibody is critical for the clearance of murine norovirus infection.</a> Journal of virology. 82, 6610-6617 (2008).</li>
<li>Barron, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diversity+of+murine+norovirus+strains+isolated+from+asymptomatic+mice+of+different+genetic+backgrounds+within+a+single+U.S.+research+institute%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Diversity of murine norovirus strains isolated from asymptomatic mice of different genetic backgrounds within a single U.S. research institute.</a> PLoS ONE. 6, e21435(2011).</li>
<li>Cox, C., Cao, S., Lu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+detection+and+study+of+murine+norovirus-1+using+a+more+efficient+microglial+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22Virology+journal%22%5BJournal%5D)">Enhanced detection and study of murine norovirus-1 using a more efficient microglial cell line.</a> Virology journal. 6, 196(2009).</li>
<li>Cooper, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+plaque+assay+of+animal+viruses%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Virus+Res%22%5BJournal%5D)">The plaque assay of animal viruses.</a> Adv. Virus Res. 8, 319-378 (1961).</li>
<li>Hyde, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+norovirus+replication+is+associated+with+virus-induced+vesicle+clusters+originating+from+membranes+derived+from+the+secretory+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+virology%22%5BJournal%5D)">Mouse norovirus replication is associated with virus-induced vesicle clusters originating from membranes derived from the secretory pathway.</a> Journal of virology. 83, 9709-9719 (2009).</li>
<li>Simmonds, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioinformatic+and+functional+analysis+of+RNA+secondary+structure+elements+among+different+genera+of+human+and+animal+caliciviruses%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+acids+research%22%5BJournal%5D)">Bioinformatic and functional analysis of RNA secondary structure elements among different genera of human and animal caliciviruses.</a> Nucleic acids research. 36, 2530-2546 (2008).</li>
</ol>

No hay conflictos de interés declarado.

El método de ensayo de placa para MNV-1 se presenta aquí es una forma de cuantificar partículas infecciosas de MNV. Siguiendo los pasos del ensayo se ilustra en la Figura 3, se puede obtener reproducibles títulos virales. El límite de detección del ensayo depende de la dilución de partida utilizado. Cuando comenzando con una dilución 1:10 de la muestra como se describe anteriormente, el límite de detección del ensayo de placa es de 10 ufp (es decir, 1 placa visible en la dilución 10 -1). Dado que cada placa representa un solo virus, el ensayo en placa también se puede utilizar para purificar poblaciones clonales de MNV recogiendo placas aisladas y propagar ellos como se ha descrito anteriormente 1. Además, purificaciones en placa también se puede utilizar para separar una población de virus individuales de poblaciones de virus mezclados. Una limitación del uso de un ensayo de placa para la detección de infección MNV es que no todas las cepas MNV formar placas 4. Sin embargo, puede ser posible superar la inability de algunas cepas MNV, aisladas de animales, para formar placas por pases en serie estos virus en cultivo de tejido 7. Una alternativa a la placa de ensayo es medir partículas infecciosas a través de la técnica de TCID 50 3, 4. Este ensayo cuantifica la cantidad de virus necesaria para producir CPE en 50% de las células de cultivo de tejidos inoculados tras diluciones de punto final y toma 1 semana para completar para MNV 4. Además de ser más lento que un ensayo en placa, el 50 TCID ensayo es también no es tan sensible (límite de detección = 200 TCID 50 / ml), debido a la toxicidad de las muestras de tejido para células RAW 264,7 4. A pesar de los pasos críticos dentro del protocolo se han descrito en todo el protocolo, la siguiente sección se ofrece un resumen para facilitar la resolución de problemas. El paso más crítico en el protocolo es asegurar que RAW 264,7 células permanecen viables durante todo el ensayo para apoyar la replicación del virus. Esto puedeun control en cada etapa del ensayo a través de microscopía de luz. La viabilidad celular se garantiza de dos maneras. En primer lugar, se debe tener cuidado de no permitir que las células se secan durante la manipulación de placas. Por lo tanto, las placas se inoculan uno a la vez, sacudió durante el período de infección, y debe permanecer cerrado cuando no están siendo manejados. En segundo lugar, las soluciones de añadirse a las células deben equilibrarse a ~ 37 ° C. Además, es vital para la salud general de las células RAW 264,7 para su mantenimiento en medios que contienen suero de endotoxina bajo (&lt;10 EU / ml), lo que limita la activación de las células. Además, hemos observado una mayor tasa de fracaso de la placa de ensayo utilizando las células de pasaje 30 o superior. Aunque esto probablemente variará de un laboratorio a otro, es importante incluir un control positivo (por ejemplo, una muestra con un título viral conocida) para asegurar títulos reproducibles, especialmente cuando se utilizan mayores pasaje células RAW 264,7. Para limitar el uso de células de paso superior, es aconsejable para congelar viales de principios passage células a la recepción de RAW 264,7 células y comenzar una nueva cultura de los viales congelados con frecuencia. Empezar de nuevo con bajas culturas pasaje celular también será útil cuando las células presentan características alteradas, tales como la falta de adhesión, los cambios en la morfología celular (por ejemplo, de redonda a larguirucha y hacia fuera), o cuando la contaminación por micoplasmas se ha detectado. Otro punto importante prestar atención a es asegurar que las puntas de pipeta se cambian entre las muestras y durante las diluciones. Esto asegurará precisos diluciones en serie y evitar la contaminación cruzada entre las muestras. El primer paso en el protocolo donde se encuentra la punta de la pipeta mismo es utilizado de nuevo cuando diluciones en serie de la misma muestra se añaden a los pocillos. En ese caso, hay que comenzar desde el inóculo más diluido a lo menos, y vigorosamente pipetear hacia arriba y abajo en la elaboración de una nueva dilución. El protocolo de ensayo de placa es enmendable de varias modificaciones. Una modificación que puede hacerse cuando taquí no son suficientes células para la inoculación de los pocillos por duplicado es inocular sólo un único pocillo de cada dilución. Sin embargo, puesto que el volumen del inóculo es 0,5 ml, el número de placas luego tiene que ser multiplicado por un factor de 2 para normalizar a pfu / ml. El ensayo en placa también se puede adaptar para su uso con cualquier otra línea celular adherente que es capaz de soportar la replicación de MNV, y esto se ha descrito para la línea de murino microglial BV-2 de células 8. Otras modificaciones que se pueden aplicar son adaptaciones que se han descrito para los protocolos de la placa de ensayo desarrollados para otros virus. En caso de MNV, las siguientes modificaciones ya se han aplicado con éxito, el uso de celulosa de metilo en lugar de agarosa Sea Plaque 9, y la tinción de las células con cristal violeta o azul de metileno en lugar de rojo neutro 10, 11. En general, este protocolo se puede adaptar fácilmente según sea necesario para cuantificar otras formadoras de placas o virus utilizado para OTHer los virus que causan las infecciones líticas en RAW 264,7 células, lo que hace que sea una herramienta útil para cuantificar partículas virales infecciosas en general.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td></tr><tr><td> DMEM / glucosa alta </td><td> Hyclone </td><td> SH30243.02 </td></tr><tr><td> 2x MEM </td><td> Gibco </td><td> 11935 </td></tr><tr><td> 100x penicilina y estreptomicina </td><td> Hyclone </td><td> SV30010 </td></tr><tr><td> 10 mm no aminoácidos esenciales </td><td> Hyclone </td><td> SH30238.01 </td></tr><tr><td> HEPES 1 M </td><td> Hyclone </td><td> SH30237.01 </td></tr><tr><td> 200 mM (100x) L-glutamina </td><td> Hyclone </td><td> SH30034.01 </td></tr><tr><td> Suero Bovino Fetal </td><td> Gibco, Hyclone </td><td> 10437, SH30070.02 </td></tr><tr><td> Sea placa de agarosa </td><td> Lonza </td><td> 50100 </td></tr><tr><td> Rojo Neutro 0,33% </td><td> Sigma </td><td&gt; N2889 </td></tr><tr><td> 1x PBS </td><td> Gibco </td><td> 10010 </td></tr><tr><td> 1,0 mm de zirconia / sílice cuentas </td><td> BioSpec Productos </td><td> 11079110z </td></tr><tr><td> Modelo 35 Speed ​​Rocker </td><td> Labnet </td><td> S2035 </td></tr><tr><td> Instrumento lyser Magna </td><td> Roche </td><td> 03358968001 </td></tr><tr><td> Raw 264,7 células línea </td><td> ATCC </td><td> TIB-71 </td></tr><tr><td> Incubadora de cultivo de tejido </td><td> Sanyo </td><td> MCO-18AIC </td></tr></tbody></table>

placa de ensayo para norovirus murino

Plaque Assay for Murine Norovirus

Norovirus murino (MNV) es el único miembro del género Norovirus que crece de manera eficiente en cultivo de tejido 1, 2. La lisis celular y efecto citopático (CPE) se observan durante MNV-1 infección de las células dendríticas o macrófagos murinos 1. Esta propiedad de MNV-1 puede ser usado para cuantificar el número de partículas infecciosas en una muestra determinada mediante la realización de un ensayo de placa 1. La placa de ensayo se basa en la capacidad de MNV-1 para lisar las células y para formar agujeros en una monocapa confluente de células, que se denominan placas 3. Múltiples técnicas se pueden utilizar para detectar infecciones virales en el cultivo de tejidos, tejido recogido, clínica, y muestras ambientales, pero no todos medida el número de partículas infecciosas (por ejemplo, QRT-PCR). Una manera de cuantificar partículas virales infecciosas es llevar a cabo un ensayo de placa 3, que se describirá en detalle a continuación. Una variación en el ensayo de placas MNV es el flúorensayo de foco escent, donde se inmunotiñeron antígeno MNV en monocapas de células 4. Este ensayo puede ser más rápido, ya que la expresión del antígeno viral precede a la formación de placa. También es útil para valorar los virus incapaces de formar placas. Sin embargo, el ensayo de foco fluorescente necesita recursos adicionales a los de la placa de ensayo, tales como anticuerpos y un microscopio para contar las unidades formadoras de foco-. Infecciosa MNV también se puede cuantificar mediante la determinación de la Cultura 50% de tejido dosis infecciosa (TCID 50) 3. Este ensayo mide la cantidad de virus requerida para producir CPE en 50% de las células de cultivo de tejidos inoculados mediante valoración de punto final 5. Sin embargo, su límite de detección es mayor en comparación con un ensayo de placa 4. En este artículo, se describe un protocolo de ensayo de placa que se puede utilizar para determinar efectivamente el número de partículas infecciosas de MNV presentes en muestras biológicas o ambientales 1, 4, 6. Este método es based en la preparación de 10-veces diluciones seriadas de MNV muestras que contienen, que se usan para inocular una monocapa de células permisivas (RAW 264,7 macrófagos murinos). Virus se le permite adjuntar a la monocapa de células durante un período determinado de tiempo y luego aspirado antes de cubrir las células con una mezcla de agarosa y medios de cultivo celular. El agar permite la propagación de la progenie viral a las células vecinas mientras que limita la propagación de las células situadas alejadas. Por consiguiente, las células infectadas se lisaron y se forman agujeros en la monocapa conocida como placas. Tras la propagación de virus suficiente, las placas convertido en manchas visibles siguiente de las células con tintes, tales como rojo neutro, azul de metileno, o violeta cristal. A diluciones bajas, cada placa se origina a partir de una partícula infecciosa viral y su progenie, que se extendió a las células vecinas. Así, contando el número de placas permite calcular unidades formadoras de placas (PFU) presentes en la muestra sin diluir 3.

Aquí se describe un método para cuantificar las partículas infecciosas de norovirus murino (MNV), que es el norovirus que sólo se replica de manera eficiente en cultivo celular. El ensayo de placa se aprovecha de MNV tropismo para macrófagos murinos y puede ser adaptado para su uso con muestras biológicas o ambientales que contienen MNV.

Placa de Ensayo para Norovirus murino

El norovirus murino (MNV) es el único miembro del género Norovirus que crece eficientemente en cultivos tisulares 1, 2. La lisis celular y el efecto citopático (ECP) son ...

El objetivo general de este procedimiento es cuantificar partículas infecciosas de norovirus en neuronas. Esto se logra primero preparando una dilución decimal del inóculo viral. El segundo paso consiste en transferir la dilución del inóculo viral a una monocapa de RAW 264.7 y incubar las placas agitando a temperatura ambiente durante una hora.A continuación, aspire el inóculo y cubra con una proporción uno a uno de agar de placas C y dos XMEM, e incube las placas durante 48 horas en un incubador de cultivo de tejidos. El paso final consiste en cubrir con la solución de tinción de rojo neutro e incubar las placas durante una a tres horas en un incubador de cultivo de tejidos. Finalmente, se aspira cuidadosamente la solución de tinción de rojo neutro sin eliminar la capa de agar sobrepuesta y se cuentan las placas utilizando una caja de luz.Este método de cuantificación de partículas virales infecciosas puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del norovirus, como la cantidad de partículas infecciosas eliminadas en las heces o qué tejidos permiten la infección. En general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades para mantener células sanas y viables durante todo el ensayo. La demostración visual de este método es fundamental, ya que el ensayo de placas para el virus neurotrópico espejo puede ser difícil de comprender para quienes no tienen experiencia previa.La finalización exitosa de este ensayo es una serie acumulativa de pasos que requieren la cantidad adecuada de células, la temperatura correcta y un manejo preciso para observar fácilmente las placas. Primero, examine la monocapa celular bajo un microscopio óptico para verificar la morfología de las células. La mayoría de las células deben aparecer redondas.No permita que las células sobrepasen el crecimiento, ya que normalmente no formarán placas; masajee un matraz para cultivo de tejidos de 175 centímetros cuadrados con células RAW 264.7 casi confluentes para el ensayo de placas de virus murino. Aspire el medio del matraz y agregue 10 mililitros de DMEM 10 fresco a las células. A continuación, raspe las células del fondo del matraz con un raspador celular y utilice una pipeta de 10 mililitros para aspirar y luego expulsar la suspensión celular contra el fondo del matraz. Repita esta acción al menos tres veces para desagregar cualquier grumo de células.Para adaptar un matraz de reserva. Retire uno o dos mililitros de la suspensión celular y colóquelos en un matraz fresco de 175 centímetros cuadrados que contenga de 33 a 34 mililitros de DMEM 10. Incube el matraz en una incubadora de cultivo de tejidos a 37 grados Celsius y 5 % de dióxido de carbono durante dos o tres días y vuelva a masajear.Una vez completado el siembra de las placas para el ensayo, ajuste la densidad de la suspensión celular a un millón de células viables por mililitro en DMEM 10 y agregue dos mililitros de esta suspensión a cada pocillo de una placa de seis pocillos con diámetro de 3,5 centímetros. Tape la placa y luego agítela inmediatamente a mano diez veces para distribuir las células uniformemente en los pocillos.No humedezca la placa, ya que esto hará que las células se agrupen en el centro del pocillo. Luego, coloque la placa en un incubador de cultivo de tejidos durante un mínimo de cuatro horas, o idealmente durante la noche, para que las células se adhieran. El inóculo viral se puede obtener de tejidos homogenizados infectados con MNV o de muestras fecales de ratones infectados con MNV. Si se utilizan muestras de tejido, coloque un trozo del tamaño de un guisante en un tubo de tapón roscado de dos mililitros que contenga perlas de sílice estériles y un mililitro de DMEM 10, y homogenice aquí.Se utiliza un magnetizador a 6.000 RPM durante un minuto. Si se usan muestras fecales, homogenice no más de tres pellets fecales de la misma manera, congele las muestras homogenizadas a menos 80 grados Celsius y descongele el inóculo el día del ensayo de placas. Utilice una pipeta repetidora para dispensar 1,35 mililitros de DMEM 5 en cada pocillo de una placa de 24 pocillos y luego pipete 0,15 mililitros del tercer inóculo viral en el primer pocillo de la placa.Realice diluciones seriadas de diez veces aspirando 0,15 mililitros de la primera dilución 10 a la menos uno y transfiriéndolos al segundo pocillo de la placa para obtener una dilución 10 a la menos dos. Luego repita el proceso con la dilución del segundo pocillo para obtener una dilución 10 a la menos tres. Tenga en cuenta que puede ser necesario realizar diluciones adicionales hasta 10 a la menos nueve, dependiendo de la muestra.Una vez preparadas las diluciones seriadas, etiquete las placas con c&eacute;lulas raw 2 64 0.7 al 60-80&nbsp;% de confluencia con los nombres de las muestras y la diluci&oacute;n que se est&aacute; utilizando. A continuaci&oacute;n, retire todo el medio de una de las placas mediante aspiraci&oacute;n o agitaci&oacute;n y a&ntilde;ada 0,5 mililitros de una muestra diluida a un pocillo. Repita el procedimiento en un pocillo duplicado y luego contin&uacute;e con la siguiente diluci&oacute;n m&aacute;s baja.Una vez que se hayan agregado las tres diluciones a una placa en duplicado, incline la placa hacia adelante y hacia atrás para asegurarse de que todas las células hayan quedado cubiertas. Repita el procedimiento con la siguiente placa de células. Una vez que se hayan tratado todas las placas, coloque las placas en un aparato agitador ajustado a aproximadamente 18 oscilaciones por minuto durante una hora a temperatura ambiente, y caliente en microondas un frasco de aros previamente preparado o enclavado hasta que se derrita.Luego, coloque los aros fundidos en un baño de agua a 42 grados Celsius para equilibrarlos a la temperatura. A continuación, mezcle los agros fundidos con medio XMEM estéril en una botella estéril en una proporción uno a uno. Coloque la botella que contiene esta solución de recubrimiento en un baño de agua a 37 grados Celsius hasta que esté lista para usar.Al finalizar la incubación de una hora, aspire el inóculo de cada pocillo y agregue lentamente dos mililitros de la solución de recubrimiento a cada pocillo, asegurándose de colocar la punta de la pipeta contra la pared de cada uno. Para evitar desalojar las células, tape las placas y deje que el recubrimiento solidifique durante aproximadamente 10 minutos a temperatura ambiente. Luego, transfiera las placas al incubador de cultivo de tejidos durante 48 horas.Tras el período de incubación, revise las placas para comprobar la presencia de placas. Si no se observan placas, devuelva las placas al incubador y vuelva a revisarlas después de cuatro horas. Repita el procedimiento si es necesario, pero la incubación no debe exceder las 72 horas.Primero, prepare la solución de tinción con rojo neutro. Luego, agregue dos mililitros de la solución de rojo neutro a cada pocillo; para este protocolo, no es necesario retirar el tapón de aros. Incube las placas a 37 grados Celsius durante una hora.Una vez transcurrido el tiempo de incubación, revise las placas para detectar la presencia de placas manteniendo la solución de rojo neutro en los pocillos. Si no es evidente la tinción, incube las placas durante otra hora, hasta un máximo de tres horas. Cuando las placas sean visibles, aspire la solución de rojo neutro, asegurándose de que el tapón formado no se perturbe, y luego proceda a contar las placas.Examine las placas y encuentre la dilución en la que las placas estén claramente separadas. Coloque la placa sobre una caja de luz y cuente las placas marcando un punto sobre las placas contadas. Para evitar conteos duplicados.Luego repita el conteo en un pocillo con una dilución diferente del virus y calcule la titulación viral en unidades formadoras de placas por mililitro. De acuerdo con las instrucciones del protocolo escrito, esta imagen representativa muestra una monocapa antes de la infección. Las células raw 2 6 4 0.7 se cultivaron durante la noche e se imaged bajo un microscopio óptico con una magnificación de 20 veces.Esta imagen muestra la misma monocapa tras la formación de placas. Las células fueron teñidas con una solución de rojo neutro al 0,01% tras 48 horas de infección y visualizadas bajo un microscopio óptico con un aumento de cuatro veces. Los números romanos uno, dos y tres indican tres placas visibles.Esta imagen muestra una placa al final del protocolo de ensayo de placas con pocillos duplicados de tres diluciones decimales etiquetados con números romanos. Los números uno y cuatro corresponden a la dilución 10 a la menos uno. Las diluciones dos y cinco corresponden a 10 a la menos dos, y las tres y seis corresponden a 10 a la menos tres.El título viral de la muestra se indica a continuación. Al realizar este procedimiento, es importante recordar cambiar las puntas de pipeta entre diluciones para evitar la contaminación cruzada entre muestras, equilibrar las soluciones a la temperatura correcta y no permitir que las monocapas celulares se sequen. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo realizar un ensayo de placas y cuantificar partículas infecciosas de mi neurovirus.No olvide que al trabajar con Mira Norovirus en una cabina de seguridad biológica, siempre se deben tomar precauciones como el uso de guantes y bata mientras se realiza este procedimiento, y los desechos deben eliminarse adecuadamente siguiendo las pautas establecidas por su comité local de seguridad biológica.

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Los norovirus son la causa principal de gastroenteritis sin embargo, las técnicas moleculares para su caracterización son todavía relativamente nuevos. Aquí mostramos dos diferentes enfoques genética inversa para la recuperación eficiente de los norovirus murino (MNV), el único miembro de este género, que puede ser propagado en cultivos celulares.

Recuperación Genética inversa mediada por norovirus murino Infecciosas

Source: Morales Vasquez, D., et al. Live Imaging and Quantification of Viral Infection in K18 hACE2 Transgenic Mice Using Reporter-Expressing Recombinant SARS-CoV-2. J. Vis. Exp. (2021)This video demonstrates the protocol for carrying out plaque assay–based viral titration for quantifying infectious virus levels in tissue sample collected from a virus–infected mouse model.

Plaque Assay–Based Quantification of Viral Load in an Infected Mouse Tissue Sample

Source: Kadoya, S., Sano, D. Assays for the Specific Growth Rate and Cell-binding Ability of Rotavirus. J. Vis. Exp. (2019).This video demonstrates the use of a plaque assay to assess the rotavirus growth curve. The method involves infecting host cells with diluted virus, overlaying with agarose to restrict spread, and staining to visualize plaques formed by viral replication. By counting plaque-forming units at defined time points, the resulting growth curve reveals the lag, exponential, and...

Assessing Rotavirus Growth Curve by Plaque Assay

Este video muestra un ensayo para cuantificar las partículas similares al virus del norovirus humano (VLP) que se unen a las bacterias intestinales humanas. Las suspensiones bacterianas se mezclan con las VLP y se incuban para permitir la formación de complejos VLP-bacterias. A continuación, los complejos se marcan con anticuerpos específicos de VLP marcados con fluoróforos, seguidos de una visualización y cuantificación basadas en citometría de flujo para identificar el porcentaje de bacterias...

Un ensayo para cuantificar la unión de las VLP del norovirus humano a las bacterias intestinales

Los ensayos de placa son el estándar de oro para la cuantificación viral, ya que utilizan superposiciones atrapantes en las monocapas celulares del huésped para determinar los títulos virales. Si bien tradicionalmente se han utilizado varias superposiciones semisólidas, aquí demostramos técnicas de placa que comparan las superposiciones semisólidas con una nueva celulosa microcristalina líquida entre varias familias de virus.

Viral Concentración Determinación A través de placa Ensayos: El uso de tradicionales y novedosos sistemas de superposición

Aquí presentamos un procedimiento para cuantificar enterovirus y norovirus en aguas ambientales y potables utilizando PCR cuantitativa con transcripción inversa. La recuperación media del virus de las aguas subterráneas con este procedimiento estandarizado del Método 1615 de la EPA fue del 20% para el poliovirus y del 30% para el norovirus murino.

Método EPA 1615. La medición de enterovirus y norovirus Ocurrencia en agua por cultura y RT-qPCR. Parte III. Detección de virus por RT-qPCR

Este estudio describe una   -Imagen basado ensayo de micro-neutralización para analizar las relaciones antigénicas entre los virus. El protocolo emplea un escáner de superficie plana y tiene cuatro pasos, incluyendo la titulación, la cuantificación de titulación, neutralización, y la cuantificación de neutralización. El ensayo funciona bien con pdm09 corriente que circula la gripe A (H1N1), A (H3N2), virus A y B.

Optimización de un ensayo cuantitativo micro-neutralización

Se desarrolló y evaluó una metodología de muestreo basada en macroespuma para la detección y cuantificación de norovirus en superficies duras ambientales.

Método de muestreo hisopo para la Detección de norovirus humano en superficies

Aquí presentamos dos protocolos, uno para medir la tasa de crecimiento específico y la otra para la capacidad de unión a la célula del rotavirus utilizando el ensayo de placa y RT-qPCR. Estos protocolos están disponibles para confirmar las diferencias de fenotipos entre cepas de rotavirus.

Análisis de la tasa de crecimiento específico y la capacidad de unión a la célula del Rotavirus

El objetivo de este protocolo es cuantificar la unión del norovirus humano del patógeno eucariota a las bacterias. Después de realizar un ensayo inicial de apego a la bacteria del virus, la citometría de flujo se utiliza para detectar bacterias ligadas viralmente dentro de la población.

Cuantificación de partículas similares al virus del norovirus humanos que se unen a bacterias comensales mediante citometría de flujo

Aprende a cuantificar partículas infecciosas de norovirus murino mediante ensayo de placa en macrófagos de ratón. Este protocolo permite medir infectividad viral en muestras biológicas y ambientales.

Placa de Ensayo para Norovirus murino

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